Name: Cuantificación histológica para determinar la carga micótica pulmonar en aspergilosis Experimental (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-09T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 52 s
Description: Aprende a cuantificar la carga fúngica pulmonar en ratones con aspergilosis invasiva mediante tinción de plata de Gomori. Este método histológico ofrece resultados comparables a PCR cuantitativa reduciendo el número de animales necesarios.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Este estudio fue apoyado en parte por un Indiana University escuela de medicina mejora beca de investigación y por NIH NIAID 1R03AI122127-01. N.A. en parte apoyaron durante este período una carreras en beca de Inmunología de la Asociación Americana de inmunólogos.

Todos los procedimientos animales fueron aprobados por el cuidado Animal y uso Comité de Indiana State University, el campus de anfitrión de la escuela de medicina de la Universidad de Indiana, Terre Haute.
1. preparación de conidios de a. fumigatus para infección
<ol><li>Mientras trabaja en una campana bien ventilada, añadir 125 μl de solución stock de a. fumigatus 293 a 900 μl célula cultura grado de agua (CCGW). Luego transferir la solución para la placa de agar (MEA) del extracto mediante pipeta de Malta y extensión uniformemente con una asa de inoculación.</li>
	<li>Almacenar la placa micótica en la oscuridad a 24 ° C durante al menos 14 días y no más de 28 días.</li>
	<li>La cosecha conidios con perlas de cristal como se describió previamente9.</li>
	<li>Vierta 1.5 g de 0.5 mm perlas de vidrio sobre la placa y suavemente incline hacia adelante y hacia atrás hasta que los granos están recubiertos para extraer conidios. Recoge la mezcla de grano/conidias en un tubo cónico de 15 mL. Suspensión en solución salina tamponada con fosfato (DPBS) 5 mL Dulbecco y vortex.</li>
	<li>Contar las conidias en una dilución de 50 x de sobrenadante en DPBS usando un hemocitómetro. Contar el número de conidios en la zona indicada en la figura 1 y utilizar la ecuación 1 para calcular la concentración. Factor de dilución de × #Conidia × 104conidios/mL (ecuación 1) Nota: Otras áreas de la esquina cuadrada de 4 x 4 pueden ser contadas, con la media de estas áreas utilizada como #Conidia en la ecuación 1.</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57155/57155fig1.jpg"> Figura 1: Hemocitómetro representante área usada para el conteo de conidios (caja, flecha).
<ol start="6"><li>Diluir la suspensión de conidios con solución salina estéril (DPBS) para obtener la concentración deseada, 1.0 x 108 conidias/mL para la infección con 5 x 106 conidios/50 μl. preparar 50 μl de solución de conidios por n ' + 2' ratones infectados a cuenta para el pipeteo error. Nota: Cosecha de hongos estándar y la preparación/filtración pueden ser utilizado alternativamente10. El método de cristal del grano se utiliza mejor para garantizar la obtención de muestras de conidios con antígenos hyphal pequeño/solubilidad mínima de aspiración.</li>
</ol>2. inmunosupresión e infección del modelo murino
<ol><li>Utilizar ratones de 7-10 semanas de edad. Nota: Ratones BALB/c, C57BL/6 (B6), deficiencia de eosinófilos (ΔdblGATA, antecedentes BALB/c) y deficiencia de células T γδ (TCRδ-/-, B6 fondo) ratones se utilizaron para este estudio. Para cada experimento, la edad y sexo-emparejado ratones (tanto machos como hembras) fueron utilizados para cada grupo.</li>
	<li>Agotar los neutrófilos vía intraperitoneal (IP) inyección de anticuerpo anti-anti-ratón-Ly - 6G de 0,1 mL (0,5 mg) en solución salina estéril a 45 º en el cuadrante derecho inferior lateral (para un programa experimental, ver figura 2).</li>
	<li>24 h más tarde, infectar ratones por la aspiración de 5.0 x 106conidios dea. fumigatus suspendidos en 50 salina μl (ver pasos 2.4-2.10) como describió anteriormente11. Después de la infección, inyectar un subconjunto de los animales con el agente antihongos como Diacetato de caspofungina de 5 mg/kg en DPBS utilizados en este estudio (todos los días, ver figura 2).</li>
	<li>Anestesiar ratones con isoflurano 99,9% mediante una máquina de anestesia veterinaria.<ol>
<li>Coloque una toalla de papel en el piso de la cámara de inducción para recoger las heces y la orina.</li>
		<li>Colocar el ratón en la cámara de inducción, la tapa y ajuste el vaporizador a isoflurano 5% por 2 min y 30 s. Nota: Ungüento veterinario no se utiliza debido a que el tiempo total bajo anestesia es menos de 5 minutos.</li>
		<li>Reducir el vaporizador a la mitad del valor máximo de 30 s.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Confirmar que el ratón correctamente está anestesiado observando lenta respiración, falta de movimiento y falta de respuesta al estímulo del pellizco del dedo del pie.</li>
	<li>Quitar el ratón de la cámara de inducción y el lugar en un tablero inclinado. Coloque el ratón con su espalda contra la Junta. Asegúrese de que sus incisivos superiores se refrenan suavemente con una goma elástica y los incisivos inferiores están sujetos ligeramente con un alambre de metal.</li>
	<li>Cuidadosamente mantenga la lengua en extensión completa con pinzas pequeñas y pipeta 50 μl de la suspensión de conidios/PBS en la base de la lengua.</li>
	<li>Sostenga la lengüeta en extensión completa; Escuche la respiración rápida y el chasquido distinto de aspiración. Mantenga durante 20 s o hasta que la suspensión es totalmente equipada.</li>
	<li>Quitar el mouse del tablero inclinado y coloque con cuidado en una jaula de observación.</li>
	<li>Tras la aspiración, el ratón debe recuperar la conciencia dentro de 1min Monitor el ratón hasta que totalmente consciente y capaz de caminar alrededor de la jaula. Los animales deben ser ubicados a 21 ° C y monitoreados dos veces al día hasta que los pulmones se cosechan.</li>
	<li>Repita el agotamiento de la infección después de 24 h de neutrófilos (paso 2.2) (figura 2).</li>
</ol><img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57155/57155fig2.jpg"> Figura 2: programa Experimental. Esta figura fue modificada de una anterior publicación8.
3. la cosecha y conservación de los pulmones de ratón para análisis histológico
<ol><li>Profundamente anestesiar al animal con una fatal dosis de 0,1 ml de pentobarbital sódico de 390 mg/ml solución IP.</li>
	<li>Confirmar la eutanasia observando falta de respiración espontánea y la ausencia de respuesta a la estimulación de extremidades con las pinzas. Una vez sacrificados, rocíe el cadáver con etanol al 70% para esterilizar.</li>
	<li>Colocar el cadáver en un tablero de espuma cubierto con un paño absorbente. Nota: La canal debe colocarse en la espalda con alfileres asegurar los cuatro miembros a la Junta de espuma.</li>
	<li>Abrir la cavidad de la parte superior del tórax usando las tijeras con cuidado. Corte la caja torácica para exponer los pulmones y el corazón. Cortar la vena cava inferior para permitir la perfusión. Evitar cortar los vasos sanguíneos y órganos de perforación.</li>
	<li>Lentamente perfusión con 5 mL de DPBS frío en el ventrículo derecho del corazón a un ángulo de 45° con una aguja de 25 G. Repetir la perfusión con 5 mL de formalina al 10%.</li>
	<li>Exponer la tráquea y separar las almohadillas de grasa circundantes. Tenga cuidado y evitar la punción de la tráquea. Asegúrese de que el exceso de tejido conectivo se quita para poder visualizar completamente la tráquea antes de proceder. Una vez la tráquea es expuesta, coloque pinzas en la tráquea para elevarlo.</li>
	<li>Haga un pequeño agujero en la tráquea superior utilizando una aguja de 25 G. Nota: El orificio debe colocarse para que la cánula toda cabe en la tráquea. Tenga cuidado para evitar la ruptura de la tráquea.</li>
	<li>Inserte una cánula a través del agujero y hacia los pulmones. Fijar la cánula con un hilo quirúrgico atado flojamente alrededor de la tráquea. Nota: Si la tráquea está roto, puede insertarse la cánula más allá de la tráquea lo más lejos posible en la vía aérea.</li>
	<li>Utilizando una jeringa, inflar los pulmones con 1 mL de tampón de formalina de 10% a través de la cánula. Asegúrese de que la inflación de los pulmones es visible. Si no, ajustar la sonda y repetir. Una vez que los pulmones se inflan, rápidamente Retire la cánula con cuidado y tense el hilo firmemente para sellar la tráquea. Nota: Si se rompe la tráquea y los pulmones no pueden inflarse, los pulmones pueden cosecharse pero esto puede prevenir la fijación adecuada.</li>
	<li>Suavemente Retire la tráquea y los pulmones del pecho desconectar con cuidado el tejido conectivo de la tráquea con pinzas mientras tira suavemente hacia arriba en el hilo. Coloque los pulmones y la tráquea de un tubo cónico de 50 mL con 15 mL de solución de formol 10%. Coloque un extremo del hilo fuera del tubo y la tapa. Invertir el tubo para sumergir completamente la muestra en el fijador.</li>
	<li>Almacenar las muestras a temperatura ambiente durante al menos 24 h o hasta que la transformación posterior. PRECAUCIÓN: Formol es peligroso. Use equipo de Protección Personal como gafas y una mascarilla. Trabajar bajo una campana química al procesar las muestras.</li>
</ol>4. la cosecha y conservación de los pulmones de ratón de ADN carga micótica
<ol><li>Siga los pasos 3.1 a 3.5 como se describió anteriormente en un ratón aparte.</li>
	<li>Lentamente perfusión con 10 mL de DPBS frío en el ventrículo derecho del corazón a un ángulo de 45° con una aguja de 25 G.</li>
	<li>Suprimir los pulmones con tijera y colocar en tubos de 1,5 mL etiquetado.</li>
	<li>Almacenar los pulmones a-80 ° C hasta el procesamiento posterior.</li>
	<li>Utilizar técnicas estándar como se describe (inclusión y corte) y de acuerdo con protocolos del fabricante (véase Tabla de materiales).</li>
</ol>5. microscopía e imagen
<ol><li>Abrir el programa de cuantificación de imagen (véase Tabla de materiales).</li>
	<li>Utilizando un microscopio de luz, obtenga al menos 4 campos distintos de las GMS manchados diapositivas (objetivo de 10 X). Asegúrese de que las imágenes son representativas de las vías respiratorias infectadas dentro de los pulmones con densidad de tejido similar. Nota: Si la densidad y la distribución de focos hyphal aparecen marcadamente diferentes entre los grupos experimentales y control, campos adicionales pueden tomarse, o el área de GMS de la sección de pulmón entero puede ser reflejado (objetivo de 4 X). Obtener imágenes de las mismas áreas del pulmón (identificado por morfología de tejido equivalente) en una sección del pulmón serial manchada con hematoxylin y eosina, si lo desea.</li>
	<li>Agregar barras de escala a las imágenes cuando sea necesario y guardar las imágenes para ser cuantificada. Seleccionar, Editar &gt; Agregar/editar marcas de calibración &gt; menú: elegir la línea de espesor, color y escala de tamaño de barra &gt; haga clic en la imagen para que la barra de escala debe ser colocado. Cerrar el menú y elegir, Editar &gt; combinar &gt; combinar marcas de calibración &gt; elegir guardar como &gt; nombre del archivo y haga clic en guardar.</li>
</ol>6. usando un programa de procesamiento de imagen para calcular la carga fúngica (figura 3)
<ol><li>Abra un programa de procesamiento de imagen. Seleccione Archivo &gt; carpeta con muestras a cuantificar &gt; imagen (Figura 3A). Seleccione Imagen &gt; tipo &gt; convertir a 'RGB pila' (figura 3B).</li>
	<li>Utilice la tecla flecha derecha para seleccionar a la segunda de las tres imágenes dadas (figura 3B). Golpe "control + shift + T" para que aparezca el regulador de configuración del menú de "Umbral" (figura 3). Localice la imagen .tiff o .jpg original como referencia y abra una imagen viendo el programa (figura 3).</li>
	<li>Tire el control deslizante superior hacia la izquierda y ajuste el regulador inferior hasta que el área seleccionada (en rojo) es representativo de la imagen de la microscopia (típicamente oscilan entre 130-160 como se indica a la derecha de la barra deslizante (figura 3).</li>
	<li>Una vez seleccionado, presione "Configurar" &gt; "Aceptar" (figura 3D). Seleccionar "Analizar" &gt; "Establecer medidas" &gt; comprobar "Límite de la zona, fracción de área, umbral, etiqueta de la pantalla" y dejar la configuración de la parte inferior (el menú desplegable y decimales) como por defecto &gt; "Aceptar" (figura 3D).</li>
	<li>Áreas significativas del espacio en blanco o tinción de fondo pueden ser excluidas por la selección del tejido adecuado con una herramienta de área o polígono.</li>
	<li>Finalmente, seleccione, "Analizar" &gt; "Medida" (debería aparecer una ventana con los datos, o una pestaña en la barra de tareas de windows aparece la etiqueta, "Resultados") (figura 3E). Transferir los datos a un programa de análisis de datos para gráficos y análisis estadístico.</li>
	<li>Introduzca la media de los porcentajes de cuatro área para cada muestra de pulmón. 5-8 muestras son generalmente suficientes para detectar diferencias significativas entre los grupos. Si al comparar dos grupos experimentales, realizar un desapareado estudiante t-pruebas para determinar la significación.</li>
</ol><img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57155/57155fig3.jpg"> Figura 3: cuantificación del campo representante de imágenes para cada paso de GMS histológicas. (A) Seleccione Archivo &gt; carpeta con muestras a cuantificar &gt; seleccione imagen. (B) seleccionar imagen &gt; tipo &gt; convertir a 'Pila de RGB'. Utilice la tecla flecha derecha para seleccionar a la segunda de las tres imágenes dadas. (C) Hit "control + shift + T" para que aparezca el regulador de configuración del menú de "Umbral". Localice la imagen .tiff o .jpg original como referencia y abrir con el programa visor de fotos. Tire de la corredera superior completamente a la izquierda y ajuste el regulador inferior hasta que el área seleccionada (en rojo) es representativo de la imagen de la microscopia (típicamente desde 130-160 como se indica a la derecha del control deslizante. (D) una vez seleccionado Presione "Set" &gt; "OK". Seleccionar "Analizar" &gt; "Establecer medidas" &gt; comprobar "Límite de la zona, fracción de área, umbral, etiqueta de la pantalla" y dejar la configuración de la parte inferior (el menú desplegable y decimales) como por defecto &gt; "OK". (E) finalmente seleccionar "analizar" &gt; "Medida" (debería aparecer una ventana con los datos, o una pestaña en la barra de tareas de windows aparece etiquetado como "Resultados"). <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57155/57155fig3large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
7. ADN carga micótica
<ol><li>Retirar los pulmones de-80 ° C y liofilizar durante al menos 4 horas (durante la noche es óptimo) o hasta que seque totalmente por un sistema seco de helada.</li>
	<li>Mientras se secan los pulmones, preparar el tampón de extracción de DNA (0.1 M NaCl, 10 mM EDTA pH 8.0, 10 mM Tris HCl pH 8.0 y 0,5% SDS).</li>
	<li>Colocar el tampón de extracción de ADN preparado en un baño de agua de 60 º C para precalentar. También, colocar el fenol: cloroformo: alcohol isoamílico (25:24:1) en un tubo cónico de 50 mL y permitir la separación.</li>
	<li>Coloque los pulmones liofilizados en un tubo de tapón de rosca de 2 mL con 0.2 mL de granos de cristal. Usando un batidor de grano, moler tejidos de pulmón seco para 15-30 s hasta que se forme un polvo fino.</li>
	<li>Agregar 0,8 mL de tampón de extracción de ADN caliente a cada tubo y agitar bien. Incubar cada tubo durante 15 min en un baño del grano de 65 ° C y luego vórtice antes de incubar un adicional 15 min. Después de incubar, vortex y centrifugar los tubos a 25.000 x g durante 10 minutos.</li>
	<li>3 juegos de tubos de 1,5 mL de la etiqueta para cada una de las muestras y transferir la capa superior del sobrenadante en un set de tubos. Tenga cuidado al pipetear la capa acuosa superior para evitar molestar a la capa media.</li>
	<li>Añadir igual volumen de fenol: cloroformo: isoamílico alcohol y mezclar bien. Luego centrifugar a 25.000 x g durante 15 min antes de pipetear la capa superior en la segunda serie de tubos.</li>
	<li>Agregar igual volumen de cloroformo cloroformo: isoamílico, mezcle bien y centrifugue a 25.000 x g durante 10 minutos con cuidado la pipeta a la capa superior en el tercer juego de tubos.</li>
	<li>Añadir 500 μl de isopropanol 50 μl NaoAc (pH 5,2), mezclar bien y muestras a incubar a temperatura ambiente durante 10 minutos. Luego centrifugar a 25.000 x g durante 30 minutos y decantar el sobrenadante.</li>
	<li>Lavar el pellet de ADN con 750 μl de etanol frío al 70% hielo y centrifugar durante 5 minutos a 25.000 x g. decantar el etanol y deje que seca el pellet al aire en los tubos en un campanas durante 40 minutos.</li>
	<li>Resuspender el pellet seco en 300 μL de tampón TE. Nota: El ADN puede ser almacenado a-20 ° C hasta cuantificado.</li>
	<li>Cuantificar el ADN utilizando un espectrofotómetro y preparar 100 μl de 0,2 μg/μl de cada muestra de ADN para el análisis de qPCR.</li>
	<li>Realizar una qPCR estándar por triplicado como se describió anteriormente con 1 μg de muestra de ADN, hongos 18S rDNA cartilla, y sonda fija con un extintor de sonda modificada (5'- / 56-FAM/AGC CAG CGG/ZEN/CCC GCA AAT G/3IABkFQ /-3') de12,13.</li>
	<li>Preparar una curva estándar de ADN genómico de a. fumigatus y calcular la concentración de ADN fúngico en pg en cada muestra utilizando el reportero promedio valores de Ct del tinte.</li>
	<li>Parcela la pg/μg de ADN fúngico con error estándar de la media. Realizar un estudiante t-análisis para determinar la significación de la prueba. Nota: como menos tóxico alternativa a la extracción de DNA de fenol-cloroformo utilizada en el presente documento, columna basado en la extracción de ADN se pueden usar paquettes.</li>
</ol>

<ol><li>Hohl, T. M., Feldmesser, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aspergillus+fumigatus%3A+principles+of+pathogenesis+and+host+defense%5BTitle%5D)+AND+%22Eukaryot+Cell%22%5BJournal%5D)">Aspergillus fumigatus: principles of pathogenesis and host defense.</a> Eukaryot Cell. 6 (11), 1953-1963 (2007).</li>
<li>Kwon-Chung, K. J., Sugui, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aspergillus+fumigatus--what+makes+the+species+a+ubiquitous+human+fungal+pathogen%3F%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Aspergillus fumigatus--what makes the species a ubiquitous human fungal pathogen?</a> PLoS Pathog. 9 (12), e1003743(2013).</li>
<li>Ostrosky-Zeichner, L., Casadevall, A., Galgiani, J. N., Odds, F. C., Rex, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+insight+into+the+antifungal+pipeline%3A+selected+new+molecules+and+beyond%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Drug+Discov%22%5BJournal%5D)">An insight into the antifungal pipeline: selected new molecules and beyond.</a> Nat Rev Drug Discov. 9 (9), 719-727 (2010).</li>
<li>Desoubeaux, G., Cray, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rodent+Models+of+Invasive+Aspergillosis+due+to+Aspergillus+fumigatus%3A+Still+a+Long+Path+toward+Standardization%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Rodent Models of Invasive Aspergillosis due to Aspergillus fumigatus: Still a Long Path toward Standardization.</a> Front Microbiol. 8, 841(2017).</li>
<li>Hohl, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Overview+of+vertebrate+animal+models+of+fungal+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol+Methods%22%5BJournal%5D)">Overview of vertebrate animal models of fungal infection.</a> J Immunol Methods. 410, 100-112 (2014).</li>
<li>Sheppard, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+three+methodologies+for+the+determination+of+pulmonary+fungal+burden+in+experimental+murine+aspergillosis%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Microbiol+Infect%22%5BJournal%5D)">Comparison of three methodologies for the determination of pulmonary fungal burden in experimental murine aspergillosis.</a> Clin Microbiol Infect. 12 (4), 376-380 (2006).</li>
<li>Patterson, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+future+of+animal+models+of+invasive+aspergillosis%5BTitle%5D)+AND+%22Med+Mycol%22%5BJournal%5D)">The future of animal models of invasive aspergillosis.</a> Med Mycol. 43 Suppl 1, S115-S119 (2005).</li>
<li>Amarsaikhan, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Caspofungin+Increases+Fungal+Chitin+and+Eosinophil+and+gammadelta+T+Cell-Dependent+Pathology+in+Invasive+Aspergillosis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Caspofungin Increases Fungal Chitin and Eosinophil and gammadelta T Cell-Dependent Pathology in Invasive Aspergillosis.</a> J Immunol. 199 (2), 624-632 (2017).</li>
<li>Templeton, S. P., Buskirk, A. D., Law, B., Green, B. J., Beezhold, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+germination+in+murine+airway+CD8%2B+T-cell+responses+to+Aspergillus+conidia%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Role of germination in murine airway CD8+ T-cell responses to Aspergillus conidia.</a> PLoS One. 6 (4), e18777(2011).</li>
<li>Brunel, S. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+Imaging+of+Antifungal+Activity+by+Human+Primary+Neutrophils+and+Monocytes+in+Response+to+A.+fumigatus%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Live Imaging of Antifungal Activity by Human Primary Neutrophils and Monocytes in Response to A. fumigatus.</a> J Vis Exp. (122), (2017).</li>
<li>Rao, G. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficacy+of+a+technique+for+exposing+the+mouse+lung+to+particles+aspirated+from+the+pharynx%5BTitle%5D)+AND+%22J+Toxicol+Environ+Health+A%22%5BJournal%5D)">Efficacy of a technique for exposing the mouse lung to particles aspirated from the pharynx.</a> J Toxicol Environ Health A. 66 (15), 1441-1452 (2003).</li>
<li>Bowman, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+PCR+assay+to+measure+Aspergillus+fumigatus+burden+in+a+murine+model+of+disseminated+aspergillosis%3A+demonstration+of+efficacy+of+caspofungin+acetate%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Quantitative PCR assay to measure Aspergillus fumigatus burden in a murine model of disseminated aspergillosis: demonstration of efficacy of caspofungin acetate.</a> Antimicrob Agents Chemother. 45 (12), 3474-3481 (2001).</li>
<li>Li, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+small+GTPase+RacA+mediates+intracellular+reactive+oxygen+species+production%2C+polarized+growth%2C+and+virulence+in+the+human+fungal+pathogen+Aspergillus+fumigatus%5BTitle%5D)+AND+%22Eukaryot+Cell%22%5BJournal%5D)">The small GTPase RacA mediates intracellular reactive oxygen species production, polarized growth, and virulence in the human fungal pathogen Aspergillus fumigatus.</a> Eukaryot Cell. 10 (2), 174-186 (2011).</li>
<li>Sucher, A. J., Chahine, E. B., Balcer, H. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Echinocandins%3A+the+newest+class+of+antifungals%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Pharmacother%22%5BJournal%5D)">Echinocandins: the newest class of antifungals.</a> Ann Pharmacother. 43 (10), 1647-1657 (2009).</li>
<li>Herrera, M. L., Vallor, A. C., Gelfond, J. A., Patterson, T. F., Wickes, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strain-dependent+variation+in+18S+ribosomal+DNA+Copy+numbers+in+Aspergillus+fumigatus%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Strain-dependent variation in 18S ribosomal DNA Copy numbers in Aspergillus fumigatus.</a> J Clin Microbiol. 47 (5), 1325-1332 (2009).</li>
<li>Kirkpatrick, W. R., Perea, S., Coco, B. J., Patterson, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficacy+of+caspofungin+alone+and+in+combination+with+voriconazole+in+a+Guinea+pig+model+of+invasive+aspergillosis%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Efficacy of caspofungin alone and in combination with voriconazole in a Guinea pig model of invasive aspergillosis.</a> Antimicrob Agents Chemother. 46 (8), 2564-2568 (2002).</li>
<li>Petraitiene, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antifungal+efficacy+of+caspofungin+%28MK-0991%29+in+experimental+pulmonary+aspergillosis+in+persistently+neutropenic+rabbits%3A+pharmacokinetics%2C+drug+disposition%2C+and+relationship+to+galactomannan+antigenemia%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Antifungal efficacy of caspofungin (MK-0991) in experimental pulmonary aspergillosis in persistently neutropenic rabbits: pharmacokinetics, drug disposition, and relationship to galactomannan antigenemia.</a> Antimicrob Agents Chemother. 46 (1), 12-23 (2002).</li>
<li>Cowley, A. C., Thornton, D. J., Denning, D. W., Horsley, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aspergillosis+and+the+role+of+mucins+in+cystic+fibrosis%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatr+Pulmonol%22%5BJournal%5D)">Aspergillosis and the role of mucins in cystic fibrosis.</a> Pediatr Pulmonol. 52 (4), 548-555 (2017).</li>
<li>Taylor, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+fungal+organisms+in+eosinophilic+mucin+using+a+fluorescein-labeled+chitin-specific+binding+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Otolaryngol+Head+Neck+Surg%22%5BJournal%5D)">Detection of fungal organisms in eosinophilic mucin using a fluorescein-labeled chitin-specific binding protein.</a> Otolaryngol Head Neck Surg. 127 (5), 377-383 (2002).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

El propósito de este artículo era presentar un método para la determinación de la carga fúngica pulmonar en ratones con IA utilizando cortes histológicos de pulmón manchado de GMS para análisis de imagen y cuantificación. En este estudio, el tratamiento con el fármaco antifúngico β-glucano-síntesis-dirigidas a caspofungina14 no mejoró la supervivencia o la carga fúngica en neutropénicos ratones de tipo salvaje con IA8. Sin embargo, en la ausencia de eosinófilos o células de T del γδ, supervivencia y carga micótica mejoraron. Los resultados de nuestro estudio también demostraron que pueden obtenerse resultados comparables por carga micótica GMS en comparación con el ampliamente utilizado fungicidas ADN qPCR método6.
Hay varias ventajas para utilizar la cuantificación de la carga fúngica de GMS. En primer lugar, el proceso puede utilizar muestras histológicas existentes, reduciendo potencialmente el número de experimentos para determinar diferencias significativas. En segundo lugar, en este estudio, menos animales se requiere para la cuantificación de carga fúngica de GMS lograr diferencias significativas en comparación con la qPCR de ADN fúngico (figura 6, figura 7). En tercer lugar, comparación de la carga fúngica en diferentes aislados por qPCR puede verse afectada por las diferencias de cepa dependiente de ribosomal DNA copia número15. En cambio, cuantificación de GMS no está afectada por número de copia, como carga fúngica está determinada por los niveles relativos de crecimiento fúngico de pulmón. Así, el uso de cuantificación de GMS para carga micótica reduce el uso de animales vertebrados y no requiere la previa determinación del número de copia del rDNA. Finalmente, además de modificar la morfología de hongos, caspofungina terapia aumenta la fragmentación de hongos y así puede incrementar artificialmente carga micótica cuando se mide por el aislamiento de unidades formadoras de colonias de pulmón homogenados12,16 ,17. Así, cuantificación de GMS de carga fungicida evita varias limitaciones inherentes con otros métodos comúnmente utilizados.
Sin embargo, las limitaciones de la cuantificación de GMS o este estudio son importantes tener en cuenta. En primer lugar, los autores supone una distribución similar de crecimiento hifal a través de los pulmones de cada grupo experimental y así utilizan cuantificación del representante 4 10 x objetivo campos como una medida representativa de la carga fúngica en el pulmón entero (Figura 6B). Es posible que en algunos casos la distribución relativa, el tamaño y la densidad de focos hyphal suficientemente diferenciaría para que la carga fúngica parecería diferente con este método y equivalente por el método de la qPCR. Sin embargo, nuestros resultados adicionales con cuantificación de sección de pulmón entero con los 4 campos objetivo X mostraron similar, aunque menos diferencias estadísticamente significativas entre grupos (figura 6). El error estándar de esta cuantificación se incrementó con esta estrategia, probablemente debido a la menor resolución hifal con el 4 X objetivo y mayor experiencia en campos subóptimos. Por lo tanto, se prefiere una cuantificación representante de menos campos de aumento mayor. En segundo lugar, solamente una sección central, solo se utilizó para cada muestra. Es posible, basado en los aislamientos o cepas de ratones utilizados, que algunos estudios pueden resultar en una distribución desigual del crecimiento hifal. En esos casos, secciones adicionales a lo largo de cada bloque de parafina deben ser cuantificadas para obtener una carga más representativa. En tercer lugar, en experimentos que inducen la producción substancial de mucinas (es decir, crecimiento fúngico de cuantificación de la vía aérea en broncopulmonar alérgica (ABPA) la aspergilosis18 o la fibrosis quística (FQ)18), reactividad de GMS con Rica en polisacárido mucinas19 podrían no específica GMS + resultados y así inclinar algunas muestras a favor de la mayor carga fúngica. Puesto que sólo el modelo neutropénicos de IA fue utilizado en este estudio, es posible que el uso de otros modelos competentes o represivos inmunes podría resultado en resultados menos comparables. A pesar de estas advertencias, cuantificación de GMS proporciona una técnica comparable para determinar la carga de hongos y su uso continuado en los estudios adicionales puede validar aún más la utilidad de este método como consistente, confiable y rentable.

IA es una infección oportunista que puede desarrollarse en individuos susceptibles con inmunodeficiencias congénitas o adquiridas debido a la terapia represiva inmune o infección crónica1,2. A menudo la infección primaria ocurre en los pulmones, aunque en algunos difusión de casos de Aspergillus fumigatus para el hígado, riñones, corazón y cerebro puede ocurrir, dando por resultado la invasión extensa del tejido de hifas acompañada de enfermedad severa y alta tasas de mortalidad1,2. Además, la eficacia de farmacoterapias existentes es limitada y puede ser debilitada aún más por la aparición de cepas resistentes a antifúngicos en el medio ambiente3. Por lo tanto es importante entender los mecanismos de la patología fúngica de virulencia y host que promueven el desarrollo o exacerbación de la enfermedad fúngica invasiva.
Modelos murinos siguen siendo importantes para estudios mecanísticos de la IA, ya que permiten a los investigadores a evaluar las funciones de los genes de virulencia micótica y anfitrión de efectores inmunes para el establecimiento y crecimiento de a. fumigatus en vivo4,5. Por lo tanto, varias estrategias han sido concebidas con el fin de efectivamente cuantificar o comparar la carga fúngica en los grupos de animales experimentales6,7. Estas estrategias implican inmunoensayo basado en la cultura, bioquímico, o métodos de qPCR, cada una con distintas ventajas y desventajas. Además, cada uno de estos métodos implican la dedicación de un subconjunto de animales además de los sacrificados por la evaluación de la función inmune efectora, análisis de expresión génica y la histopatología comparativa7. Así, estudios integrales de IA a menudo requieren un número significativo de animales de investigación en un costo significativo. Estrategias que reducen el tiempo experimental animal costos y consideraciones éticas mediante la utilización de tejidos animales para múltiples análisis son, por lo tanto, extremadamente valioso7.
En este informe, se presenta un método que describe la cuantificación de la coloración en cortes histológicos para la comparación de la carga fúngica relativa entre grupos experimentales de ratones con IA GMS. Cada paso de la cultura fungicida a infección, cosecha de tejido y procesamiento y adquisición de imágenes y análisis de datos se describe en detalle. Carga fúngica obtenido por cuantificación de GMS fueron comparado con qPCR en neutropénicos modelos de IA y en ratones tratados con caspofungina de tipo salvaje o carentes de eosinófilos con IA8. Los resultados muestran similitud con cuantificación de GMS y qPCR de ADN fúngico. Esto sugiere que la cuantificación de GMS puede ser útil a los investigadores que participan en el análisis histológicos como un método alternativo o suplementario de la comparación de la carga fúngica relativa en ratones con IA y puede reducir el costo y uso de animales de investigación en estudios complejos y mecanicistas.

<table><tbody><tr><td>Aspergillus fumigatus 293 Solución madre</td> Centro <td>de stock de genética fúngica</td><td>FGSC #A1100</td><td></td></tr><tr><td>HyPure Agua de grado de cultivo celular Thermo</td><td>Fisher Scientific</td><td>SH30529.03</td><td></td></tr><tr><td>Extracto de malta</td><td>MP Biomedicals</td><td>2155315</td><td>polvo blanco</td></tr><tr><td>BD&nbsp; Medios de cultivo deshidratados BBL Acidicase: Peptona</td><td>Fisher Scientific</td><td>L11843</td><td></td></tr><tr><td>Dextrosa (D-glucosa) anhidra (polvo granular/ACS certificado)</td><td>Fisher Scientific</td><td>D16-3</td><td></td></tr><tr><td>Fisher BioReagents Agar, polvo / escamas, Fisher BioReagents</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP1423-500</td><td></td></tr><tr><td>Auto Dry Cabinet</td><td>Shanghai Hasuc Instrument Manufacture Co., Ltd</td><td>HSFC160FD</td><td></td></tr><tr><td>Serie 1300 Clase II, Tipo A2 Cabina de Seguridad Biológica</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>1375</td><td></td></tr><tr><td>0.5 mm Perlas de vidrio</td><td>BioSpec Productos 11079105</td><td></td><td></td></tr><tr><td>15 ml Tubos cónicos</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>339650</td><td></td></tr><tr><td>Hemacitómetro</td><td>Fisher Scientific</td><td># 0267110</td><td></td></tr><tr><td>Leica Modelo DME Microscopio Leica</td><td>13595XXX</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Solución salina tamponada con fosfato de Dulbecco</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8662-500 ml</td><td></td></tr> tubos <tr><td>de 1,5 ml</td><td>Fisher Scientific</td><td># 05-408-129</td><td></td></tr><tr><td>BD Precisionglide&nbsp; agujas de jeringa, calibre 27, L 1/2 pulg.</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z192384</td><td></td></tr><tr><td>Anticuerpo anti-mouse-Ly-6G</td><td>BioXCell</td><td>BP0075-1</td><td>Clon 1A8</td></tr><tr><td>Diacetato de caspofungina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>SML0425</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurano</td><td>Henry Schein Animal Health</td><td>1169567762</td><td></td></tr><tr><td>Non-Rebreathing Máquina de anestesia veterinaria de mesa</td><td>Supera Anesthesia Innovations</td><td>M3000</td><td></td></tr><tr><td>Concentrador de oxígeno Pureline</td><td>Supera Anesthesia Innovations</td><td>OC8000</td><td></td></tr><tr><td>Restricción de tablero inclinado</td><td>Administración de instalaciones de la Universidad Estatal de Indiana</td><td>Hecho a</td><td></td>medida</tr><tr><td>Gilson&nbsp; PIPETMAN Classic 200 ml Pipets</td><td>Fisher Scientific</td><td>F123601G</td><td></td></tr><tr><td>Pentobarbital Sodio (Fatal-Plus)</td><td>Vortech Pharmaceuticals</td><td>0298-9373-68</td><td></td></tr><tr><td>Pinza de punta ancha de uso general</td><td>Fisher Scientific</td><td>10-300</td><td></td></tr><tr><td>Fisherbrand&nbsp; Tijeras de disección estándar</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-951-20</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas curvas de uso general Fisher</td><td>Scientific</td><td>10-275</td><td></td></tr><tr><td>Alcohol etílico-200 a prueba</td><td>PHARMCO-AAPER</td><td>111000200</td><td></td></tr><tr><td>almohadillas absorbentes Fisherbrand</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-206-63</td><td></td></tr><tr><td>BD Precisionglide&nbsp; agujas de jeringa, calibre 25, L 1 pulg.</td><td>Fisher Scientific</td><td>Z192406</td><td></td></tr><tr><td>Jeringas Norm-Ject totalmente plásticas</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-817-30</td><td></td></tr><tr><td>IV CATH ANGIOCATH 22GX1GIN 50B</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9742754</td><td></td></tr><tr><td>Solución de Formalina, tamponada neutra, 10%</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT501128-4L</td><td></td></tr><tr><td>50 ml Tubos Cónicos</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>339652</td><td></td></tr><tr><td>Thermo Scientific Shandon Incrustación de casetes II en paquetes de tubos</td><td>Fisher Scientific</td><td>B1000729</td><td></td></tr><tr><td>Fisherfinest&nbsp; Cera de parafina Histoplast</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-900-700</td><td></td></tr><tr><td>Moldes de base desechables</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-363-554</td><td></td></tr><tr><td>Reichert Jung Histocut 820 Microtomo</td><td>Labequip.com</td><td>31930</td><td></td></tr><tr><td>baño de agua</td><td>Precision Scientific</td><td>66630-23</td><td></td></tr><tr><td>incubadora de CO2</td><td>Fisher Scientific</td><td>116875H</td><td></td></tr><tr><td>Tinte de plata ( GMS modificado) Kit</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT100A-1KT</td><td></td></tr><tr><td>Fast Green FCF</td><td>Fisher Scientific</td><td>AC410530250</td><td></td></tr><tr><td>Portaobjetos de microscopio esmerilados</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-550-343</td><td></td></tr><tr><td>Fisherfinest Superslip Cover Glass</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-545-89</td><td></td></tr><tr><td>Cytoseal XYL</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-050-262</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio Olympus Provis AX70</td><td>Olympus</td><td>OLYMPUS-AX70</td><td></td></tr><tr><td>U-PHOTO Sistema de Fotografía Universal</td><td>Olympus</td><td>OLYMPUS-U-PHOTO</td><td></td></tr><tr><td>U-MCB-2 CAJA DE CONTROL MÚLTIPLE</td><td>Olympus</td><td>OLYMPUS-U-MCB-2</td><td></td></tr><tr><td>U-PS FUENTE DE ALIMENTACIÓN</td><td>OLYMPUS</td><td>OLYMPUS-U-PS</td><td></td></tr><tr><td>FreeZone 1 Litro Sistema de liofilización de sobremesa</td><td>LABCONCO</td><td>7740020</td><td></td></tr><tr><td>Máxima C&nbsp; Además&nbsp; Bomba de vacío</td><td>Fisher Scientific</td><td>01-257-80</td><td>Cilindrada- 6.1 cfm</td></tr><tr><td>1-Butanol</td><td>Fisher Scientific</td><td>A383-4</td><td></td></tr><tr><td>AMRESCO&nbsp; FENOL-CLORFORMO-OSOAMILO 100ML&nbsp; DFS</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9573988</td><td></td></tr><tr><td>Tubos de microcentrífuga independientes con tapones de rosca</td><td>Fisher Scientific</td><td># 02-682-557</td><td></td></tr><tr><td>Mini-Beadbeater-24</td><td>Productos BioSpec</td><td>112011</td><td></td></tr><tr><td>Productos BioSpec Socio de diversidad de proveedores CUENTAS DE CIRCONIO DE 2,3 MM</td> Base de <td>NC0451999</td><td></td>Tris de <td>Fisher Scientific</td></tr><tr><td>(cristales blancos o polvo cristalino/ Fisher Scientific</td><td></td> <td>BP152-1</td><td></td></tr><tr><td>Ácido clorhídrico, certificado ACS Plus</td><td>Fisher Scientific</td><td>A144S</td><td></td></tr><tr><td>Ácido etilendiaminotetraacético, sal disódica dihidratado</td><td>Fisher Scientific</td><td>S311</td><td></td></tr><tr><td>Dodecil Sulfato de sodio (SDS), polvo blanco, electroforesis</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP166</td><td></td></tr><tr><td>Cloroformo/alcohol isoamílico 24:1</td><td>Fisher Scientific</td><td>AC327155000</td><td></td></tr><tr><td>Biotek Epoch Espectrofotómetro de microplacas</td><td>Fisher Scientific</td><td>11-120-570</td><td></td></tr><tr><td>Thermo Scientific&trade; &nbsp; ABsolute Blue qPCR mezcla la</td> sonda de hibridación <td>Fisher Scientific</td><td>AB4137A</td><td></td></tr><tr><td>, 5&prime;-FAM-AGCCAGCGGCCCGCAAATG-TAMRA-3&prime;</td><td>Integrated DNA Technologies</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Imprimación de amplificación de sentido, 5&prime;-GGCCCTTAAATAGCCCGGT-3&prime;</td><td>Integrated DNA Technologies</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Imprimación de amplificación antisentido, 5&prime;-TGAGCCGATAGTCCCCCTAA-3&prime;</td><td>Tecnologías Integradas de ADN</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Biosistemas Aplicados&comercio; MicroAmp&comercio; Tira óptica de 8 tubos, 0,2 ml</td><td>Fisher Scientific</td><td>43-165-67</td><td></td></tr><tr><td>Thermo Scientific&nbsp; Tiras de tapa de PCR abovedadas y planas</td><td></td> Sistema QPCR <td>AB-0386</td><td></td></tr><tr><td>Mx3005P de Fisher Scientific, 110 voltios</td><td>Agilent</td><td>401443</td><td>Stratagene ahora es propiedad de ratones Agilent</td></tr><tr><td>BALB/c</td><td>El Laboratorio Jackson</td><td>000651</td><td></td></tr><tr><td>ratones C57BL/6 (B6)</td><td>El Laboratorio Jackson 000664</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Deficiencia de eosinófilos (&Delta; dblGATA, BALB/c fondo) ratones</td><td>El Laboratorio Jackson</td><td>005653</td><td></td></tr><tr><td>&gamma; &delta; Ratones deficientes en células T (TCR&delta;-/-, B6 fondo)</td><td>El Laboratorio Jackson</td><td>002120</td><td></td></tr><tr><td>Software ImageJ</td><td>Institutos Nacionales de Salud</td><td>N/A</td><td>https://imagej.nih.gov/ij/</td></tr> <tr><td>Spot Advanced</td><td>Software Spot Imaging</td><td>SPOT53A</td><td>http://www.spotimaging.com/software/spot-advanced/</td></tr> <tr><td>GraphPad Prism 6</td><td>Software GraphPad</td><td>N/A</td><td>https://www.graphpad.com/scientific-software/prism/</td></tr> <tr><td>Almohadillas absorbentes Fisherbrand</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-206-62</td><td></td></tr><tr><td>Paso 4.5</td><td></td><td></td><td>http://www.bdbiosciences.com/sg/resources/protocols/paraffin_sections.jsp ; http://www.jove.com/science-education/5039 ; http://www.sigmaaldrich.com/content/dam/sigma-aldrich/docs/Sigma/General_Information/1/ht100.pdf</td></tr></tbody></table>

cuantificación histológica para determinar la carga micótica pulmonar en aspergilosis experimental

Histological Quantification to Determine Lung Fungal Burden in Experimental Aspergillosis

La cuantificación de la carga fúngica pulmonar es fundamental para la determinación de los niveles relativos de protección inmune y la virulencia fúngica en modelos murinos de infección fúngica pulmonar. Aunque varios métodos son usados para evaluar la carga fúngica, reacción en cadena de polimerasa cuantitativa (qPCR) de ADN fúngico ha emergido como una técnica con varias ventajas sobre los anteriores métodos basados en la cultura. En la actualidad, una evaluación integral de la patología pulmonar, reclutamiento leucocitario, carga fúngica y expresión génica en ratones con aspergilosis invasiva (AI) exige el uso de un número significativo de experimental y control de animales. Aquí la cuantificación de pulmón histológico de tinción para determinar la carga micótica utilizando un reducido número de animales fue examinada detalladamente. Secciones del pulmón fueron manchadas para identificar estructuras fúngicas con plata de methanamine modificado de Gomori (GMS) de tinción. Imágenes fueron tomadas de las secciones manchadas de GMS de 4 campos discretos de cada pulmón de parafina-encajado formalina-fijo. El GMS manchadas áreas dentro de cada imagen se cuantificaron utilizando un programa de análisis de imagen, y de esta cuantificación, se determinó el porcentaje promedio de área manchada para cada muestra. Usando esta estrategia, ratones deficientes de eosinófilos exhibió disminución carga fúngica y la enfermedad con la terapia de la caspofungina, mientras que los ratones de tipo salvaje con IA no mejoró con caspofungina. Del mismo modo, la carga fúngica en ratones que carecen de células de T del γδ también fueron mejoradas por caspofungina, medida por qPCR y cuantificación de GMS. Cuantificación de GMS por lo tanto se presenta como un método para la determinación de la carga fúngica pulmonar relativa que puede reducir la cantidad de animales de experimentación necesarios para estudios integrales de la aspergilosis invasora.

Figura 4 incluye un gráfico de supervivencia de tipo salvaje o ratones deficientes de eosinófilos con IA trataron con caspofungina. Los resultados muestran que ratones deficientes de eosinófilos exhibieron aumento de la supervivencia en comparación con ratones wild type (mortalidad de 50% versus 100% de mortalidad, respectivamente). Figura 5 muestra representante GMS manchas de ratones de tipo salvaje y eosinófilos-deficiente neutropénicos con IA tratados o no tratados con caspofungina. Tratamiento de caspofungina resultó en la remoción de hongos relativa en deficiencia de eosinófilos, pero no de tipo salvaje ratones (paneles de la derecha), mientras que ambos grupos que no recibieron caspofungina fueron similares (paneles de la izquierda). Figura 6 muestra la comparación de la carga fúngica en tratados con caspofungina y controlar ratones de tipo salvaje o carentes de eosinófilos no tratados, utilizando ambos qPCR de ADN fúngico (figura 6A) y representante GMS cuantificación de 4 (objetivo de X 10) campos) Figura 6B). Los resultados generados a partir de ambas técnicas muestran que caspofungina resultados del tratamiento de la carga fúngica más importante disminuyen entre ratones de tipo salvaje y deficiencia de eosinófilos (figura 6A). Sin embargo, en ratones no tratados, cuantificación de GMS sólo produjo una disminución significativa en ratones que carecen de eosinófilos (Figura 6B). Cuando se calculó el área media de las secciones GMS-manchadas pulmonar total (objetivo de 4 X), las diferencias fueron similares a los resultados obtenidos con 4 campos de representante 10 X, aunque con menos significación estadística (figura 6). La figura 7 muestra la supervivencia, imágenes de representante GMS tinción (4 10 X campo) y cuantificación de la carga fúngica por ambos métodos en γδ ratones deficientes de células T (TCRδKO) que fueron tratados con caspofungina en comparación con el control, no se trata de ratones. Caspofungina el tratamiento mejoró la supervivencia (Figura 7A) y carga fúngica (figura 7B-D) en ratones TCRδKO. Similar a los resultados de la figura 6, los resultados de carga fúngica medida por qPCR (figura 7B) y representante de cuantificación de GMS (figura 7) fueron comparables.
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57155/57155fig4.jpg"> Figura 4: aumento de la supervivencia en ratones deficientes de eosinófilos (ΔdblGATA) con IA después del tratamiento con caspofungina. ratones/grupo de 15-30. Resumen de experimentos 3-6. p &lt; 0.0001. Esta figura fue modificada de una anterior publicación8. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57155/57155fig4large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57155/57155fig5.jpg"> Figura 5: imágenes representativas de las secciones de pulmón manchado GMS de tipo salvaje, eosinófilos deficiente y tratados con caspofungina o control sin tratan a ratones con IA Representante de ratones/grupo de 3-4. Barra de escala es equivalente a 100 μm. Esta figura fue modificada de una anterior publicación8. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57155/57155fig5large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57155/57155fig6.jpg"> Figura 6: carga hongos de tipo silvestre, ratones deficientes en eosinófilos con IA tratado o control trataron con caspofungina. (A) qPCR de ADN fúngico. 15-30 ratones/grupo, Resumen de los experimentos de 3 a 6. (B) GMS cuantificación de secciones histológicas, % medio de GMS manchas de 4 campos (objetivo de 10 x). (C) GMS cuantificación, % medio de la sección de pulmón entero (objetivo de 4 X). B y C son un resumen de 5 ratones/grupo. p &lt; 0.05. p &lt; 0.001. p &lt; 0.0001. Esta figura fue generada utilizando los datos que se informaron en la publicación anterior8. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57155/57155fig6large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57155/57155fig7.jpg"> Figura 7: disminuyó la severidad de la IA en los ratones de deficiencia de células T γδ después del tratamiento de la caspofungina. Supervivencia (A). (B) qPCR de ADN fúngico. (C) GMS cuantificación de histología. (D) imágenes representativas de las secciones manchadas de GMS de las células de T del γδ con IA, tratado o no tratado con caspofungina. A y B son un resumen de dos experimentos con ratones/grupo de 7-10. C y D son un resumen de 4 ratones/grupo. p &lt; 0.05. p &lt; 0.01. p &lt; 0.001. Esta figura fue modificada de una anterior publicación8. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57155/57155fig7large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>

Aquí se describe un protocolo para determinar la carga micótica pulmonar en ratones con aspergilosis invasiva por cuantificación de la coloración en cortes histológicos de plata de methanamine modificado de Gomori. Uso de este método dio lugar a resultados comparables con menos animales en comparación con evaluación de la carga de hongos por PCR cuantitativa de ADN fúngico de pulmón.

Cuantificación histológica para determinar la carga micótica pulmonar en aspergilosis Experimental

The quantification of lung fungal burden is critical for the determination of the relative levels of immune protection and fungal virulence in mouse ...

El objetivo general de este protocolo es cuantificar la carga fúngica pulmonar en ratones con aspergilosis invasiva mediante análisis histológico. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la patogénesis fúngica sobre los mecanismos de respuesta protectores y perjudiciales del huésped y los factores clave de virulencia fúngica. La principal ventaja de esta técnica es que las muestras histológicas existentes se pueden utilizar para obtener una carga fúngica con resultados comparables a la aplicación cuantitativa de PCR de ADN fúngico pulmonar.Aunque este método puede proporcionar información sobre la aspergilosis invasiva, también se puede aplicar a otros estudios de enfermedades en los que los patógenos se pueden teñir diferencialmente dentro de los tejidos del huésped. La primera vez que tuvimos la idea de este método fue cuando empezamos a pensar en métodos alternativos para cuantificar la carga fúngica pulmonar con menos variabilidad que los métodos cuantitativos de ADN. La demostración de los procedimientos de infección y cosecha estará a cargo de Angar Tsoggeral, un técnico de investigación.24 horas antes de la infección, agotar los neutrófilos de cada ratón experimental de siete a 10 semanas de edad con 0,5 miligramos de anticuerpo anti-Ly-6G en solución salina estéril administrada intraperitonealmente en un ángulo de 45 grados en el cuadrante lateral inferior derecho de cada animal y devolver a los ratones a sus jaulas. A la mañana siguiente, vierta 1,5 gramos de perlas de vidrio de 0,5 milímetros en una placa de cultivo de conidios de A. fumigatus e incline suavemente la placa hacia adelante y hacia atrás hasta que las perlas estén cubiertas con el hongo. Recoja la mezcla de cuentas recubiertas de conidios en un tubo cónico de 15 mililitros y suspenda las cuentas en cinco mililitros de DPBS.Agite las perlas para separarlas del hongo y cuente los conidios en una dilución 50X de sobrenadante en un hemocitómetro. Diluir los conidios a una concentración de uno por 10 a 8 conidios por mililitro de DPBS y cargar 50 microlitros de solución de conidios por ratón en micropipetas individuales. Después de confirmar la falta de respuesta al pinzamiento de los dedos del pie, coloque el primer ratón anestesiado sobre una tabla inclinada en posición supina y sujete suavemente los incisivos superiores con una banda elástica y los incisivos inferiores con un alambre metálico.Luego, use pinzas pequeñas para sostener cuidadosamente la lengua en extensión completa y administre 50 microlitros de la solución de conidios en la base de la lengua. Manteniendo la lengua en plena extensión, escuche la respiración rápida y el chasquido distintivo de la aspiración durante 20 segundos o hasta que la suspensión esté completamente aspirada. Luego, regrese suavemente al ratón a su jaula con monitoreo hasta que esté completamente recostado e infecte al siguiente animal.Cuando todos los ratones hayan sido infectados, inyecte un subconjunto de los animales con un agente antifúngico y repita la depleción de neutrófilos en todos los animales 24 horas después de la infección. Tres días después de administrar el hongo, coloque el primer ratón en posición supina sobre una tabla de espuma cubierta con una almohadilla absorbente. Asegúrese de que el ratón sea sacrificado con un pellizco en el dedo del pie y desinfecte el cabello con etanol al 70%.Después de asegurar las extremidades, use unas tijeras para abrir con cuidado la cavidad torácica superior cortando la caja torácica para exponer los pulmones y el corazón. Corte la vena cava inferior que desciende desde el corazón, teniendo cuidado de evitar cortar otros vasos sanguíneos o perforar algún órgano, y use una jeringa de cinco mililitros equipada con una aguja de calibre 25 sostenida en un ángulo de 45 grados para perfundir lentamente cinco mililitros de DPBS frío en el ventrículo derecho del corazón. Después de la perfusión con cinco mililitros de formalina al 10% de la misma manera, exponga cuidadosamente la tráquea y separe las almohadillas de grasa circundantes teniendo cuidado de no perforar la tráquea.Eleve la tráquea expuesta con pinzas y use una aguja de calibre 25 para hacer un agujero en la tráquea superior. Inserte con cuidado una cánula a través del orificio hacia los pulmones y ate un hilo quirúrgico sin apretar alrededor de la tráquea para asegurar la cánula. Use una jeringa de un mililitro para inflar los pulmones con un mililitro de tampón de formalina al 10% a través de la cánula y retire la cánula de manera rápida pero cuidadosa.Apriete el hilo quirúrgico para sellar la tráquea y tire suavemente del hilo para desconectar el tejido conectivo, permitiendo que se extraigan los pulmones y la tráquea. Coloque los pañuelos en un tubo cónico de 15 mililitros que contenga 15 mililitros de tampón de formalina al 10% con un extremo de la rosca fuera del tubo. A continuación, selle el tapón e invierta el tubo para sumergir completamente la muestra y el fijador durante al menos 24 horas.Para obtener imágenes del tejido extraído, primero abra un programa de cuantificación de imágenes apropiado y use un microscopio óptico para obtener al menos cuatro campos distintos de cada portaobjetos de plata de metanamina modificada de Gomori, o teñido con GMS, bajo el objetivo 10X. Asegúrese de que las imágenes sean representativas de las vías respiratorias infectadas dentro del pulmón y que presenten una densidad de tejido similar. Para agregar barras de escala a las imágenes, en el menú Editar, seleccione Agregar/Editar marcas de calibración y seleccione el grosor de línea, el color y el tamaño de la barra de escala.Haga clic en la imagen donde se colocará la barra de escala, luego abra el menú Editar y seleccione Combinar y Fusionar marcas de calibración para agregar una barra de escala a cada imagen y guardar las imágenes en las carpetas de grupo experimental apropiadas. Para calcular la carga fúngica en cada animal, abra un programa de procesamiento de imágenes adecuado y abra la primera carpeta de imágenes. En el menú Imagen, seleccione Tipo y pila RGB para convertir las imágenes.Con la tecla de flecha derecha, selecciona la segunda de las tres imágenes y presiona Control-Shift-T para abrir el ajustador de configuración del menú Umbral. Localice la imagen tiff o jpg original como referencia y abra la imagen con un programa de visualización de imágenes. Al seleccionar el valor umbral, es fundamental poder ver la imagen original para que el área seleccionada sea representativa de las hifas fúngicas y para garantizar la coherencia entre las muestras.Mueva el control deslizante superior completamente hacia la izquierda y ajuste el control deslizante inferior hasta que el área roja seleccionada sea representativa de la imagen de microscopía. Haga clic en Establecer y Aceptar, y seleccione Analizar y Establecer mediciones marcando Área, Fracción de área, Límite al umbral, Mostrar etiqueta y dejando la configuración inferior como predeterminada. Haga clic en Aceptar y seleccione Analizar y medir.Deberían aparecer los resultados. A continuación, exporte los datos a un programa de análisis de datos para su creación de gráficos y análisis estadísticos e introduzca la media de los cuatro o más porcentajes de área para cada muestra de pulmón. Como demuestra este gráfico representativo de supervivencia, los ratones deficientes en eosinófilos con aspergilosis invasiva tratados con un agente antifúngico después de la infección muestran una mayor supervivencia en comparación con los animales de tipo salvaje.La tinción representativa de GMS de ratones neutropénicos de tipo salvaje y deficientes en eosinófilos con aspergilosis invasiva revela un aclaramiento fúngico casi total en ratones knockout tratados con antifúngicos que no es recíproco en animales de tipo salvaje con o sin tratamiento antifúngico. Además, la PCR cuantitativa y la cuantificación de GMS con microscopía óptica manual, como se acaba de demostrar, confirman que el tratamiento con agentes antifúngicos da como resultado la disminución más significativa de la carga fúngica entre los ratones de tipo salvaje y los con deficiencia de eosinófilos. Sin embargo, en ratones no tratados, solo la cuantificación de GMS determinó una disminución significativa en los ratones con deficiencia de eosinófilos en este experimento.Cuando se calculan las áreas medias de las secciones teñidas de GMS de pulmón completo con un aumento de cuatro X, las diferencias son similares a los resultados obtenidos con cuatro campos representativos de 10X, aunque con menor significación estadística. También se observan resultados similares de supervivencia, carga fúngica y eliminación de hongos en ratones con deficiencia de células T gamma-delta tratados con el mismo agente antifúngico. Al intentar este procedimiento, es importante mantener la constancia al tomar imágenes de las secciones histológicas y al ajustar el valor umbral para obtener resultados comparables.Siguiendo este procedimiento, se pueden realizar otros métodos que implican el análisis histológico de muestras con claras diferencias entre la tinción objetivo y de fondo para responder a preguntas adicionales relacionadas con la patología de la enfermedad en los pulmones y otros tejidos. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo infectar ratones con conidios fúngicos por aspiración involuntaria y cómo medir el crecimiento de hongos en secciones de tejido pulmonar con un software de procesamiento de imágenes. No olvide que trabajar con Aspergillus fumigatus y la mancha de plata de metanamina modificada de Gomori puede ser peligroso y que siempre se deben tomar precauciones como usar equipo de protección personal y trabajar bajo una capucha bien ventilada mientras se realiza este procedimiento.

histological-quantification-to-determine-lung-fungal-burden

Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Se muestra, cómo el uso de 2-fotón microscopio para la observación de la dinámica de los granulocitos neutrófilos en los pulmones infectados, mientras que fagocitan los agentes patógenos o producir trampas de neutrófilos extracelular (NET).

La observación directa de la fagocitosis y la formación de NET-por los neutrófilos en los pulmones infectados con dos fotones Microscopía

La devastación de los cultivos de cereales de semillas por los hongos que infectan ha llevado a los numerosos esfuerzos de investigación para comprender mejor las interacciones planta-patógeno. Para estudiar las interacciones entre las semillas de hongos en un entorno de laboratorio, hemos desarrollado un método robusto para la cuantificación de reproducción de los hongos, la biomasa y la contaminación por micotoxinas mediante bioensayos del kernel.

La cuantificación de la colonización por hongos, esporogenesis y producción de micotoxinas mediante bioensayos del núcleo

Este video muestra un método para cuantificar la infección fúngica en larvas de pez cebra. Las esporas de hongos se microinyectan en el ventrículo posterior del cerebro de las larvas y las larvas se incuban para permitir el desarrollo de la infección. Las larvas infectadas se recolectan a intervalos definidos y el progreso de la infección se evalúa mediante la enumeración de las unidades formadoras de colonias.

Una técnica para cuantificar la infección fúngica en larvas de pez cebra

Este video muestra un método para cuantificar la fagocitosis de esporas de hongos patógenos marcados con FITC por leucocitos humanos. Las esporas fagocitadas se distinguen de las esporas adherentes a las células mediante la contratinción, seguida de un análisis de citometría de flujo.

Medición cuantitativa por citometría de flujo de la fagocitosis de esporas fúngicas por fagocitos humanos

Un método para evaluar la capacidad de los macrófagos alveolares aislados de ratón para controlar el crecimiento de esporas de Aspergillus fagocitados por microscopía confocal.

La evaluación de la actividad anti-fúngica de aislados macrófagos alveolares por microscopía confocal

Este protocolo proporciona un método rápido y fiable para medir cuantitativamente la fagocitosis de Aspergillus fumigatus conidia por los fagocitos primarios humanos utilizando citometría de flujo y para discriminar la fagocitosis de la conidia de la mera adhesión a los leucocitos.

Medición de la fagocitosis de Aspergillus fumigatus Conidia por leucocitos humanos utilizando citometría de flujo

Este protocolo describe un modelo de infección por Aspergillus en larvas de pez cebra. Las esporas de Aspergillus se microinyectan en el cerebro posterior de las larvas, y el tratamiento químico se utiliza para inducir la inmunosupresión. La progresión de la infección se supervisa a través de una configuración de imágenes diaria para controlar el crecimiento de hongos y las respuestas inmunitarias, así como la enumeración de esporas vivas por la colonia que forma el revestimiento de la unidad.

Infección De Larvas De Pez Cebra Con Esporas De Aspergillus Para El Análisis De Las Interacciones Huésped-Patógeno

Describimos el método para el análisis cuantitativo de la distribución de Aspergillus fumigatus conidia (3 μm de tamaño) en las vías respiratorias de ratones. El método también se puede utilizar para el análisis de micropartículas y la distribución de aglomerado de nanopartículas en las vías respiratorias en varios modelos de condiciones patológicas.

Análisis cuantitativo basado en microscopía de escaneo láser confocal de la distribución de conidios de Aspergillus fumigatus en pulmón de ratón ópticamente despejado de montaje entero

Presentamos un protocolo de imágenes en vivo sin etiquetas que utiliza técnicas de microscopía de luz transmitida para capturar imágenes, analizar y cuantificar la cinética de crecimiento del hongo filamentoso A. nidulans tanto en cultivos sumergidos como en medios sólidos. Este protocolo se puede utilizar junto con la microscopía de fluorescencia.

Análisis cuantitativo de la tasa de crecimiento de Aspergillus nidulans utilizando microscopía en vivo y software de código abierto

Presentamos un método para un modelo de patogénesis fúngica que preserva la posición natural de las esporas de hongos en las vías respiratorias pulmonares para su análisis mediante microscopía fluorescente.

Método eficiente para obtener imágenes de pulmones murinos que preserva la dinámica espacial de las esporas de hongos en las vías respiratorias

Aprende a cuantificar la carga fúngica pulmonar en ratones con aspergilosis invasiva mediante tinción de plata de Gomori. Este método histológico ofrece resultados comparables a PCR cuantitativa reduciendo el número de animales necesarios.

Cuantificación histológica para determinar la carga micótica pulmonar en aspergilosis Experimental

Explorar más videos