Name: Síntesis de nanotubos de carbono multipared modificados con nanopartículas de plata y la evaluación de sus actividades antibacterianas y propiedades citotóxicas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-10T12:30:00.000+00:00
Duration: 11 min 19 s
Description: Aprende a sintetizar nanotubos de carbono multipared modificados con nanopartículas de plata para evaluar su actividad antibacteriana y citotoxicidad en aplicaciones biomédicas.

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Este estudio fue apoyado por becas de investigación de la Universidad Chung-Ang (2016) y por el programa de desarrollo de la tecnología de Nano Material a través de la Fundación de investigación nacional de Korea(NRF) financiado por el Ministerio de ciencia y las TIC (Nº 2017M3A7B8061942).

1. MWCNT oxidación
<ol><li>Miden 30-50 mg de MWCNT en un frasco de 50 mL. Agregar lentamente 8 mL de H2hasta4: solución HNO3 (concentración inicial de 90%, 3:1 vol/vol) con una pipeta con puntas de pipeta de 1 mL. PRECAUCIÓN: Esta preparación debe realizarse en una campana de humos químicos.<ol>
<li>Deje 30 minutos para la reacción exotérmica completar.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Someter a ultrasonidos la solución a 60-80 ° C y 160 W durante 1 hora hasta MWCNT se instala en la parte inferior del frasco. PRECAUCIÓN: El nivel del agua en el sonicador debería ser inferior a la parte superior del frasco para que no se le introduce agua en el frasco.</li>
	<li>Transferir la solución a un tubo de centrífuga.<ol>
<li>Con una micropipeta, agregar 30 mL de agua destilada gota a gota a la solución de MWCNT-COOH. PRECAUCIÓN: Una fuerte reacción exotérmica ocurre durante la adición de agua destilada. Agregar agua destilada poco a poco y dar tiempo para el enfriamiento.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Centrifugue la solución MWCNT-COOH a 12.000 x g y temperatura ambiente durante 15 minutos. PRECAUCIÓN: Al utilizar una centrífuga, garantizar la centrifugadora equilibrada mediante la colocación de un tubo con el mismo peso frente al tubo de muestra.</li>
	<li>Quite el sobrenadante con una pipeta y pipeta de 1 mL. Añadir 5 mL de etanol con una pipeta y pipeta de 1 mL. Enjuague las paredes del frasco con etanol pipeteado adicional. Centrifugue la solución a 12.000 x g y temperatura ambiente durante 15 minutos.<ol>
<li>Determinar el pH del sobrenadante con papel pH. Repita el lavado y centrifugar hasta que el sobrenadante pH es neutro.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Retire el sobrenadante de todos. Añadir 1 mL de agua destilada para precipitar y MWCNT-COOH se dispersan uniformemente en la solución. Congelación en solución a-60 ° C en vacío hasta que se seque.</li>
</ol>2. deposición de nanopartículas plata en ello
<ol><li>10 mg de MWCNT-COOH en un tubo cónico de 50 mL y diluir con 30 mL de agua destilada. Someter a ultrasonidos solución a 60 ° C y 160 W durante 1 hora.</li>
	<li>Coloque 6 mL de 0.1 N de AgNO3 en un tubo cónico de 50 mL y diluir con 18 mL de agua destilada. Someter a ultrasonidos solución a 60 ° C y 160 W durante 1 hora. Atención: Añadir AgNO3 en proporción a la masa total de ello tal que la masa total de Ag no exceda del 20%.</li>
	<li>Añadir gota a gota la solución de AgNO3 a la solución de ello con una pipeta y pipeta de 1 mL mientras sonicando la mezcla a 60 ° C y 160 w. continuar sonicando durante 1 h después de añadir el de AgNO3.</li>
	<li>Centrifugue la solución a 12.000 x g y temperatura ambiente durante 15 minutos y eliminar el sobrenadante. Centrifugar la solución y eliminar el sobrenadante dos veces más.</li>
	<li>Añadir 1 mL de agua destilada a la mezcla de Ag-ello y dispersar el precipitado en la solución. Añadir 5 mL de etanol y permitir la reacción proceder a temperatura ambiente durante 1 h.</li>
	<li>Centrifugue la solución a 12.000 x g y temperatura ambiente durante 15 minutos y eliminar el sobrenadante.</li>
	<li>Determinar el pH del sobrenadante con papel pH. Repita el lavado y centrifugar hasta que el sobrenadante pH es neutro.</li>
	<li>Añadir 1 mL de agua destilada a Ag-ello y dispersar uniformemente en la solución. Congelación de la solución a-70 ° C en vacío durante 24 horas.</li>
</ol>3. zona de inhibición de la prueba
<ol><li>Mezclar 18,12 g de agar R2A y 1 L de agua destilada en un matraz. Esterilizar la mezcla en un autoclave a 121 ° C durante 15 minutos.</li>
	<li>Permita que el gel se enfríe a temperatura ambiente. Colocar 10 mL de gel en placas de Petri antes de endurecer para preparar el medio sólido.</li>
	<li>Coloque 100 μl de las bacterias en medio sólido. Trasmitir las bacterias en el medio sólido, utilizando un esparcidor. PRECAUCIÓN: Este procedimiento debe realizarse en una campana de vapores químicos, iluminada con una lámpara de alcohol.</li>
	<li>Incubar las placas a 30 ° C por 48 h.</li>
	<li>Mezcla de 3,12 g de R2A caldo con 1 L de agua destilada en un matraz. Esterilizar la mezcla en un autoclave a 121 ° C durante 15 minutos.</li>
	<li>Transferir las colonias crecidas en un medio líquido mediante un bucle y aguja e incubar en una incubadora a 180 rpm y 30 ° C.</li>
	<li>Registre el valor de OD (densidad óptica) por espectrofotometría UV a 600 nm en una base por hora para medir el crecimiento bacteriano. Nota: Se utilizó agar R2A en esta prueba, en lugar de agar Mueller-Hinton estándar, porque R2A es el recomendado: agar para crecimiento de Methylobacterium spp.
</li>
	<li>Lugar 10 mL de agar de R2A preparado en una caja Petri para preparar un agar de fondo.<ol>
<li>Mezcla de 3,12 g de caldo de R2A y 8 g de agar con 1 L de agua destilada. Esterilizar la mezcla en un autoclave a 121 ° C durante 15 min lugar 10 mL de este gel en el agar de la parte inferior.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Carga de 50 μl de solución de Ag-ello sobre disco de papel estéril con una micropipeta.<ol>
<li>Secar y esterilizar ello Ag muestra en una cámara de vacío bajo UV luz durante 30 minutos.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Lugar Ag-ello muestra en el agar.</li>
	<li>Incubar la placa de agar a 30 ° C durante 48 h.</li>
	<li>Zona de medida de inhibición12. Nota: Se incluyen instrucciones para el software utilizado en las referencias.</li>
</ol>4. prueba antibacteriano
<ol><li>Repita los pasos 3.1 a 3.7 para preparar cultivo bacteriano.</li>
	<li>En OD máximo, inocular 100 μl de las bacterias en 3 mL de medio líquido fresco con una punta de pipeta micro pipeta y 100 μl.</li>
	<li>Preparar cinco 50 muestras μl de la solución de control en tubos cónicos de 15 mL. Agregue lo siguiente a cada tubo: 1) metanol; 2) 1000 μg/mL MWCNT-COOH; 3) 50 μg/mL Ag-ello; 4) 40 μg/mL Ag-MWMWCNTs; 5) 30 μg/mL Ag-ello.</li>
	<li>Incubar a 30 ° C y 180 rpm hasta que el control es máximo activo determinado por espectrofotometría UV como se describió anteriormente.</li>
	<li>Medir el valor de OD de cada muestra y calcular la concentración de MIC. El valor de OD está directamente relacionada con el número de células bacterianas en el caldo de la muestra.</li>
	<li>Trasmitir las bacterias cultivadas en un medio sólido con un esparcidor.</li>
	<li>Incubar la placa a 30 ° C por 48 h.</li>
	<li>Recuento de colonias bacterianas y los valores de UFC de medida para determinar la actividad antibacteriana12. Nota: Se incluyen instrucciones para el software utilizado en las referencias.</li>
</ol>5. Análisis de viabilidad de
<ol><li>Después de quitar las células de cultivo de la incubadora, el medio de la succión y lavar tres veces con un lavado gota a gota 5 ml de PBS.</li>
	<li>Añadir 1 mL de tripsina-EDTA en PBS a la célula de lavado y succión después de 1 minuto.<ol>
<li>Toque en la placa para eliminar las células pegadas.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Añadir 5 mL de DMEM (medio modificado Eagle de Dulbecco) y luego retire las células. Centrifugar las muestras a 200 x g durante 3 minutos y retirar el sobrenadante.<ol>
<li>Añadir 1 mL de DPBS y mezclar.</li>
		<li>Contar las células en 10 μl de la solución con una máquina automatizada de conteo de células. Nota: Se incluyen instrucciones para la máquina de conteo celular utilizado en las referencias13.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Lugar 1 × 105 de AML12 células por pocillo en una placa de seis pozos que contengan solución DMEM. El medio contiene 10% (v/v) de suero fetal bovino y antibiótico estéril 1%.</li>
	<li>Incubar la placa de 8-12 h a 37 ° C en un ambiente de aire 95% 5% CO2.</li>
	<li>El sobrenadante de los pozos con un aspirador de succión.<ol>
<li>Agregar cada muestra conformada de 30-40 μg/mL Ag MWCNT a 1 mL de DMEM, NMS-DMSO (dimetil sulfóxido) y control.</li>
		<li>Incubar a 37 ° C en un ambiente de aire 95% 5% CO2para 8 h.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Eliminar el sobrenadante y lavar las muestras con 5 mL de PBS.</li>
	<li>Añadir 1 mL de preparado kit live/dead (20 μl de 2 mM EthD-1 con 5 μl de 4 mM calceína AM en DMSO en 10 mL de PBS) gota a gota a la celda.</li>
	<li>Incubar a colocados durante 30-45 min o 37 ° C durante 10 minutos la fluorescencia medida con microscopía de fluorescencia estándar en 100 X o 300 X.</li>
</ol>6. ensayo de azul de tripán
<ol><li>Preparar las muestras según pasos 5.1 a través de 5.6.2 arriba.</li>
	<li>Eliminar el sobrenadante.</li>
	<li>Lave la placa con 1 mL de 1 x DPBS y decantar.</li>
	<li>Añadir 1 mL de tripsina de la placa e incubar durante 3 min separar las células de cultura. Utilizar medio de cultivo celular que lave la placa y recoger las células. Colocar células colectadas en un tubo de 15 mL.</li>
	<li>Centrifugar el tubo a 200 x g y 4 ° C por 3 minutos.</li>
	<li>Deseche el sobrenadante. Añadir 1 mL de medio fresco a pellets celulares y volver a dispersar las células.</li>
	<li>Añadir 10 μl de azul tripán con 10 μl de células dispersas y contar las células con una máquina automatizada de conteo de células. Nota: Se incluyen instrucciones para la máquina de conteo celular utilizado en las referencias.</li>
</ol>

<ol><li>Löndahl, J. Physical and Biological Properties of Bioaerosols. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aL%C3%B6ndahl%2C+J+%22Bioaerosol+Detection+Technologies%22">Bioaerosol Detection Technologies</a>. , Springer. 33-48 (2014).</li>
<li>Jennings, S., Moran, A., Carroll, C. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/251238513_Bioaerosols_and_Biofilms">Bioaerosols and biofilms.</a> Biofilms in medicine, industry and environmental biotechnology. , IWA, London. 160-178 (2003).</li>
<li>Flemming, H. -C., Wingender, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+biofilm+matrix%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Microbiology%22%5BJournal%5D)">The biofilm matrix.</a> Nature Reviews Microbiology. 8 (9), 623-633 (2010).</li>
<li>Lewis, K. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC90417/">Riddle of biofilm resistance.</a> Antimicrobial agents and chemotherapy. 45 (4), 999-1007 (2001).</li>
<li>Doronina, N. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methylobacterium+suomiense+sp.+nov.+and+Methylobacterium+lusitanum+sp.+nov.%2C+aerobic%2C+pink-pigmented%2C+facultatively+methylotrophic+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Systematic+and+Evolutionary+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Methylobacterium suomiense sp. nov. and Methylobacterium lusitanum sp. nov., aerobic, pink-pigmented, facultatively methylotrophic bacteria.</a> International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 52 (3), 773-776 (2002).</li>
<li>Seo, Y., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4200021/">Antibacterial activity and cytotoxicity of multiwalled carbon nanotubes decorated with silver nanoparticles.</a> International Journal of Nanomedicine. 9, 4621-4629 (2014).</li>
<li>Chen, X., Schluesener, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanosilver%3A+a+nanoproduct+in+medical+application%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicologyletters%22%5BJournal%5D)">Nanosilver: a nanoproduct in medical application.</a> Toxicologyletters. 176 (1), 1-12 (2008).</li>
<li>Singh, M., et al. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/256463087_Nanotechnology_in_medicine_and_antibacterial_effect_of_silver_nanoparticles">Nanotechnology in medicine and antibacterial effect of silver nanoparticles.</a> Digest Journal of Nanomaterials and Biostructures. 3 (3), 115-122 (2008).</li>
<li>Morones, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+bactericidal+effect+of+silver+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Nanotechnology%22%5BJournal%5D)">The bactericidal effect of silver nanoparticles.</a> Nanotechnology. 16 (10), 2346(2005).</li>
<li>Martinez-Castanon, G., et al. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/225152132_Synthesis_and_antibacterial_activity_of_silver_nanoparticles_with_different_sizes">Synthesis and antibacterial activity of silver nanoparticles with different sizes.</a> Journal of Nanoparticle Research. 10 (8), 1343-1348 (2008).</li>
<li>Lok, C. -N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silver+nanoparticles%3A+partial+oxidation+and+antibacterial+activities%5BTitle%5D)+AND+%22JBIC+Journal+of+Biological+Inorganic+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Silver nanoparticles: partial oxidation and antibacterial activities.</a> JBIC Journal of Biological Inorganic Chemistry. 12 (4), 527-534 (2007).</li>
<li>Ferreira, T., Rasband, W. ImageJ User Guide Home Page. , Available from:
 <a target="_blank" href="http://imageJ.nih.gov/ij/docs/guide">http://imageJ.nih.gov/ij/docs/guide</a> (2010).</li>
<li>NanoEnTek Inc. Juli Br User Guide. , Hwaseong, Korea. Available from:
 <a target="_blank" href="http://www.nanoentek.com/upload/product/11/JuLI%20Br_User%20manual%20(V.1.6).pdf">http://www.nanoentek.com/upload/product/11/JuLI%20Br_User%20manual%20(V.1.6).pdf</a> (2012).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Aquí, Divulgamos un método simple para la preparación de ello con nanopartículas de Ag depositadas. Este nanomaterial con plata demuestra actividad antibacteriana substancial y mínimo potencial de absorción incontrolada de nanopartículas de plata en el cuerpo. Demostramos que 30 μg/mL de Ag sintetizado-ello es un nivel eficaz de actividad antibacteriana contra Methylobacterium spp con la insignificante citotoxicidad a hepatocitos de mamífero. Aunque mejoras adicionales y evaluaciones de bioseguridad para Ag-ello...

El objetivo de este estudio es hacer medio ambiente nanomateriales antibacteriano que pueden inhibir el crecimiento de bacterias forma biofilms. Estos nanomateriales antibacterianos tienen el potencial para superar los problemas de resistencia de toxicidad y antibiótico de antibióticos compuestos químicos o de productos químicos comúnmente usados. Un biofilm es una sustancia polimérica extracelular hidratada (EPS) que se compone de polisacáridos, proteínas, ácidos nucleicos y lípidos1,2. Biopelículas protegen la entrada de sustancias extrañas y ayudan a las bacterias a crecer vigorosamente3,4. Biofilms provocan olor y enfermedades infecciosas crónicas5,6. Methylobacterium spp., por ejemplo, crece adhiriéndose a lugares donde el agua está siempre presente o donde es difícil garantizar la Erradicación bacteriana en una base continua, como intercambiadores de calor de aire acondicionado, duchas y sanitarios. Estos tipos de biofilms provocan olor y enfermedades infecciosas crónicas5,6.
Normalmente, se utilizan productos químicos o compuestos químicos antibióticos para inhibir el crecimiento de bacterias que forman biopelículas. La aparición de bacterias resistentes a los antibióticos y las preocupaciones sobre seguridad en vivo de los productos químicos están impulsando la necesidad de desarrollar nuevos materiales para prevenir la formación de biofilms y para inhibir el crecimiento de bacterias.
En este estudio, se sintetizan nanomateriales antimicrobianos que están libres de toxicidad y resistencia a los antibióticos. La plata es una sustancia antimicrobiana conocida, y los acontecimientos recientes en la Nanociencia y la nanotecnología han llevado a investigación sobre los efectos antimicrobianos de nanopartículas de metal7,8. Estudios recientes han informado que el pequeño tamaño y alta relación superficie a volumen de las nanopartículas como resultado aumento de la actividad antibacteriana9,10,11.
Los nanomateriales presentados combinan nanopartículas de plata con nanotubos de carbono con un alto cociente de aspecto, lo que aumenta el área superficial por unidad de volumen y aumento de propiedades antimicrobianas. El compuesto de plata fabricado en carbono nanopartículas nanotubos presenta importantes propiedades antimicrobianas y mínima toxicidad para las células humanas y animales. Los procesos sintéticos en estudios anteriores utilizan peligrosos agentes reductores como el NaBH4, formamida, dimetilformamida e hidracina. El proceso es complicado, peligroso y desperdiciador de tiempo. El proceso sintético registrado aquí utiliza etanol como agente reductor significativamente menos peligroso.
Se midieron la zona de inhibición y la concentración bactericida mínima (CBM) para el Ag-ello; Vivo/muerto y ensayos de azul de tripano fueron utilizados para medir la toxicidad y propiedades antibacterianas. Concentración mínima inhibitoria (CMI) y ensayos de toxicidad mitocondrial (MTT), no se realizaron debido al color inusual de los nanotubos de carbono que habría interferido con los ensayos. Finalmente, se determinó la concentración mínima para prevenir el crecimiento de Methylobacterium spp sin afectar a células de mamíferos.

<table><tbody><tr><td>Nitrato de plata 0.1 N</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>1090811000</td><td></td></tr><tr><td>Nanotubo de carbono, de paredes múltiples</td><td>Tokyo Chemical Industry Co., LTD</td><td>308068-56-6</td><td></td></tr><tr><td>R2A agar</td><td>MBcell</td><td>MB-R1129</td><td></td></tr><tr><td>Caldo R2A</td><td>MBcell</td><td>MB-R2230</td><td></td></tr><tr><td>Methylobacterium spp.</td><td>KCTC</td><td>12618</td><td>de Corea Colección para Cultivos Tipo Daejeon Corea 12618, Daejon, Corea</td></tr><tr><td>Kit de imágenes de células vivas/muertas</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>R37601</td><td></td></tr><tr><td>AML12</td><td></td><td></td><td>de la Universidad de Chungnam, Dajeon, Corea</td></tr><tr><td>humano PBMC</td><td>ATCC</td><td>PCS-800-011</td><td></td></tr><tr><td>TEM</td><td>JEOL</td><td>JEM-2100F</td><td></td></tr><tr><td>XRD</td><td>Rigaku</td><td>D/MAX 2500</td><td>Fuente de fotones Cu K (40kV, 100mA)</td></tr><tr><td>JuLI Br</td><td>NanoEnTek</td><td>JULI-BRSC&nbsp;</td><td></td></tr></tbody></table>

síntesis de nanotubos de carbono multipared modificados con nanopartículas de plata y la evaluación de sus actividades antibacterianas y propiedades citotóxicas

Synthesis of Multi-walled Carbon Nanotubes Modified with Silver Nanoparticles and Evaluation of Their Antibacterial Activities and Cytotoxic Properties

En este estudio, los nanotubos de carbono multipared (ello) fueron tratados con una solución acuosa de ácido sulfúrico para formar un grupo funcional a base de oxígeno. Ello plata fueron preparado por la deposición reductiva de plata de una solución acuosa de AgNO3 en ello oxidado. Dado el color único de los CNTs, no era posible aplicar a la concentración mínima inhibitoria o ensayos de toxicidad mitocondrial para evaluar las características de toxicidad y antibacteriana, ya que pueden interferir con los ensayos. La zona de inhibición y la concentración bactericida mínima para la Ag-ello se midieron y análisis de azul de tripano y vivos/muertos se utilizaron para medir las características de toxicidad y antibacteriano sin interferir en el color de los CNTs.

Imágenes de microscopía electrónica (TEM) de transmisión confirman la formación de Ag-ello (figura 1A y 1B). Su síntesis exitosa fue confirmada por el cambio en la carga de superficie. Se calculó el tamaño de las partículas de Ag en el ello (figura 1). El tamaño de partícula promedio fue aproximadamente 3.83 nm. El patrón de DRX de la Ag-ello sintetizado como se muestra en la figura 1</stron...

En este estudio, nanomateriales antimicrobianos fueron sintetizados por oxidación ácida de nanotubos de carbono pirólisis y posterior deposición reductiva de nanopartículas de plata. Se realizaron pruebas de actividad y la citotoxicidad antimicrobianas con los nanomateriales como preparado.

Síntesis de nanotubos de carbono multipared modificados con nanopartículas de plata y la evaluación de sus actividades antibacterianas y propiedades citotóxicas

In this study, multi-walled carbon nanotubes (MWCNTs) were treated with an aqueous sulfuric acid solution to form an oxygen-based functional group. Silver ...

El objetivo general de este procedimiento es producir nanocomplejos antibacterianos que consisten en nanotubos de carbono con nanopartículas de plata sintetizadas en las superficies de los nanotubos. Este método se puede utilizar en el desarrollo de nuevos nanomateriales bacterianos que tengan una baja toxicidad para los seres humanos y, al mismo tiempo, fuertes propiedades sépticas para diversos tipos de bacterias y biopelículas. El protocolo describe la evaluación de nanocomplejos en la erradicación de bacterias manteniendo su biocomparabilidad con los humanos.Para comenzar el procedimiento, coloque de 30 a 50 miligramos de MWCNT en un vial de 50 mililitros. Con una micropipeta provista de puntas de pipeta de un mililitro, añada lentamente ocho mililitros de una solución de tres a uno por volumen de ácido sulfúrico y ácido nítrico a los MWCNT. Espere 30 minutos a que finalice la reacción exotérmica, luego sonique la solución a 60 a 80 grados centígrados y 160 vatios hasta que los MWCNT se asienten en el fondo del vial. lo que suele tardar alrededor de una hora.Transfiera la mezcla a un tubo de centrífuga. Use una micropipeta para agregar cuidadosamente 30 mililitros de agua destilada gota a gota a los MWCNT funcionalizados con ácido carboxílico, haciendo una pausa para permitir que la mezcla se enfríe según sea necesario. A continuación, centrifugar la mezcla a 12.000 g durante 15 minutos.Retire el sobrenadante con una pipeta equipada con una punta de pipeta de un mililitro. Agregue cinco mililitros de etanol al sólido y enjuague las paredes del vial con etanol adicional. Vuelva a centrifugar la mezcla con los mismos ajustes y compruebe el pH del sobrenadante con papel de pH.Continúe lavando los sólidos por centrifugación en etanol hasta que el pH del sobrenadante sea neutro, luego retire el sobrenadante y agregue un mililitro de agua destilada al precipitado. Disperse los MWCNT funcionalizados con ácido carboxílico en el agua y liofilice la dispersión a menos 60 grados centígrados al vacío. Coloque 10 miligramos de MWCNT funcionalizados con ácido carboxílico liofilizado en un tubo centrífugo cónico de 50 mililitros.Agrega 30 mililitros de agua destilada al tubo. Combine seis mililitros de nitrato de plata normal 0.1 y 18 mililitros de agua destilada en otro tubo cónico de 50 mililitros. Sonicar ambas mezclas a 60 grados centígrados y 160 vatios durante una hora.A continuación, mientras se sigue sonicando la dispersión del MWCNT a 60 grados centígrados y 160 vatios, se añade la solución de nitrato de plata gota a gota a la dispersión del MWCNT utilizando una pipeta equipada con una punta de pipeta de un mililitro. Una vez completada la adición, continúe sonicando la mezcla durante una hora, luego centrifugue la mezcla durante 15 minutos a 12.000 G a temperatura ambiente y retire el sobrenadante. Vuelva a dispersar los MWCNT de plata en 30 mililitros de agua destilada por sonicación a 24 grados centígrados durante 30 minutos.Repetir la centrifugación en 30 mililitros de agua destilada y eliminar el sobrenadante dos veces. A continuación, disperse los MWCNT de plata lavada en un mililitro de agua destilada por sonicación durante cinco minutos. Agregue cinco mililitros de etanol a la dispersión y revuelva la mezcla a temperatura ambiente durante una hora.A continuación, centrifugar la mezcla durante 15 minutos a 12.000 G a temperatura ambiente y comprobar el pH del sobrenadante. Retire el sobrenadante y vuelva a dispersar la mezcla en cinco mililitros de etanol por vórtice. Continúe lavando el precipitado en etanol por centrifugación hasta que el pH del sobrenadante sea neutro.Finalmente, disperse los MWCNT de plata lavados en un mililitro de agua destilada. Liofiliza la dispersión a menos 70 grados centígrados al vacío durante 24 horas y almacena la dispersión en un recipiente sellado. Para comenzar a preparar la prueba, mezcle y autoclave 18,12 gramos de agar R2A y un litro de agua destilada.Deje que el gel se enfríe a temperatura ambiente. Cuando el gel esté listo para verter, coloque 10 mililitros de gel en placas de Petri de 90 milímetros y deje que el agar se endurezca. En una campana extractora, use un asa y una aguja esterilizadas en llama de alcohol para rayar 100 microlitros de una mezcla de especies de metilobacterias en la superficie del medio de cultivo.Incubar los platos a 30 grados centígrados durante 48 horas, luego mezclar 3,12 gramos de caldo R2A con un litro de agua destilada y esterilizar el medio en autoclave a 121 grados centígrados durante 15 minutos. Use un asa y una aguja esterilizados para transferir las colonias al medio de crecimiento R2A. Incubar la muestra en una incubadora agitadora a 30 grados centígrados y 180 RPM.Mida la densidad óptica a 600 nanómetros por hora hasta que la densidad óptica sea superior a 0,7. A continuación, prepare otra placa de Petri que contenga 10 mililitros de agar R2A. A continuación, mezcle 3,12 gramos de caldo R2A y ocho gramos de agar con un litro de agua destilada.Esterilizar la mezcla en autoclave a 121 grados centígrados durante 15 minutos. Mezcle 100 microlitros del cultivo de metilobacteria en la mezcla de agar. Vierta 10 mililitros del gel que contiene metilobacterias sobre la capa inferior de agar R2A en la placa de Petri, luego prepare una dispersión de la concentración deseada de MWCNT de plata liofilizada en agua destilada.Utilice una micropipeta para cargar 50 microlitros de esta dispersión en un disco de papel estéril de seis por un milímetro. Aplique agua destilada a otro disco de papel estéril como control. Seque y esterilice ambos discos en una cámara de vacío bajo luz ultravioleta durante 30 minutos.A continuación, coloque la muestra de plata MWCNT y el control en el agar e incube la placa de agar a 30 grados centígrados durante 48 horas. Mida la zona de inhibición alrededor de la muestra de plata MWCNT cuando termine. Antes de la prueba, autoclave el agua destilada triple a 121 grados centígrados durante 15 minutos.Prepare una dispersión de 1000 microgramos por mililitro de MWCNT funcionalizados con ácido carboxílico y dispersiones de 50 microgramos por mililitro, 40 microgramos por mililitro y 30 microgramos por mililitro de MWCNT de plata en esta agua estéril. Para comenzar el procedimiento de prueba antibacteriana, prepare un cultivo de metilobacteria como se describió anteriormente y controle su densidad óptica a 600 nanómetros. Cuando la densidad óptica esté al máximo, inocular 100 microlitros del cultivo de metilobacterias en tres mililitros de medio de cultivo R2A fresco.Coloque 500 microlitros de esta solución en cada uno de los cinco tubos cónicos de 15 mililitros. Agregue 100 microlitros de metanol a uno de los tubos para preparar la muestra de referencia de metanol. Prepare una muestra para cada una de las cuatro dispersiones de la misma manera.Incubar las muestras y el cultivo de control de metilobacterias restantes a 180 RPM y 30 grados centígrados hasta que la densidad óptica del control indique la actividad máxima. Utilice un esparcidor esterilizado para esparcir cada muestra en gel de agar R2A sólido en placas de Petri. Incubar los platos a 30 grados centígrados durante 48 horas.Contar las colonias bacterianas resultantes y determinar la concentración mínima de bactericida. Los MWCNT de plata se sintetizaron con éxito utilizando el procedimiento descrito. El tamaño promedio de partícula de plata depositada fue de aproximadamente 3,83 nanómetros.No se observó crecimiento de Methylobacterium cuando se cultivó con dispersiones de 50 microgramos por mililitro o 40 microgramos por mililitro de MWCNT de plata. La población bacteriana se redujo 100.000 veces en relación con la muestra de control cuando se cultivó con una dispersión de 30 microgramos por mililitro de MWCNT de plata. Se observó una zona de inhibición alrededor de una muestra preparada a partir de una dispersión de 10 microgramos por mililitro de MWCNT de plata.No se observó ninguna zona de inhibición para una muestra preparada a partir de una dispersión de un microgramo por mililitro. Se observó cierta citotoxicidad cuando se añadió una dispersión de 40 microgramos por mililitro de MWCNT de plata. No se observó citotoxicidad significativa cuando se añadió una dispersión de 30 microgramos por mililitro.Un ensayo de azul de tripano confirmó que había una citotoxicidad mínima cuando se añadió una dispersión de 30 microgramos por mililitro de MWCNT de plata. Este protocolo ayudaría a los investigadores en la preparación de nanocomplejos que tengan nanopartículas metálicas que actúen directamente sobre los nanomateriales de carbono. Siguiendo este protocolo, los investigadores también podrían evaluar las propiedades antibacterianas de los nanocomplejos preparados.

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Síntesis de nanotubos de carbono multipared modificados con nanopartículas de plata y la evaluación de sus actividades antibacterianas y propiedades citotóxicas

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