Name: Grabación de la presión intracavernosa para evaluar la función eréctil en roedores (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-06-06T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 3 s
Description: Aprende a medir la presión intracavernosa en ratas para evaluar la función eréctil mediante cateterización del crus corpus cavernosum y estimulación de nervios cavernosos. Este método permite investigar la disfunción eréctil masculina.

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Este trabajo fue financiado por los fondos de Investigación Fundamental para las universidades de Central (020814380018, 020814380077), el Consejo de becas de China (CSC, no. 201606195024), Fundación de Ciencias naturales de la provincia de Jiangsu (BK20160138) y Key Project el apoyo de ciencia y tecnología de Fundación para el desarrollo, Universidad médica de Nanjing (2014NJMUZD053).

Tres meses y 18 meses en el presente estudio se utilizaron ratas Sprague-Dawley. Todos los animales se manejaron con arreglo a las directrices de los NIH para el cuidado y uso de animales de laboratorio. Procedimientos con sujetos animales fueron aprobados por el cuidado de Animal institucional local y Comité de ética, con un esfuerzo para minimizar el sufrimiento de los animales. Los protocolos fueron aprobados por el cuidado institucional del Animal y el Comité uso (IACUC) en la Universidad de tecnología de Nanjing (Nanjing, China).
Las ratas fueron divididas en dos grupos según su edad y funcionamiento preliminar de la prueba de APO-inducida de la función eréctil antes de la grabación de ICP: el joven normal grupo (YN) y disfunción eréctil de grupo (grupo de AE)10.
1. preparación antes de la cirugía
<ol><li>Hacer manualmente un par de electrodos bipolares para la grabación de ICP (figura 1). Un poco doble los extremos de los electrodos y ajustar la distancia entre dos electrodos a 1-2 mm de ancho, como se muestra en la figura 1A.</li>
	<li>Conecte los electrodos al estimulador con dos pinzas de cocodrilo (figura 1AB).</li>
	<li>
Montar el sistema de catéter: En primer lugar, conecte una aguja hipodérmica de 23G a una llave de 3 vías con tubo, luego conecte la llave de paso para el transductor de presión. A continuación, conecte una jeringa de 10 mL al tercer de llave de paso para proporcionar la solución salina de heparina.</li>
	<li>Cuidadosamente busque fugas después de llenar todo el sistema con solución salina de heparina (200 U/mL). Girar la llave de 3 vías para cerrar el canal de la jeringa o el canal de transductor de presión (figura 1).</li>
	<li>Levante la aguja 20 cm el nivel de la plataforma de madera. Entonces calibrar la presión a 20 cm H2O. el sistema de grabación Después de eso, mover la altura de la aguja para verificar la exactitud del sistema de grabación. Repetir la calibración hasta que se confirmó la exactitud.</li>
	<li>Las ratas de transferencia de la instalación de animales a la sala de cirugía y deje que se acostumbre a la sala de cirugía durante al menos 30 minutos.</li>
	<li>Los instrumentos en autoclave son rociados con etanol al 70% antes de la cirugía</li>
</ol>2. cirugía
<ol><li>Anestesiar la rata con una inyección intraperitoneal de pentobarbital sódico a una dosis de 45 mg/kg de peso corporal y espere 5-10 minutos pellizcar los dedos de los pies para confirmar una adecuada anestesia.</li>
	<li>Afeitarse la piel del abdomen y el cuello con una afeitadora eléctrica y colocar la rata en su espalda en un cojín de calefacción.</li>
	<li>Limpie el área de cirugía con bolas de algodón empapado de solución povidona-yodo al 10% seguidos de bolas de algodón empapado etanol al 70%. También, aplicar pomada oftálmica para evitar que los ojos de la desecación.</li>
	<li>Cateterizar la arteria carótida izquierda.<ol>
<li>Tome la piel del cuello con pinzas y hacer una incisión horizontal en el medio del cuello. Haga una incisión en los músculos, cuidadosamente exponer la arteria carótida izquierda y aislar una sección de 5 mm de la embarcación.</li>
		<li>Cuidadosamente separar la arteria carótida del nervio del nervio vago mediante fórceps, dibujar una sutura de seda debajo de la arteria carótida y poner un lazo flojo en el extremo caudal del buque y hacer otro nudo apretado en el extremo craneal de la nave.</li>
		<li>Caudalmente la abrazadera del buque con una pinza de bulldog por encima de la sutura para detener el flujo de sangre.</li>
		<li>Hacer una incisión en el recipiente con las tijeras de microcirugía e Inserte el catéter arterial hacia el corazón con la ayuda del micro disección del gancho y pinzas.</li>
		<li>Fije la ligadura caudal floja alrededor del catéter para asegurarlo. Retire la pinza bulldog para recuperar el flujo de sangre.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Aislar el CN y colocar el electrodo
	<ol>
<li>Levantar la piel y el músculo del abdomen con un par de pinzas. Con las tijeras de disección, corte a través de la parte inferior del abdomen hacia el pene para hacer una incisión de línea media.</li>
		<li>Empuje suavemente el intestino con torunda en la parte superior de la cavidad abdominal.</li>
		<li>Agarre la vejiga con un par de pinzas y extraer la vejiga de la cavidad abdominal. Exponga los lóbulos ventrales de la próstata, que se encuentra en la porción ventral de la uretra.</li>
		<li>Tire hacia afuera de los lóbulos ventrales de la próstata, vesícula seminal y conducto deferente para exponer el lóbulo dorsal de la próstata. Encontrar el punto de adherencia de los conductos deferentes y próstata.</li>
		<li>Separar el espacio entre la próstata y conductos deferentes. Exponer cuidadosamente la cápsula fibrosa, que se encuentra posterior al punto de la ensambladura de la próstata y conductos deferentes. A continuación se encuentra el ganglio pélvico mayor (figura 2). Nota: Los nervios cavernosos y ganglio pélvico mayor pueden verse en la superficie de la próstata.</li>
		<li>Cuidadosamente seco y CN con un hisopo estéril. Cuidadosamente aislar y enganchar el nervio cavernoso derecho con los electrodos bipolares.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Cateterizar los muslos izquierdos
	<ol>
<li>Corte una pequeña incisión en la piel del pene con unas tijeras de disección y luego raspar con cuidado la piel del eje del pene.</li>
		<li>Diseccionar la musculatura del pene estriada. Encontrar la rama superior del hueso pubis.</li>
		<li>Exponer el músculo bulboesponjoso, que cubre la bombilla spongious.</li>
		<li>Dividir el músculo bulboesponjoso del músculo isquiocavernoso utilizando fórceps curvado.</li>
		<li>Aislar cuidadosamente el músculo isquiocavernoso con fórceps curvado y luego se corta el músculo isquiocavernoso para dejar al descubierto la blanca túnica albugínea de los cuerpos cavernosos crus.</li>
		<li>Siguiendo la dirección anatómica de los cuerpos cavernosos crus, cuidadosamente Inserte la aguja en el muslo cuerpos cavernosos a través de la blanco de la túnica albugínea. Nota: Este es un paso crucial para la cateterización exitosa. Se puede inyectar una pequeña cantidad de solución salina heparinizada, y debe observarse una ligera tumescencia del pene, si la aguja ha sido insertada correctamente.</li>
		<li>Con cuidado suelte la aguja y evitar cualquier deslizamiento de la aguja o la interrupción del tubo de conexión. Revise cualquier fuga.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. estimular la NC
<ol><li>Abra el programa de software para la grabación de la señal de presión y empezar la grabación de la señal de presión.</li>
	<li>Los parámetros de la estimulación: 15 Hertz, anchura de pulso de 5 milisegundos, 5 voltios y una duración de s 60. Estimular la CN a una frecuencia de 15 Hz con una anchura de pulso de 5 ms. Nota: Un fuerte aumento del ICP puede observarse mientras se aplica la estimulación eléctrica.</li>
	<li>Permite un intervalo de 30 minutos de descanso entre estímulos. El máximo de estimulación consecutivo en cada animal es tres veces.</li>
</ol>4. fin del procedimiento
<ol><li>Después de la grabación, administrar eutanasia inyectando una sobredosis de pentobarbital sódico a una dosis de 150 mg/kg de peso corporal. Control de su presión arterial para confirmar la muerte de las ratas. Eliminar las ratas y limpiar las herramientas de la cirugía.</li>
</ol>5. Análisis de datos
<ol><li>Guardar y exportar los datos desde el software. La respuesta se expresa comúnmente como el cociente del ICP a la presión arterial media sistémica (mapa). Se calcula el cociente de pico ICP/mapa para evaluar la función eréctil.</li>
	<li>Agrupar los datos de al menos cinco ratas y analizan con el software estadístico. Las diferencias se consideran estadísticamente significativos cuando p < 0.05, utilizando la prueba t de Student.</li>
</ol>

<ol><li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NIH+Consensus+Conference.+Impotence.+NIH+Consensus+Development+Panel+on+Impotence%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">NIH Consensus Conference. Impotence. NIH Consensus Development Panel on Impotence.</a> JAMA. 270 (1), 83-90 (1993).</li>
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<li>Burnett, A. L., Lowenstein, C. J., Bredt, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nitric+oxide%3A+A+physiologic+mediator+of+penile+erection%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Nitric oxide: A physiologic mediator of penile erection.</a> Science. 257 (5068), 401-403 (1992).</li>
<li>Oh, T. Y., Kang, K. K., Ahn, B. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Erectogenic+effect+of+the+selective+phosphodiesterase+type+5+inhibitor%2C+DA-8159%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Pharm+Res%22%5BJournal%5D)">Erectogenic effect of the selective phosphodiesterase type 5 inhibitor, DA-8159.</a> Arch Pharm Res. 23 (5), 471-476 (2000).</li>
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<li>Heaton, J. P., Varrin, S. J., Morales, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+characterization+of+a+bio-assay+of+erectile+function+in+a+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">The characterization of a bio-assay of erectile function in a rat model.</a> J Urol. 145 (5), 1099-1102 (1991).</li>
<li>Mehta, N., Sikka, S., Rajasekaran, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+as+an+animal+model+for+male+erectile+function+evaluation+in+sexual+medicine+research%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">Rat as an animal model for male erectile function evaluation in sexual medicine research.</a> J Sex Med. 5 (6), 1278-1283 (2008).</li>
<li>Quinlan, D. M., Nelson, R. J., Partin, A. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+rat+as+a+model+for+the+study+of+penile+erection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">The rat as a model for the study of penile erection.</a> J Urol. 141 (3), 656-661 (1989).</li>
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<li>Hedlund, P., Matsumoto, K., Andersson, K. -E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+Models+of+Erectile+Dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Prot+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Animal Models of Erectile Dysfunction.</a> Curr Prot Pharmacol. 29, 5.41.1-5.41.22 (2005).</li>
<li>Giuliano, F., Bernabe, J., Rampin, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Telemetric+monitoring+of+intracavernous+pressure+in+freely+moving+rats+during+copulation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Telemetric monitoring of intracavernous pressure in freely moving rats during copulation.</a> J Urol. 152 (4), 1271-1274 (1994).</li>
<li>Bernabe, J., Rampin, O., Giuliano, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracavernous+pressure+changes+during+reflexive+penile+erections+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Behav%22%5BJournal%5D)">Intracavernous pressure changes during reflexive penile erections in the rat.</a> Physiol Behav. 57 (5), 837-841 (1995).</li>
<li>Bernabe, J., Rampin, O., Sachs, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracavernous+pressure+during+erection+in+rats%3A+an+integrative+approach+based+on+telemetric+recording%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Intracavernous pressure during erection in rats: an integrative approach based on telemetric recording.</a> Am J Physiol. 276 (2 Pt 2), R441-R449 (1999).</li>
<li>Adachi, H., Kodama, K., Ishihara, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+erectile+response+by+continuous+measurement+of+penile+diameter+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Toxicol+Methods%22%5BJournal%5D)">Evaluation of erectile response by continuous measurement of penile diameter in rats.</a> J Pharmacol Toxicol Methods. 41 (4), 147-152 (1999).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar

Como una medida directa de la función eréctil, el ICP es un método fiable14. Permite la adquisición de los datos en basal ICP, pico ICP, ICP, tiempo al tiempo de erección y detumescencia, duración de la respuesta, etceterade la meseta. Además de estas directas parámetros medidos, hay algunos otros parámetros de índice: (1) "T80", el tiempo para alcanzar el 80% del pico de ICP; (2) "D20", el tiempo para disminuir al 20% del pico de ICP; (3) "ΔT80", la tasa de aumento en la presión (por seg...

Se define como la incapacidad para lograr o mantener una erección del pene y se ha convertido en un trastorno sexual masculino común1. Animales de experimentación se utilizan y proporcionan modelos reproducibles para investigar la función eréctil2. Durante mucho tiempo, varios modelos de animales más grandes se han empleado para la investigación de la función eréctil3,4,5. Aunque los roedores son relativamente pequeños en comparación con otros animales, también se utilizan para el estudio de la disfunción eréctil masculina debido a que varias ventajas6. En primer lugar, las características sexuales morfológicas y funcionales de los seres humanos son recapituladas en roedores. En segundo lugar, en comparación con animales más grandes en estudios de ED, los roedores son más económicos comprar, casa y mantener. Modelos de roedores genéticamente modificados, tercer proporcionan ventajas en reproducibles y posteriores estudios conductuales y neurofisiológicos. Por lo tanto, roedores se han convertido rápidamente en los animales primarios utilizados en el estudio de la disfunción eréctil masculina.
Beneficiándose de un fondo genético puro y condiciones de cultivo constantes, modelos de roedores han proporcionado datos consistentemente reproducible5,6,7,8. Entre los numerosos estudios disponibles relacionados con muchos aspectos de las funciones eréctiles, la apomorfina (APO)-respuesta eréctil inducida y la prueba de respuesta inducida por la estimulación eléctrica ICP son los métodos más ampliamente utilizados que reflejan confiable eréctil función9,10,11,12. La prueba de la función eréctil inducida por APO, desarrollada por Heaton et al. 13, es un bioensayo que utiliza el fenómeno de que la administración de apomorfina en ratas provoca erecciones y bostezos. Como una estable, fácil y no invasiva-bioensayo para evaluar la función eréctil, la prueba de APO-inducida de la función eréctil es ampliamente utilizada en muchos estudios. Sin embargo, este ensayo no refleja adecuadamente la calidad de erecciones o los cambios dinámicos en el flujo sanguíneo asociado con una respuesta eréctil14. Las mediciones de la PIC inicialmente fueron desarrolladas por Quinlan et al. 15. en este método, se coloca un catéter en la arteria carótida para medir la presión arterial sistémica, y otro catéter se inserta en los cuerpos cavernosos crus para grabar el PIC. Antes o durante el ICP de grabación, un agente vasoactivo o estimulación de campo eléctrico del ganglio pélvico mayor (MPG) o CN fueron dados a menudo a las ratas14. Este ensayo ha sido una herramienta confiable para la evaluación de las terapias y medicamentos para la disfunción eréctil y es probable que se utilizará como método de evaluación vital en el futuro6.
En comparación con la prueba realizada fácilmente inducida por la APO la función eréctil, exitosas grabaciones de ICP requieren atención al detalle, práctica y adhesión al método de operación. Por lo tanto, presentamos una descripción detallada de cómo realizar la grabación de ICP.

<table><tbody><tr><td>Animal</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ratas</td><td></td><td></td><td>Cepa: Sprague-Dawley Edad: 2-3 meses</td></tr><tr><td>Ratas</td><td></td><td></td><td>Cepa: Sprague-Dawley Edad: 15-18 meses</td></tr><tr><td>Nombre</td><td>Company</td><td>Número de catálogo</td><td>Comments</td></tr><tr><td><reactivos fuertes></></td><td></td><td></td><td></td>solución</tr> <tr><td>salina</td> fuerte <td>Sigma-Aldrich, S7653</td><td></td><td>disuelven 8,5 g de cloruro de sodio en agua destilada</td></tr><tr><td>Solución de pentobarbital sódico</td><td>Sigma-Aldrich, P3761</td><td></td><td>disuelven 1 gramo en solución salina 100 ml de solución salina</td></tr><tr><td>Povidona</td><td>yodada BTP Pharmaceutical Co. Limited</td><td></td><td>10% (V/V)</td></tr><tr><td>Etanol</td><td>China National Pharmaceutical Group Corporation (SINOPHARM)</td><td></td><td>70% (V/V)</td></tr><tr><td>Heparina</td><td>Sigma-Aldrich, H3149</td><td></td><td>disuelva 20000U heparina en 100 ml</td></tr> solución <tr><td>salina<fuerte>Nombre</fuerte></td><td><fuerte>Empresa</fuerte></td><td><fuerte>Número de catálogo</fuerte</td><td>><fuerte>Comentarios</fuerte></td></tr><tr><td><fuerte>Materiales</fuerte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Aguja hipodérmica</td><td>Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd.&nbsp;</td><td>Jeringa 23G</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd</td><td>10 ml</td><td></td></tr><tr><td>Llave de paso de tres vías</td><td>Chengdu Fábrica de instrumentos</td><td>TSK 01</td><td></td></tr><tr><td>Electrodo</td><td>Chengdu Fábrica de instrumentos</td><td>JST-1</td><td></td></tr><tr><td>Tubo de catéter</td><td>Chengdu Fábrica de instrumentos</td><td>PE-10, PE-50</td><td></td></tr><tr><td>Tijeras de operación Shanghai</td><td>equipo de operación fábrica</td><td>J22010, J22020</td><td></td></tr><tr><td>Tijeras de operación oftálmica Fábrica de</td><td>equipos de operación de Shanghai</td><td>Y00010, Y00020</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas oftálmicas</td><td>Fábrica de equipos de operación de Shanghai</td><td>JD1010, JD1020</td><td></td></tr><tr><td>MicroScissors</td><td>World Precision Instruments</td><td>WAA260</td><td></td></tr><tr><td>sutura de seda</td><td>Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd.&nbsp;</td><td>5-0</td><td></td></tr><tr><td>Nombre</td><td>Compañía</td><td>Número de catálogo</td><td>Comentarios</td></tr><tr><td>Equipo</fuerte></td>Estimulador Nanjing medease science and technology co. ltd (modelo 4C501H)15 Hz, 5 ms pulso, 5 V, 60 s de duración e intervalo de <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td> 5 minutos <td></td><td></td></tr><tr><td>Sistema de procesamiento de recolección de señal multicanal</td><td>Nanjing medease science and technology co. ltd (modelo 4C501H)</td><td></td><td>Modelo de presión arterial</td></tr><tr><td>Transductor de presión</td><td>Beijing Xin Hang Xing Ye Technology Trading Company Limited (modelo YP100)</td><td></td><td>40KPa</td></tr></tbody></table>

grabación de la presión intracavernosa para evaluar la función eréctil en roedores

Intracavernosal Pressure Recording to Evaluate Erectile Function in Rodents

La disfunción eréctil (ED) se define como la incapacidad para lograr o mantener una erección del pene, y esto se ha convertido en un frecuente trastorno sexual masculino. Roedores son empleados por muchos estudios para investigar la fisiología, patología de la función eréctil. La función eréctil en roedores puede evaluarse mediante la medición de la presión intracavernosa (PIC). En la práctica, la ICP puede controlarse después de la estimulación eléctrica de los nervios cavernosos (CNs). La presión arterial de la arteria carótida (la presión arterial media) se utiliza como referencia para ICP. Mediante ICP protocolos de grabación, muchos parámetros clave de la función eréctil pueden medirse de la curva de respuesta ICP. La medición de ICP proporciona más información que el test de erección peneal inducido por apomorfina y es más barata que el monitoreo telemétrico del pene del spongiosum de la recopilación de corpus, haciendo este método el más popular para evaluar la función eréctil. Sin embargo, en comparación con la prueba realizada fácilmente inducida por la APO la función eréctil, exitosas grabaciones de ICP requieren atención al detalle, práctica y adhesión al método de operación. En este trabajo, una introducción a la grabación de la ICP en las ratas se proporciona como complemento al procedimiento eficientemente.

Numerosos estudios han demostrado que la disfunción eréctil en personas de edad los varones se está convirtiendo en un problema común. Sin embargo, tratamiento médico es limitado en el manejo de envejecimiento relacionados con ED16. En modelos de roedores de ED relacionados con el envejecimiento, muchas terapias son probadas en la función eréctil de ratas envejecidas. Como hemos introducido anteriormente, la prueba de grabación de ICP podría usarse para distinguir ...

Grabación de la presión intracavernosa (PIC) es un método importante para evaluar la función eréctil de animales de experimentación. Aquí, se demuestra un protocolo detallado para el procedimiento de grabación de ICP catheterizing el pene de muslos y luego eléctricamente estimulando los nervios cavernosos en ratas.

Grabación de la presión intracavernosa para evaluar la función eréctil en roedores

Erectile dysfunction (ED) is defined as the inability to attain or keep an erection of the penis, and this has become a prevalent male sexual disorder. ...

El objetivo general de este procedimiento es evaluar la función eréctil de las ratas mediante el cateterismo del cuerpo cavernoso y el registro de la presión intracavernosa después de la estimulación de los nervios cavernosos. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la disfunción eréctil masculina, como por ejemplo, para evaluar las terapias y medicamentos para la disfunción eréctil. Por lo tanto, una ventaja de esta técnica es que proporciona una evaluación más precisa de la función y los reflejos de la erección, el cambio dinámico en el flujo sanguíneo asociado con la respuesta eréctil.La demostración visual de este método es fundamental, ya que el cateterismo es difícil de aprender porque la pequeña área de la túnica albugínea blanca del cuerpo cavernoso dificulta la inserción de la aguja en la crura del pene. Para prepararse para la cirugía, haga un par de electrodos bipolares para registrar la presión intracavernosa. Doble ligeramente los extremos de los electrodos y ajuste la distancia entre ellos a uno o dos milímetros.A continuación, conecte los electrodos al estimulador mediante dos pinzas de cocodrilo. A continuación, ensamble el sistema de cat

intracavernosal-pressure-recording-to-evaluate-erectile-function

Research

Investigación

JoVE Journal

Biology

Biología

El CODA de 8 canales de alto rendimiento sistema no invasivo de presión arterial mide la presión arterial hasta en 8 ratones o ratas de forma simultánea. Este sistema utiliza la cola del manguito de registro del volumen de presión (VPR) para medir la presión arterial mediante la determinación del volumen de sangre cola.

Medición de la presión arterial en ratones con registro del volumen de presión, un método de la cola del manguito

Una nueva técnica para registrar las presiones dentro del cráneo se describe. El método mínimamente invasiva usa un sistema de presión de fibra óptica de detección para medir con precisión la presión intracraneal (PIC) en ratas anestesiadas, sin causar un trauma cerebral importante. La técnica se puede utilizar en una amplia gama de modelos experimentales.

Medición de la presión intracraneal epidural en ratas, utilizando un transductor de presión de fibra óptica

Este video muestra una técnica para estudiar la actividad de los nervios simpáticos renales (RSN) en respuesta a cambios en la presión arterial en ratas. Al conectar un catéter sensor de presión a la arteria femoral, los nervios simpáticos renales quedan expuestos. A continuación, los nervios se elevan a un electrodo de registro y se registra su actividad eléctrica. A continuación, se inyecta un fármaco vasoconstrictor para elevar la presión arterial y se controlan los cambios correspondientes...

Registro de cambios en la actividad del nervio simpático renal en respuesta a la presión arterial en ratas

Este video muestra el aislamiento y la estimulación del nervio cavernoso en una rata anestesiada para estudiar los cambios de presión arterial en el cuerpo cavernoso.

Realización de la estimulación del nervio cavernoso en ratas para medir la presión intracavernosa

Este manuscrito proporciona un protocolo para implantar telémetros en el ratón con el propósito de medir las presiones intrauterinas durante el embarazo.

Telemetría intrauterina para medir la presión del ratón contráctil<em&gt; En Vivo</em

Ratones anestesiados exhiben la presión arterial sistémica no fisiológico, que impide una evaluación significativa del tono autonómico, dada la íntima relación entre la presión arterial y el sistema nervioso autónomo. Así, se describe un método novedoso para la actividad del nervio simpático renal al mismo tiempo récord y la presión arterial con la infusión intravenosa en ratones conscientes.

Nuevo enfoque para la grabación simultánea de la actividad nerviosa simpática Renal y presión arterial con la infusión intravenosa en consciente, libre de ratones.

Este protocolo describe primero el procedimiento quirúrgico de la implantación permanente de un catéter de vejiga urinaria combinada con electrodos del esfínter uretral externo y segundo, la medición de la función de la vejiga y uretral externo Esfinge en animales despiertos implantados.

Medición de esfínter uretral externo cistométrico en ratas despiertas con catéter implantado y electrodos para medidas repetidas

Este estudio describe un procedimiento quirúrgico simplificado y técnica para realizar la estimulación del nervio cavernoso con el aislamiento del nervio-electrodo complejo usando pegamento de silicona y medición de la presión intracavernosa.

Estímulo del nervio cavernoso y grabación de la presión intracavernosa en una rata

Aquí, describimos una configuración para el registro simultáneo del electrocardiograma y presión arterial intrarterial (BP) en ratas experimentales, que se pueden hacer con equipo estándar en instalaciones y se pueden aplicar a fisiológico o farmacológico estudios para investigar los mecanismos patogénicos o terapéuticos en medicina cardiovascular.

Grabación simultánea de electrocardiografía y sangre invasiva presión medida en ratas

Este protocolo describe el procedimiento para medir las concentraciones de ATP en la luz de la vejiga en un roedor anestesiado.

In vivo Medición luminal de la liberación urotelial de ATP evocada por distensión en roedores

Aprende a medir la presión intracavernosa en ratas para evaluar la función eréctil mediante cateterización del crus corpus cavernosum y estimulación de nervios cavernosos. Este método permite investigar la disfunción eréctil masculina.

Grabación de la presión intracavernosa para evaluar la función eréctil en roedores

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