Name: Un método de transposición eficiente In Vitro por un sistema de belleza durmiente transcripcionalmente regulada en un Vector lentivirales defectuosa integración (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-12T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 13 s
Description: Aprende a integrar genes de interés en el genoma humano de células primarias mediante el sistema Sleeping Beauty regulado transcripcionalmente en vectores lentivirales defectuosos en integración. Este protocolo utiliza queratinocitos primarios humanos y análisis de citofluorimetría para validar la transposición estable.

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Agradecemos a Prof. Zappavigna, Universidad de Módena y Reggio Emilia, Módena, Italia por facilitarnos el pCCL-PGKrtTA2S-plásmido M2. También reconocemos Prof Z. Ivics (Instituto de Paul Ehlrich, Langen, Alemania) y Prof. Z. Izvak (Max Delbruck centro de Medicina Molecular, Berlín, Alemania) para plásmidos pCMVSB100X y pT2/BH. Este trabajo fue apoyado por DEBRA internacional y Ministerio de Universidad e investigación.

1. los plásmidos empleados
Nota: Plásmido pCCL-PGKrtTA2S-M2 fue amablemente proporcionado por Prof. Zappavigna (Universidad de Modena y Reggio Emilia, Módena, Italia). El plásmido de pCMVSB100X llevando la secuencia de codificación de la transposasa hiperactiva y el plásmido de transposon pT2/BH fueron amablemente proporcionadas por Prof Z. Ivics (Instituto de Paul Ehrlich, Langen, Alemania) y Prof. Z. Izvak (Max Delbruck centro de Medicina Molecular, Berlín, Alemania).
<ol><li>De todo clonado en Escherichia Coli (e. coli), siga la estrategia de clonación del proceso de elección y enzima de la restricción o amplificación por PCR del fragmento a ser clonados. Nota: La tabla 1 resume todos la plásmidos empleada en el presente Protocolo. Se ofrecen una descripción y las referencias de cada plásmido.</li>
</ol>2. producción del vector viral
Nota: Todos los vectores virales se producen en una campana de biohazard en un nivel de contención de bioseguridad BSL2, según normas institucionales.
<ol><li>Células HEK293T adherentes en cultivo en medio de Eagle modificado de Dulbecco suplementado con 10% de suero HyClone, 100 U/mL de penicilina-estreptomicina y glutamina 2 mM.</li>
	<li>Día 0: Preparar cinco preparación viral placas de 15 cm y semilla 5.5x106 células en 30 mL de medio.</li>
	<li>Día 1: transfección<ol>
<li>Antes de comenzar la transfección, preparar 100 mL de solución salina 2 x HEPES buffer (HBS): NaCl (5 M) 5,6 mL HEPES (1 M) 10,0 mL Na2HPO4 (0,5 M) 0,3 mL Estéril de agua mL 84,1 Ajustar el pH a 7.1 con 37% HCl. Nota: 2 x HBS pueden almacenarse a 4 ° C. Un pH exacto es muy importante para la transfección eficiente. El rango de pH óptimo es de 7.10 a 7.12.</li>
		<li>Retirar el medio y añadir 22,5 mL/placa de fresco mediano 4 h antes de la transfección.</li>
		<li>Transfectar las células HEK293T con el plásmido de la transferencia, el plásmido de empaquetado de pMD.Lg/pRRE.D64VInt, el plásmido pMD2.G de codificación envolvente y pRSV-Rev (tabla 1) según la siguiente cantidad/placa: transferencia de μg de plásmido 25.00 pMD.Lg/pRRE.D64VInt 16.25 μg pMD2.G 8.75 μg pRSV-Rev 6,25 μg Nota: El plásmido DNAs se preparan según el protocolo de CsCl descrito por Maniatis22 o mediante un kit de purificación del plásmido libre de endotoxinas.<ol>
<li>Suspender 56.25 μg de DNA (mezcla de 4 plásmidos) de 1,125 mL de agua estéril y añadir 125 μl de 2.5 M CaCl2 (solución A).</li>
			<li>Añadir a un tubo de centrífuga cónico de 15 mL estéril (solución B) 1,250 mL de 2 x HBS.</li>
			<li>Añadir solución un 1,250 mL a B (1,250 mL) gota a gota mientras burbujea con una pipeta de 1 ó 2 mL (solución de transfección, volumen total 2,500 mL).</li>
			<li>Incubar por 20 min a temperatura ambiente (RT).</li>
			<li>Usando una micropipeta P1000, distribuir todo de la solución de transfección (2,500 mL) a la monocapa celular gota a gota.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Incubar durante una noche en una incubadora de cultivo celular a 37 ° C, 5% CO2.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Día 2: Quite el medio y añadir 15 mL de medio fresco (vea el paso 2.1).</li>
	<li>Día 3: Recoger y concentrar el sobrenadante que contiene partículas lentivirales.<ol>
<li>Recoger sobrenadante (~ 70 mL) de todos (n = 5) placas de células transfected, filtrar a través de un 0.45 μm PESS filtrar y llenar 2 tubos de polyallomer (1 pulgadas x 3.5 pulgadas) / viral preparación.</li>
		<li>Concentrar las partículas de vector por ultracentrifugación a 106.000 g x 2,5 h, a 15 ° C con freno.</li>
		<li>Inmediatamente después de dejar la ultracentrifugación (para evitar la resuspensión del precipitado en el tubo), suavemente Vierta el sobrenadante en un recipiente que contiene 10% de lejía y suspender las pastillas apenas visibles 2 en 100 μl de PBS 1 x (+ 1% BSA). Esto es normal como el pellet es claro y muy pequeñas. Utilizar el vector concentrado recién preparado o alícuota y almacenar las preparaciones virales a-80 ° C. PRECAUCIÓN: El sobrenadante contiene partículas lentivirales que deben ser blanqueadas minuciosamente antes de deshacerse de los residuos de riesgo biológico.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Para valorar la preparación de vectores virales, utilice un kit de Inmunocaptura p24 Gag de VIH-1 según protocolo del fabricante. Nota: Para estandarizar la producción de vectores virales, podrían emplearse reactivos basados en liposomas. Sin embargo, el título del vector viral es altamente dependiente en la eficiencia de transfección y pureza del ADN del plásmido.</li>
</ol>3. transducción de líneas celulares humanas (por ejemplo, las células HeLa)
Nota: Las células HeLa son cultivadas en medio modificado Eagle de Dulbecco suplementado con 10% de suero fetal de ternera, 100 U/mL de penicilina-estreptomicina y 2 mM glutamina. La tabla 1 resume todos los vectores empleados en el presente Protocolo. Se proporciona una descripción para cada vector. Transducción de células HeLa permite la verificación de la regulación transcripcional de la transposasa de SB en la mejor combinación de dosis de los dos vectores IDLV. Variación de dosis IDLV puede estar relacionado con vector valoración de partícula y tipo de la célula blanco.
<ol><li>Día 0: Semilla 2 x 105 células en 3 mL de medio para cada pocillo de una placa de 6 pozos. Preparar 4 pozos.</li>
	<li>Día 1: Transducción de células HeLa.<ol>
<li>Para cada condición, diluir vectores lentivirales para un volumen final de 1 mL medio (ver nota anterior) en presencia de 10 μL de polibreno (concentración final 8 μg/mL): Dilución para el pozo #1: burlarse de células transduced (control negativo). Dilución para el pozo #2: vector IDLVTKSB (2.600 ng de p24). Dilución para los pozos #3, #4: vector IDLVTKSB (2.600 ng de p24) + IDLVrtTA2s-vector M2 (9.600 ng de p24).</li>
		<li>Retire el medio de cada pozo donde las células HeLa fueron plateadas en el día 0 y agregar diluciones de vectores lentivirales para el correspondiente bien.</li>
		<li>Spinoculate la placa de 6 pozos en 754 x g durante 45 minutos a 20-25 ° C y entonces traslado la placa de 6 pozos a una incubadora de cultivo celular en 37 ° C y 5% CO2.</li>
		<li>Después de 6 h, sustituir los vectores que contienen medio por medio fresco en todos los pozos y añadir doxiciclina a 1 μM en el pozo #4. Poner la placa en una célula cultura la incubadora a 37 ° C durante 48 h.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Día 3: Preparación de pellets celulares para extracción de RNA.<ol>
<li>Antes de desmontar las células, prepare una solución de trabajo de tripsina (1 x): 2.5% tripsina (10 x) 5,0 mL 500 mM EDTA (concentración final = 5 mM) 0,5 mL 1 x PBS 44,5 mL</li>
		<li>Solución de trabajo de tripsina caliente a 37 ° C antes de usar. Solución de trabajo de tripsina a 4 ° C.</li>
		<li>Medio de quitar y lavar las células con PBS 1 x. Agregar 0,5 mL de solución de trabajo de tripsina con 37 ° C en cada pocillo e incubar a 37 ° C por 7 min (en una incubadora de cultivo celular).</li>
		<li>Después de la incubación, Añadir 0,5 mL de suero que contienen media a cada pocillo para inactivar células recogemos en un tubo de centrífuga y tripsina. Enjuagar bien una vez con 3 mL de PBS 1 x y Centrifugue la suspensión celular por 5 min a 240 x g.</li>
		<li>Lavar las células con 5 mL de 1 x PBS, centrifugar durante 5 min a 240 x g y descartar el sobrenadante. Use perdigones recién recogidos de la célula o almacenar a-80 ° C. Extraer ARN de pellets para realizar RT-PCR semicuantitativa (ver paso 6).</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. transducción de células primarias humanas (por ejemplo, queratinocitos)
Nota: Keratinocytes humanos primarios se siembran sobre 3T3-J2 irradiados letalmente células (capa de alimentador)23, un amable regalo de Yan Barrandon (EPFL, Lausana, Suiza).
<ol><li>Crecer células de ratón Swiss 3T3-J2 en modificado Eagle suplementado de Dulbecco con 10% suero bovino de donantes, 50 U/mL de penicilina-estreptomicina y glutamina 4 mM (3T3 medio).</li>
	<li>Crecimiento de queratinocitos plateado en células 3T3-J2 irradiados letalmente cFAD, medio de Eagle modificado de Dulbecco y mezcla de medios Ham F12 (3:1) que contenga suero fetal bovino (10%), penicilina-estreptomicina (1%), glutamina (2%), insulina (5 μg/mL), adenina ( de 0.18 m m), hidrocortisona (0,4 μg/mL), la toxina del cólera (0.1 nanómetro) y la triyodotironina (2 nM).</li>
	<li>Día 0: Semilla 3 x 105 letalmente irradiadas las células 3T3-J2, previamente diluidas en medio 3T3 a una concentración final de 1 X 105 células/mL, en cada pocillo de la placa de 6 pozos. Preparar 9 pozos.</li>
	<li>Día 1: Transducción de los queratinocitos primarios Nota: Transducción de keratinocytes permite cuantificación de la regulación transcripcional de la transposasa de SB en la mejor combinación de dosis de los dos vectores IDLV (qRT-PCR) y verificar la integración de GOI (GFP) en las células diana (cytofluorimetric Análisis).<ol>
<li>Antes de desmontar las células, preparar la solución de trabajo de la tripsina: 0.5% tripsina-EDTA (10 x) 5,0 mL 500mM EDTA (concentración final = 5 mM) 0,5 mL 1 x PBS 44,5 mL</li>
		<li>Solución de trabajo de tripsina caliente a 37 ° C antes de usar. Solución de trabajo de tripsina a 4 ° C.</li>
		<li>Para desasociar subconfluente queratinocitos en cultivo, quiten medio las células con PBS 1 x y añadir 1 mL de solución de trabajo de tripsina precalentado a cada pocillo. Incubar a 37 ° C durante 15 min en la incubadora de la cultura de célula.</li>
		<li>Después de la incubación, resuspender las células de un pozo bien y transferir la suspensión de células a un tubo de centrífuga que contiene 2 mL de suero que contiene medio (si muchas células estén fijadas, incubar durante un minuto adicional a 37 ° C). Enjuagar bien una vez con 3 mL de 1 x PBS o medio fresco y añadir la solución de enjuague para el tubo de centrífuga con la suspensión de células.</li>
		<li>Centrifugar durante 5 min a 580 x g y descartar el sobrenadante.</li>
		<li>Lavar las células con 5 mL de 1 x PBS, centrifugar durante 5 min a 580 x g y descartar el sobrenadante.</li>
		<li>En un tubo de polipropileno de 15 mL, diluir 1.6x105 keratinocytes en 1 mL de medio de cFAD, una dilución para cada condición.</li>
		<li>Diluir vectores lentivirales en 1 mL de medio de cFAD en presencia de 20 μL de polibreno (concentración final de 8 μg/mL en un volumen final de 2 mL): Diluciones para los pozos #1, #2, #3: burlarse de células transduced (control negativo sin vectores). Diluciones para los pozos #4, #5: vectores IDLVTKSB (13.000 ng de p24) + IDLVrtTA2s-vector M2 (48.000 ng de p24). Diluciones para los pozos #6, #7, #8, #9: vector IDLVTKSB (13.000 ng de p24) + IDLVrtTA2s-vector M2 (48.000 ng de p24) + vector IDLVT2 (9.160 ng de p24).</li>
		<li>Transducir las células en suspensión mediante la adición de cada dilución de vectores lentivirales (1 mL) a la correspondiente suspensión de queratinocitos (1.6x105 keratinocytes en 1 mL).</li>
		<li>Retire el medio de las células 3T3-J2 irradiados letalmente sembradas en el día 0 y placa transduced queratinocitos (1.6x105 keratinocytes en 2 mL) en ellos. Después transducing bien proceder con la siguiente.</li>
		<li>Incubar a 25 ° C por 30 min y luego se transfieren las células a 37 ° C en la incubadora de cultivo celular de 6 h. Nota: No spinoculate queratinocitos primarios, como la viabilidad y proliferación serán fuertemente afectados.</li>
		<li>Después de 6 h, añadir 1 mL de medio de cFAD a cada pocillo. Añadir doxiciclina μM 1 (concentración final) en los pozos #5, #8 y #9. Volver a las células a 37 ° C.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Día 2: Reemplazar cFAD mediano con 3 mL de medio KC con EGF de 10 ng/mL.</li>
	<li>Día 3: Trypsinize y lavar las células de los pozos #1, #4 y #5 como se describe antes (véase 4.4.1 a 4.4.6). Congelación de gránulos de la célula a-80 ° C para extraer ARN total para análisis de qRT-PCR (ver paso 7).</li>
	<li>Trypsinize células de pozo #2, #6 y #8 como se describe en pasos 4.4.1 a 4.4.5 y realizar análisis cytofluorimetric para la expresión de GFP (ver paso 5).</li>
	<li>Mantener la cultura de los pozos #3, #7 y #9 para doblajes de al menos 3-4, suficientes para diluir no integrados IDLVT2 vector (5 días de keratinocytes humanos primarios sobre capa de alimentador).</li>
	<li>Día 6: Aproximadamente 5 días post transducción, trypsinize las células (ver pasos 4.4.1 a 4.4.5) de los pozos #3, #7 y #9 para realizar análisis de cytofluorimetric para la expresión de GFP (ver paso 5). Nota: Eficiencia de sincronización y transducción de experimento están influenciados altamente por tipo la célula primaria y por la variabilidad de muestras colectadas.</li>
</ol>5. Cytofluorimetric análisis de transduced queratinocitos primarios
Nota: Un citómetro de flujo configurado un láser azul (488 nm), un láser rojo (633 nm) y filtros para la detección de la fluorescencia de GFP y APC es empleada (véase Tabla de materiales).
<ol><li>Discriminar los queratinocitos de la capa de alimentador 3T3-J2, etiqueta transduced queratinocitos separados en día 3 y 6 (ver pasos 4.7 y 4.9) con mouse APC monoclonal-anticuerpo conjugado de anti-alimentador.<ol>
<li>Preparar 4 mL de buffer para cada muestra la coloración: 5% FBS 200 ΜL 500 mM EDTA (concentración final = 2.5 mM) 20 μL ΜL de PBS 1 x 3780</li>
		<li>Lavar las células separadas con 1 mL de tampón de tinción. Centrifugar durante 5 min a 580 x g y descartar el sobrenadante.</li>
		<li>En un tubo para la adquisición de la citometría de flujo, suspender 5 x 104 células en 100 μL de tampón de tinción y añadir 2 μL de anticuerpo anti-alimentador (1:50). Mezclar bien e incubar durante 30 min en hielo en la oscuridad.</li>
		<li>Después de 30 min, lavar con 2 mL de tampón de tinción. Centrifugar durante 5 min a 580 x g y descartar el sobrenadante. Resuspender en 200 μL de tampón de tinción.</li>
		<li>Adquirir señales de APC y GFP por cytofluorimetric análisis18. La fracción de células GFP+ de la población de células APC– indica queratinocitos transduced. Nota: Si se desea, fijar la muestra teñida antes de citometría de flujo con paraformaldehído al 2% en PBS 1 x y almacenar a 4 ° C en la oscuridad hasta la ejecución.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Analizar datos de citometría de flujo mediante el trazado de la relación entre el porcentaje de GFP+las células en el extremo (5 días) y el porcentaje de GFP+células 2 días post transducción, normalizado a nivel residual de IDLVT2-transduced células.</li>
</ol>6. semi-cuantitativa de RT-PCR
Nota: Use un termociclador PCR.
<ol><li>Extracto total de RNA de transduced o controlar las células usando un kit de purificación de RNA, según protocolo del fabricante. Nota: El ARN Total se puede almacenar a-80 ° C.</li>
	<li>Sintetizar el cDNA en una reacción de 20 μl usando 100 ng de RNA total y un kit de la transcriptasa reversa, según protocolo del fabricante. Nota: cDNA puede ser almacenado a-20 ° C.</li>
	<li>Diseño de cebadores específicos para SB100X, rtTA2s-M2 y GAPDH (un gen de la limpieza). Diseños sugeridos: SB hacia delante la cartilla: 5'-GCCACTCAGCAAGGAAGAAG-3' SB inversa cartilla: 5'-GTGTTGGAAGACCCATTTGC-3' rtTAM2 hacia delante la cartilla: 5'- GACGACAAGGAAACTCGCTC-3' rtTAM2 inversa cartilla: 5'-TTACCCGGGAGCATGTCAA-3' GAPDH adelante cartilla: 5'-GACCACAGTCCATGCCATCAC-3' GAPDH inversa cartilla: 5'––CCACCACCCTGTTGCTGTAG 3'</li>
	<li>Realizar PCR en un volumen final de reacción de 50 μl. En particular, montar en cada tubo PCR la reacción siguiente: cDNA (dilución 1:5) (desde el paso 6.2) 1.00 μl Adelante la cartilla (stock de 10 μm) 1.00 μl Revertir la cartilla (stock de 10 μm) 1.00 μl dNTPs (10 acciones de μm) 1.00 μl Buffer (+ MgCl2) (10 x stock) 5,00 μl Taq polimerasa (stock de 5 U/μL) 0.25 μl Μl de agua estéril 40,75</li>
	<li>Utilizar el siguiente programa en el termociclador: 1 ciclo a 95 ° C por 5 min luego proceder a 95 ° C por 30 s, 58 ° C por 30 s y 72 ° C por 30 s para 34 ciclos de SB100X, 32 ciclos de rtTA2s-M2 y 25 ciclos de GAPDH.</li>
	<li>Preparar el gel de agarosa al 1%. Disolver 1 g de agarosa en 100 mL de TBE 1 x (10 x población diluido en agua estéril), en un vaso de precipitados o matraz. Derretir en el microondas, se arremolinan cada minuto hasta que la agarosa se disuelva completamente. Enfriar la agarosa fundida hasta que llegue aproximadamente a 50 ° C y luego añadir 5 μl de bromuro de etidio (bolsa de 10 mg/mL). Verter la agarosa fundida en una bandeja de gel montado con un peine, gel de fundición de.</li>
	<li>Muestras (10 μl) de la carga en el gel de agarosa y realizar la electroforesis.</li>
	<li>Si lo desea, adquirir imagen de gel y realizar análisis densitométrico en las bandas PCR.</li>
</ol>7. RT-PCR cuantitativa (qRT-PCR)
Nota: Se emplea un sistema comercial de detección de secuencia. Cebadores PCR y sonda 6-carboxyfluorescein (FAM) para el gliceraldehído 3-fosfato deshidrogenasa (GAPDH) son adquiridos comercialmente.
<ol><li>Para retro-transcripción, vea paso 6.2.</li>
	<li>Utilizar software para diseño de primers y sondas específicas para SB100X. Diseño sugerido: SB.2 hacia delante la cartilla: 5'-GAAGAAGCCACTGCTCCAAAA-3', SB.2 inversa cartilla: 5'-CCCCATGTGCAGTTGCAA-3' sonda de SB FAM: 5'-CATAAGAAAGCCAGACTACGG-3'</li>
	<li>Realizar PCR en tiempo real en placas de 96 pocillos con un PCR Master Mix y mezcla de cebadores + sonda, en un volumen final de reacción de 25 μl. En particular, considere la siguiente reacción para cada bien: cDNA (1:10 dilución en agua estéril) 1.00 μl 2 μl de la Master Mix 12.50 Cebadores + sonda x 20 1.25 μl de la mezcla Μl de agua estéril 10.25 Nota: Realice todas las reacciones por triplicado. Para evitar errores de pipeteo, preparar una mezcla de por lo menos n + 3 reacciones (sin cDNA). Alicuotar con una pipeta multicanal.</li>
	<li>Ejecutar mediante el siguiente programa PCR en tiempo real: 1 ciclo a 95 ° C por 10 minutos, luego de 40 ciclos de 95 ° C por 15 s y 60 ° C durante 1 min y mantener a 4 ° C.</li>
	<li>Analizar datos de qRT-PCR, normalizando la expresión relativa (valor RQ) de la SB100X al nivel de la GAPDH de la misma muestra de cDNA por la cuantificación de 2–CT ΔΔ, utilizando el software de análisis de datos típicos.</li>
</ol>

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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Aquí, describimos una metodología ampliamente accesible para integrar estable un GOI en el genoma de las células de la blanco de La bella durmiente-mediada por transposición. Aunque el sistema de SB fue desarrollado para proporcionar un método nonviral para la edición del genoma, una entrega eficiente de la maquinaria de integración (transposasa y T2 transposon) es obligatoria. Por lo tanto, para utilizar el sistema de SB en células primarias apenas transfectable, una entrega viral de los componentes del SB fue ...

La transposasa hiperactiva de SB100X juntada al transposon basada en T2 ya se ha utilizado en preclínica gene terapia aplicaciones1,2,3, genoma modificaciones4,5, y célula de vástago pluripotent inducidas (iPSC) reprogramación6,7. Típicamente, los componentes del SB son provistos transitoriamente por transfección del plásmido y un fuerte promotor constitutivo conduce la expresión de la transposasa. Sin embargo, a pesar de los nuevos métodos de mejora de la transfección, entrega del sistema de dos componentes sigue siendo un desafío para muchas aplicaciones. Así, el desarrollo de un nuevo protocolo de entrega tiene creciente interés. Además de métodos de transfección de plásmidos8 y mRNA9, entrega viral basado en adenoviral10,11, adeno-associated virus (AAV)12, Baculovirus13gammaretroviral14 y vectores lentivirales15 ha sido propuesto en el pasado. En particular, el sistema de elección debe garantizar una entrega transitoria de los componentes del SB sin integración del vector viral. Sin embargo, la expresión constitutiva de la transposasa plantea preocupaciones de seguridad debido al riesgo de rehopping incontrolable de los transposones.
Por lo tanto, la regulación transcripcional de SB100X por un refinado sistema de Tet-ON es el primer desafío. Se clona un promotor TTE responden modificado, obtenido mediante la sustitución del original promotor desarrollado mínimo citomegalovirus (CMV) con el promotor mínimo (-81) del gen Timidine quinasa (TK) del Virus del Herpes simple 1 (HSV-1)16, aguas arriba de la CDNA de SB100X (pTetOTKSB100X). La transformada inversa-tetraciclina-transactivator rtTA2s-M217 se expresa bajo el control del promotor constitutivo fuerte (fosfoglicerato promotor, PGK) clonado en un plásmido diferentes (pCCL-PGKrtTA2S-M2). Cuando se añade al medio de cultivo, dox une el rtTA2s-modulador M2 y anclar el promotor de Tet o complejo, dando como resultado una inducción bien regulada de SB100X expresión18.
El segundo gran reto surge de la ineficiente de la transfección de células primarias humanas por varios métodos físicos y químicos. Para administrar transposasa en células humanas resistentes a la transfección, la SB100X y la rtTA2s-cassettes de expresión M2 vienen en dos integración vectores lentivirales defectuoso (IDLVs)19: IDLVTKSB y IDLVrtTA2s- M2. Vectores virales se producen transitoriamente como tercer vectores de generación de células HEK293T20 y pseudotyped con la glicoproteína G del Virus de la estomatitis Vescicular (VSV-G), que le confiere un amplio espectro de la infección. Las partículas de vector son concentradas por ultracentrifugación y graduadas por Inmunocaptura p24 de HIV-1 Gag. Para transducir las líneas celulares y células primarias, las partículas de vector son complexed con polibreno y se incuban con las células Diana en la presencia o ausencia de dox. Activación dependiente de la droga de SB100X expresión en células transduced se mide por RT-PCR (qRT-PCR) cuantitativa18.
Una vez que se demuestra expresión regulada de Tet SB100X, transposición de lo GOI (p. ej., proteína verde fluorescente, GFP) en el genoma de la célula objetivo sigue los eventos moleculares claramente esquematizados por Bak y Mikkelsen21. Un tercer IDLV vector llevar un casete de expresión para el GOI clonado entre el IRs transposon T2 (IDLVT2) tiene que ser construido y empaquetado como se mencionó anteriormente. Por último, los tres vectores IDLV pueden utilizarse para transducir las células humanas (por ejemplo, queratinocitos primarios) en vitro e integrar el GOI en presencia de doxiciclina18.

<table><tbody><tr><td>Dulbecco' Águila modificada' s con 4,5 g/L de glucosa sin L-Glutamina</td><td>Lonza</td><td>BE12-614F Medio de</td><td>cultivo celular.</td></tr><tr><td>HyClone Fetal Bovine Serum (EE. UU.), caracterizado</td> GE <td>Healthcare Life Sciences</td><td>SH30071.03</td><td>Suero utilizado HEK293T cultivo celular para la producción de partículas lentivirales.</td></tr><tr><td>Penicilina 10.000 UI/ml Estreptomicina 10.000 UI/ml</td><td>Lonza</td><td>DE17-602E</td><td>Reactivos para medio de cultivo celular.</td></tr><tr><td>L-Glutamina 200mM</td><td>Lonza</td><td>BE17-605E</td><td>Reactivo para medio de cultivo celular.</td></tr><tr><td>Cloruro de sodio (NaCl)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S7653</td><td>Reactivo para la preparación de HBS 2X.</td></tr><tr><td>Tampón HEPES, Stock 1M en solución salina normal</td> Reactivo <td>Lonza</td><td>BE17-737E</td><td>para la preparación de HBS 2X.</td></tr><tr><td>Hidrogenofosfato disódico dihidratado (Na2HPO4&middot; 2H2O), 99,5%</td><td>Reactivo Merck</td><td>106580</td><td>para la preparación de HBS 2X.</td></tr><tr><td>Ácido clorhídrico - Reactivo ACS 37% (HCl)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>320331</td><td>Reactivo para la preparación de HBS 2X.</td></tr><tr><td>Agua estéril para inyección</td><td>Fresenius Kabi-Reactivo</td><td></td> <td>para la preparación de HBS 2X.</td></tr><tr><td>0,45 y micro; m Filtro PESS</td><td>Whatman</td><td>10462100</td><td>Filtros utilizados para eliminar los restos celulares del sobrenadante viral.</td></tr><tr><td>Tubos de polialómero Beckman</td><td>Coulter</td><td>326823</td><td>Tubos para la concentración de vectores IDLV por ultracentrifugación.</td></tr><tr><td>PBS-1X sin Ca, Mg</td><td>Lonza</td><td>BE17-516F</td><td>Tampón para lavado celular y resuspensión de partículas lentivirales.</td></tr><tr><td>Albúmina sérica bovina (BSA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2153</td><td>(Opcional) Tampón para la resuspensión de partículas lentivirales.</td></tr><tr><td>Kit de inmunocaptura HIV-1 Gag p24</td><td>Perkin Elmer</td><td>NEK50001KT</td><td>Kit para la valoración de partículas IDLV.</td></tr><tr><td>Reactivo de 107689 Polybrene</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td>para mejorar la eficiencia de la transducción.</td></tr><tr><td>Tripsina (10X) 2,5% en HBSS sin Ca, Mg</td><td>GIBCO</td><td>BE17-160E</td><td>Reactivo para separar células HeLa (solución madre, a diluir).</td></tr><tr><td>Sal disódica de ácido etilendiaminotetraacético (EDTA)</td><td>100938B</td><td>AnalaR BDH</td><td>Reactivo para la preparación de soluciones de trabajo de tripsina.</td></tr><tr><td>0,5% Tripsina-EDTA, sin rojo de fenol (10X)</td><td>GIBCO</td><td>15400-054</td><td>Reactivo para desprender queratinocitos (solución madre, a diluir).</td></tr><tr><td>Suero bovino donante, origen neozelandés</td><td>GIBCO</td><td>16030-074</td><td>Suero para el cultivo celular 3T3-J2 de ratón suizo (capa alimentadora).</td></tr><tr><td>Jamón' s F12 media</td><td>GIBCO</td><td>21765</td><td>Medio para queratinocitos.</td></tr><tr><td>Suero fetal bovino</td><td>Lonza</td><td>DE14-801F</td><td>Suero para medio de cultivo celular HeLa.</td></tr><tr><td>Suero fetal bovino, calificado, origen australiano</td><td>GIBCO</td><td>10099-141</td><td>Suero para medio de cultivo de queratinocitos primarios humanos.</td></tr><tr><td>Insulina de páncreas bovino</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I5500</td><td>Reactivos para el crecimiento de queratinocitos.</td></tr><tr><td>Adenina</td><td>VWR</td><td>1152-25</td><td>Reactivos para el crecimiento de queratinocitos.</td></tr><tr><td>Hidrocortisona</td><td>VWR</td><td>3867-1</td><td>Reactivos para el crecimiento de queratinocitos.</td></tr><tr><td>Toxina del cólera de Vibrio cholerae</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C8052</td><td>Reactivos para el crecimiento de queratinocitos.</td></tr><tr><td>Triyodotironina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T5516</td><td>Reactivos para el crecimiento de queratinocitos.</td></tr><tr><td>Reactivos biológicos humanos EGF</td><td>Austral</td><td>GF-010-9</td><td>para el crecimiento de queratinocitos.</td></tr><tr><td>Anticuerpo anti-Feeder monoclonal conjugado con APC de ratón</td><td>Miltenyi Biotech</td><td>130-096-099</td><td>Para etiquetar la capa de alimentación.</td></tr><tr><td>RNeasy Plus Mini Kit</td><td>Qiagen</td><td>74134</td><td>Kit de purificación de ARN.</td></tr><tr><td>SuperScript III Transcriptasa inversa</td><td>Life Technologies 18080051</td><td></td><td>kit de transcriptasa inversa.</td></tr><tr><td>Mezcla de desoxinucleótidos, 10 mM (dNTP)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D7295</td><td>Reactivo para PCR semicuantitativa.</td></tr><tr><td>Reactivo ultrapuro de agua destilada sin DNasa/RNasa</td><td></td><td></td> <td>para PCR semicuantitativa y para qRT-PCR.</td></tr><tr><td>GoTaq G2 Polimerasa de arranque en caliente</td><td>Promega</td><td>M740B</td><td>Taq polimerasa.</td></tr><tr><td>Agarosa, para biología molecular</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9539</td><td>Reactivo para electroforesis en gel de agarosa.</td></tr><tr><td>Tampón UltraPure TBE, 10X</td><td>Invitrogen</td><td>15581028</td><td>Reactivo para electroforesis en gel de agarosa, a diluir (1X) en ddH2O.</td></tr><tr><td>Bromuro de etidio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E1510</td><td>Reactivo para electroforesis en gel de agarosa.</td></tr><tr><td>Doxiciclina</td><td>: fármaco Sigma-Aldrich</td><td>D-9891</td><td>para inducir la expresión de transposasa en células HeLa y en queratinocitos</td></tr><tr><td>: TaqMan Universal PCR Master Mix</td>, <td>Applied Biosystem</td><td>4304437</td><td>TaqMan Universal PCR Master Mix, incluyendo cebadores y sonda.</td></tr><tr><td>Tubo centrífugo de polipropileno de alta claridad de 15 ml, fondo cónico, con tapón de rosca de sello de cúpula, tubos de</td><td>352096</td><td>Falcon Corning</td><td>estériles para la recolección de células y la preparación de dilución de vectores.</td></tr><tr><td>Placa de cultivo celular tratada con TC de 150 mm con rejilla de 20 mm,</td><td>Falcon estéril Corning</td><td>353025</td><td>placa de cultivo celular para producción viral.</td></tr><tr><td>Placa de cultivo celular multipocillo de fondo plano transparente de 6 pocillos, tratada con TC, con tapa, envuelta individualmente, Placa de cultivo celular estéril</td><td>Falcon Corning</td><td>353046</td><td>para la transducción de queratinocitos primarios humanos y HeLa.</td></tr><tr><td>Tubos de microcentrífuga Safe-Lock, volumen 1,5 mL</td><td>Eppendorf</td><td>0030 120.086</td><td>Tubos para la preparación de diluciones.</td></tr><tr><td>Tubos de microcentrífuga Safe-Lock, volumen 2 mL</td><td>Eppendorf</td><td>0030 120.094</td><td>Tubos para la preparación de diluciones.</td></tr><tr><td>Tubos de PCR de 0,2 ml con tapas planas, tubos sin RNasa, DNasa, ADN e inhibidores de PCR</td><td></td><td></td> <td>para PCR semicuantitativa.</td></tr><tr><td>Placa de reacción óptica rápida MicroAmp de 96 pocillos con código de barras, 0,1 ml</td><td>de biosistema aplicado</td><td>4346906</td><td>96 pocillos para qRT-PCR.</td></tr><tr><td>Tubo de Poliestireno de Fondo Redondo de 5mL, sin Tapa</td><td>BD Falcon</td><td>352052</td><td>Tubos para la adquisición de citometría de flujo.</td></tr><tr><td>Pipetas serológicas desechables, poliestireno, envueltas individualmente, estériles (diferentes volúmenes)</td>(<td>cualquiera)</td><td>-</td><td>pipetas para aplicaciones de cultivo de tejidos estériles.</td></tr><tr><td>Puntas de filtro, estériles y libres de RNasa, DNasa, ADN y pirógenos (diferentes volúmenes)</td> <td>(cualquiera)</td><td>-</td><td>Puntas de filtro para aplicaciones de biología molecular y colura de tejidos estériles.</td></tr><tr><td>Medidor de pH</td> <td>(cualquiera)</td><td>-</td><td>Equipo para la medición de HBS 2X pH.</td></tr><tr><td>PCR Termociclador</td> <td>(cualquiera)</td><td>-</td><td>Equipo para PCR semicuantitativa.</td></tr><tr><td>Equipo de electroforesis en gel de agarosa</td> <td>(cualquiera)</td><td>-</td><td>Equipo para la electroforesis en gel de agarosa de PCR semicuantitativa.</td></tr><tr><td>BD FACS Canto II 2LSR 4/2</td><td>BD-Citómetro</td> <td>de</td> <td>flujo.</td></tr><tr><td>7900HT Sistema rápido de PCR en tiempo real</td><td>Biosistema aplicado</td><td>7900HT</td><td>Equipo para qRT-PCR.</td></tr><tr><td>Centrífugas de sobremesa para el procesamiento eficiente de muestras en aplicaciones de cultivo celular, refrigeradas, con cubos de microplacas.</td><td>(cualquiera)</td><td>-</td><td>Centrífuga para el procesamiento de cultivos celulares y espinoculación.</td></tr><tr><td>Ultracentrífuga Optima L-90K equipada con rotor SW32TI</td><td>Beckman Coulter-Ultracentrífuga</td><td></td> <td>para la producción de partículas lentivirales.</td></tr><tr><td>Equipo para cultivo celular y laboratorio de biología molecular (por ejemplo, campana de flujo laminar de clase II diseñada para trabajos con materiales BSL2, incubadora de cultivos celulares, refrigeradores y congeladores (+4 &deg; C, -20 y grados; C, -80 y grados; C), micropipetas y pipete-aid).</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Batas protectoras de laboratorio, guantes, protección facial de acuerdo con las normas y reglamentos del Instituto, en particular para la producción y transducción de partículas lentivirales.</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

un método de transposición eficiente in vitro por un sistema de belleza durmiente transcripcionalmente regulada en un vector lentivirales defectuosa integración

An Efficient In Vitro Transposition Method by a Transcriptionally Regulated Sleeping Beauty System Packaged into an Integration Defective Lentiviral Vector

El transposón Durmiente (SB) es un sistema integrador no virales con eficacia demostrada para la transferencia génica y genómica funcional. Para optimizar la maquinaria de transposon de SB, se emplean una transposasa hiperactiva transcripcionalmente regulada (SB100X) y transposones basada en T2. Típicamente, la transposasa y transposon transitoriamente por la transfección del plásmido y SB100X expresión es conducida por un promotor constitutivo. Aquí, describimos un método eficiente para entregar los componentes de la SB a las células humanas que son resistentes a varios métodos de transfección física y química, para controlar la expresión de SB100X y estable integrar un gen de interés (GOI) a través de un "cortar y pegar" SB mecanismo. La expresión de la transposasa hiperactiva es estrechamente controlada por el sistema de Tet-ON, ampliamente utilizado para controlar la expresión génica desde 1992. El gen de interés es flanqueado por repeticiones invertidas (IR) de los transposones de T2. Ambos componentes SB vienen en vectores lentivirales defectuosos transitorio producidos en células HEK293T integración. Las células humanas, líneas celulares o células primarias del tejido humano, están en vitro transduced transitoriamente con vectores virales. Además de doxiciclina (dox, análogo de la tetraciclina) en el medio de cultivo, un ajuste fino de la transposasa expresión se mide y da lugar a una integración duradera del gen de interés en el genoma de las células tratadas. Este método es eficaz y aplicable a la línea celular (por ejemplo, las células HeLa) y células primarias (por ejemplo, keratinocytes humanos primarios) y así representa una valiosa herramienta para la ingeniería genética y transferencia de genes terapéuticos.

Utilizando el procedimiento presentado aquí, tres vectores IDLV llevar los componentes regulados de SB (SB100X, rtTA2S-transposon M2 y T2-GFP) eran empaquetados y brindar de manera eficiente y regular bien el sistema de SB en células humanas. Figura 1A se muestra un esquema para en vitro la transducción de las células HeLa, que fue realizada para evaluar la regulación transcripcional de la transposasa de SB con la mejor combinación de dosi...

Este protocolo describe un método para lograr la integración estable del gen de interés en el genoma humano por el sistema transcripcionalmente regulado de La bella durmiente . Preparación de la integración de vectores lentivirales defectuosos, la transducción en vitro de las células humanas y el análisis molecular de células transduced se divulgan.

Un método de transposición eficiente In Vitro por un sistema de belleza durmiente transcripcionalmente regulada en un Vector lentivirales defectuosa integración

The Sleeping Beauty (SB) transposon is a non-viral integrating system with proven efficacy for gene transfer and functional genomics. To optimize the SB ...

El objetivo general de este método es lograr la integración estable de un gen de interés en el genoma humano de células primarias mediante el sistema de la Bella Durmiente regulado transcripcionalmente empaquetado en vectores lentivirales defectuosos de integración. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la terapia génica, como la integración del gen de interés en las células primarias mediante el sistema de la Bella Durmiente. Las principales ventajas de esta técnica es que el sistema hiperactivo inducible de la Bella Durmiente está entregando de manera eficiente células primarias resistentes a varios métodos de transfección.La comprobante del procedimiento estará a cargo de Daniela Benati, posdoctorada en mi laboratorio. Antes del día de la transducción, los queratinocitos primarios humanos se cultivan como se describe en el protocolo de texto. Para separar los queratinocitos subconfluentes en cultivo, retire el medio, lave las células con PBS 1X y agregue una solución de trabajo de tripsina precalentada en un mililitro a cada pocillo.Incubar a 37 grados centígrados durante 15 minutos en la incubadora de cultivos celulares. Vuelva a suspender las células de un pocillo a fondo y transfiera la suspensión celular a un tubo de centrífuga que contenga dos mililitros de medio que contenga suero. Enjuague el pocillo una vez con tres mililitros de 1X PBS y agregue la solución enjuagada al tubo de centrífuga con la suspensión de celdas.Centrifugar a 580 veces g durante cinco minutos y desechar el sobrenadante. Lave las células con cinco mililitros de PBS 1X, centrifugue a 580 veces g durante cinco minutos y deseche el sobrenadante. En un tubo de polipropileno de 15 mililitros, diluir 1,6 veces 10 hasta el quinto queratinocitos en un mililitro de medio CFAD.Prepare una dilución para cada afección. Los tres vectores lentivirales defectuosos de integración o IDLV se prepararon anteriormente como se describe en el protocolo de texto. IDLVTKSB lleva las transposiciones hiperactivas SB100X reguladas por TET.IDLVrtTA codifica para el modulador e IDLVT2 lleva el gen de interés. GFP en este ejemplo flanqueado por repeticiones invertidas de transposón. Diluir los vectores lentivirales en un mililitro de medio CFAD en presencia de 20 microlitros de policereno como se indica en esta tabla.Uno, dos y tres son controles negativos sin vectores. Cuatro y cinco contienen IDLVTKSB e IDLVrtTA. Seis, siete, ocho y nueve contienen los tres vectores lentivirales.Transducir células en suspensión añadiendo cada dilución de vector lentiviral a la suspensión de queratinocitos correspondiente. Extraer el medio de las células alimentadoras 3T3-J2 irradiadas letalmente que se retiraron hace un día y colocar los queratinocitos transducidos en ellas. Después de transducir un pozo, proceda con el siguiente.Incubar a 25 grados durante 30 minutos. Luego transfiera las celdas a 37 grados durante seis horas. Después de seis horas, agregue un mililitro de medio CFAD a cada pocillo.Agregue un micromolar de doxiciclina a los pocillos cinco, ocho y nueve. Regrese las celdas a 37 grados centígrados. Posteriormente, procese las celdas de cada pocillo como se describe en el protocolo de texto.Para el análisis citofluorimétrico, los queratinocitos primarios transducidos desprendidos en el día tres y el día seis deben distinguirse de la capa alimentadora 3T3-J2 mediante el marcaje de las células con anticuerpo antialimentador conjugado APC monoclonal de ratón. Prepare cuatro mililitros de tampón de tinción para cada muestra combinando 5 % de FBS, 500 milimolares de EDTA y 1 vez más PBS. Lave las células desprendidas con un mililitro de tampón de tinción.Centrifugar a 580 veces g durante cinco minutos y desechar el sobrenadante. En un tubo para la adquisición de citometría de flujo, resuspender cinco veces 10 hasta la cuarta célula en 100 microlitros de tampón de tinción. Agregue dos microlitros de anticuerpo antialimentador en una dilución de uno a 50 y mezcle bien.Incubar en hielo en la oscuridad durante 30 minutos. Después de 30 minutos, lavar con dos mililitros de tampón tintante. Centrifugar a 580 veces g durante cinco minutos.Deseche el sobrenadante y vuelva a suspender en 200 microlitros de tampón de tinción. Utilice un citómetro de flujo configurado con un láser azul, un láser rojo y filtros para la detección de fluorescencia GFP y APC para adquirir señales APC y GFP. La fracción celular GFP positiva de la población de células APC negativas indica queratinocitos transducidos.Para realizar PCR en tiempo real, configure las reacciones por triplicado en una placa de 96 pocillos en un volumen de reacción final de 25 microlitros. Cada reacción contiene un microlitro de ADNc, 12,5 microlitros de mezcla maestra 2X, 1,25 microlitros de cebadores en mezcla de sonda 20X y 10,25 microlitros de agua estéril. Ejecute PCR en tiempo real de acuerdo con este programa de PCR, un ciclo a 95 grados Celsius durante 10 minutos, luego 40 ciclos de 95 grados Celsius durante 15 segundos y 60 grados Celsius durante un minuto y manténgalo a cuatro grados Celsius.Por último, analice los datos de PCR en tiempo real como se describe en el protocolo de texto. El análisis de la expresión de las células HeLa transducidas con dosis crecientes de transposiciones en vectores moduladores más o menos doxiciclina mostró que se requerían altas dosis de ambos IDLV para inducir fuertemente la expresión de SB100X. El análisis cuantitativo de la expresión de SB100X en células HeLa transducidas con vector transpuesto en presencia o ausencia del vector modulador reveló una activación de ocho veces en el fondo en presencia de doxiciclina.El sistema de la Bella Durmiente regulado transcripcionalmente también se puede utilizar en células primarias. La expresión de SB100X en queratinocitos transducidos con transposiciones y vectores moduladores mostró una activación de 15 veces en el estado apagado. El experimento de transposición realizado en queratinocitos transducidos con los tres vectores IDLV más o menos doxiciclina indicó que el 12% de las células tratadas con doxiciclina integraron de manera estable al menos una copia de GFP en su genoma.Una vez dominado, la transducción vital en las células primarias se puede realizar en ocho horas, el análisis citofluorimétrico en dos horas y el análisis de expresión en tres horas si se realiza correctamente. Al intentar este procedimiento, es importante recordar optimizar la combinación de dosis de vectores utilizada para transducir las células primarias y lograr el nivel de expresión más alto de las transposiciones inducibles de la Bella Durmiente. Siguiendo este procedimiento, se pueden realizar otros métodos, como la PCR cuantitativa y la PCR mediada por enlazadores, para responder a preguntas adicionales, como el número de copias de transposones por célula y la integración para el archivo del genoma.Después de su desarrollo, esta técnica allanó el camino para que el investigador en el campo de la terapia génica explorara la aplicación del sistema de la Bella Durmiente en la ingeniería de células clínicamente relevantes. Después de ver el video, debería tener una buena comprensión de cómo transducir primero los queratinocitos primarios con los vectores IDLV. En segundo lugar, medir la expresión de transposiciones hiperactivas sobre la condición de doxiciclina y, finalmente, seguir la transposición por citometría de flujo.No olvide que trabajar con vectores virales puede ser extremadamente peligroso, por lo que siempre se deben llevar consigo precauciones como el BCL para contener el nivel y el suministro desechable mientras se realizan estos procedimientos.

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Investigación

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Biología

En este protocolo se describe la producción, purificación y valoración de lentiviral vectores. Se presenta un ejemplo de entrega gen vector lentiviral mediada por neuronas cultivadas en la enseñanza primaria y astrocitos. Nuestros métodos pueden aplicarse también a otros tipos de...

La producción de vectores lentivirales de células transductoras del Sistema Nervioso Central

Source: Vijayraghavan, S., Kantor, B. A Protocol for the Production of Integrase-deficient Lentiviral Vectors for CRISPR/Cas9-mediated Gene Knockout in Dividing Cells. J. Vis. Exp. (2017).This video demonstrates the procedure for generating recombinant viral particles by transfecting embryonic kidney cells with plasmids encoding viral proteins and a gene of interest.

Generation of Recombinant Viral Particles Using Embryonic Kidney Cells

Este video describe la inyección pronuclear de vectores lentivirales en el espacio perivitelina de un embrión de ratón fertilizado. El lentivirus contiene el transgén, que se incorpora al genoma del embrión fecundado, dando lugar finalmente a ratones transgénicos.

Inyección de perivitelina basada en vectores lentivirales: un método para transducir el gen de interés en ovocitos de ratón unicelulares fertilizados

El sistema / Cas9 CRISPR ofrece el potencial para que la edición del genoma específico accesible y asequible para la comunidad científica. Este protocolo está destinado a demostrar cómo crear virus que Knockout un gen de interés utilizando el sistema / Cas9 CRISPR y, a continuación, inyectarlos estereotáxica en el cerebro del ratón adulto.

Proyectos, Embalaje y Entrega de alto título de CRISPR Retro y lentivirus vía estereotáxica Inyección

Describimos la estrategia de producción de vectores lentivirales integrasa deficientes (IDLVs) como vehículos para la entrega de CRISPR/Cas9 a las células. Con una capacidad para mediar la edición rápido y robusto gene en células, IDLVs actualmente un seguro y plataforma igualmente eficaz vector de genes en comparación con vectores competentes integrasa.

Un protocolo para la producción de vectores lentivirales integrasa deficientes para CRISPR/Cas9-mediated Gene Knockout en dividir las células

Aquí, presentamos un protocolo para promover la integración del transgén y la producción de ratones transgénicos fundador con alta eficacia por una simple inyección de lentivirales vector en el espacio perivitelino de un ovocito fertilizado.

Lentivirales mediación producción de ratones transgénicos: un método Simple y altamente eficiente para el estudio directo de los fundadores

Ratón huevos fertilizados y embriones de etapa temprana están protegidos por la zona pelúcida, una matriz de la glicoproteína que forma una barrera contra la entrega del gene. Este artículo describe un protocolo para perforar la zona con un láser para transducir las células embrionarias con vectores lentivirales y crear ratones transgénicos.

Entrega de Gene lentivirales asistida por láser ratón huevos fertilizados

A ADN epigenoma edición representa un potente enfoque terapéutico. Este protocolo describe la producción, purificación y concentración de vectores lentivirales all-in-one que el transgén CRISPR-dCas9-DNMT3A para aplicaciones de edición de epigenoma en células pluripotentes inducidas humanas (hiPSC)-derivado de las neuronas.

Plataforma de vectores lentivirales para la entrega eficiente de las herramientas de edición de epigenoma en humanos inducida por modelos de enfermedad derivados de células madre pluripotentes

Hemos desarrollado un nuevo enfoque de pérdida de función que implica la introducción e integración genómica de secuencias artificiales de micro-ARN en embriones de pollo mediante el uso de electroporación in ovo y el sistema de transposones Tol2. Esta técnica proporciona una metodología de eliminación de genes robusta y estable para estudios de la función de los genes durante el desarrollo.

Enfoque de pérdida de función en la retina embrionaria de pollo mediante el uso de la expresión transgénica mediada por transposones Tol2 de microARN artificiales

Utilizando el polímero catiónico de bajo costo polietilenimina (PEI), producimos partículas lentivirales para la expresión estable de shRNAs en células madre embrionarias humanas H9 (hESC) y células progenitoras neurales derivadas de H9 (NPC) transducidas transitoriamente con alta eficiencia.

Administración mediada por lentiviral de shRNAs a hESCs y NPCs usando polietileno de polímero catiónico de bajo costo (PEI)

Demostramos un protocolo paso a paso para la investigación de la función génica en macrófagos residentes en tejido peritoneal in vivo, utilizando vectores lentivirales.

Preparación de vectores lentivirales para la modulación eficiente de genes y microARN de macrófagos residentes en el tejido de la cavidad peritoneal in vivo en ratones

Aprende a integrar genes de interés en el genoma humano de células primarias mediante el sistema Sleeping Beauty regulado transcripcionalmente en vectores lentivirales defectuosos en integración. Este protocolo utiliza queratinocitos primarios humanos y análisis de citofluorimetría para validar la transposición estable.

Un método de transposición eficiente In Vitro por un sistema de belleza durmiente transcripcionalmente regulada en un Vector lentivirales defectuosa integración (Video) | JoVE Journal

Un método de transposición eficiente In Vitro por un sistema de belleza durmiente transcripcionalmente regulada en un Vector lentivirales defectuosa integración

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