28 de enero de 2018
Este método permite la coloración selectiva y cuantificación de DNA en geles sumergiendo el gel en un SYBR Green I / solución Nitro azul de tetrazolio y luego exponerlo a la luz del sol o una fuente de luz azul. Esto produce un precipitado visible y no requiere casi ningún equipo, haciéndolo ideal para uso de campo.
El protocolo de tinción de ADN tiene tres pasos generales. La primera es poner el gel en una solución de SYBR Green I y nitro blue tetrazolio, también conocido como NBT. A continuación, el gel se agita durante 25 minutos si se trata de un gel de poliacrilamida y una hora si se trata de un gel de agarosa.
El último paso es exponer el gel a una fuente de luz azul, como LED azules o luz solar. Durante este paso aparecen algunas bandas precipitadas. Estas bandas tienen una correlación directa con la concentración de ADN y el gel puede ser digitalizado en un escáner de oficina con el fin de cuantificar el ADN.
Para el gel de poliacrilamida, se prepara un gel de poliacrilamida no desnaturalizante. A continuación, el gel se carga con las muestras y se inicia el proceso de electroforesis. SYBR Green I se diluye a 1,2X y las soluciones NBT de 20 milimolares ya están preparadas.
El gel se coloca en un recipiente de plástico y se añaden 16,75 milésimas de pulgada de SYBR Green I diluido y 325 milésimas de pulgada de NBT a 20 milimolares. Luego, el recipiente se cubre con Parafilm y papel de aluminio y se agita a 60 rpm durante 25 minutos. Finalmente, se retira el papel de aluminio y un Parafilm y el gel se expone a la luz solar o a una fuente de luz azul.
Para la cuantificación de bandas y las curvas de calibración, el gel se coloca en un escáner de oficina, luego la imagen se analiza utilizando un software de análisis de imágenes. Finalmente, se realiza un injerto de señal normalizada frente a concentración. Se hace un gel de agarosa.
Los pocillos se cargan con un plásmido que tiene resistencia a la ampicilina y el gel se corta en dos piezas, cada una de las cuales se tiñe con una tinción diferente. A continuación, se extrae la banda del plásmido y se transforma mediante transformación química en células competentes con medios que contienen ampicilina. Se prepara un gel de agarosa al 1% en tampón TAE 1X y se carga con cuatro microlitros de plásmido a unos 100 nanogramos por microlitro.
A continuación, el gel de la cámara de electroforesis se hace funcionar a 100 voltios durante una hora. La mitad del gel se tiñe con el método SYBR Green I y NBT y la otra mitad con el método SYBR Green I UV. Para el gel de agarosa, el método SYBR Green I NBT se realiza utilizando SBYR Green I a una concentración de 1,2X y NBT a 2 milimolares.
El gel se coloca en un recipiente de plástico y el volumen de la solución se escala para cubrir el gel y el tiempo de agitación se extiende a una hora. En el caso de los geles de agarosa, el método SYBR Green I de uso común se realiza cubriendo el gel con 1X solución de SYBR Green I y agitando durante una hora. A continuación, el gel se expone a un transiluminador UV para la visualización de la banda durante dos minutos.
Una vez teñido el gel, se corta la banda del plásmido con un bisturí y se extrae el plásmido con un kit de extracción comercial. El ADN se normaliza a 9,1 nanogramos por microlitro para transformar la bacteria Escherichia coli XL 10 químicamente competente. Por último, se cuentan las colonias.
Se calculan las unidades formadoras de colonias. El resultado se injerta y se comparan los resultados obtenidos con SYBR Green I NBT y SYBR Green I UV. Aparece un precipitado de formazano púrpura donde se encuentra el ADN.
En el experimento se cargó una escalera de ADN para hacer una curva de calibración con un límite de detección de 192 picogramos a 1.500 pares de bases. El uso de geles de agarosa permite la recuperación de la muestra utilizando un kit disponible en el mercado y no interfiere con la extracción. Cierta recuperación utilizando este método con LED azul da como resultado una mejor calidad en comparación con el SYBR Green I que usa transiluminador.
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Este método permite la tinción selectiva y la cuantificación de ADN en geles utilizando una solución de SYBR Green I/Nitro Blue Tetrazolium. El proceso requiere un equipo mínimo, lo que lo hace adecuado para aplicaciones de campo.
Este método de tinción de ADN permite la visualización directa y la cuantificación de ácidos nucleicos sin necesidad de equipos especializados, lo que favorece una validación rápida del blanco en entornos con recursos limitados. Al eliminar la dependencia de transiluminadores UV, reduce los riesgos de seguridad y la complejidad operativa en los flujos de trabajo de descubrimiento temprano. El enfoque mejora la confianza predictiva mediante una correlación reproducible de la señal basada en colorantes con la concentración de ADN, facilitando decisiones de avance o descarte en los procesos de identificación de compuestos prometedores.
El método se integra en el continuo de descubrimiento que va desde la extracción de ácidos nucleicos hasta la validación de ensayos funcionales, especialmente en contextos donde el acceso a equipos es limitado o se requiere una iteración rápida.