Name: Aislamiento y caracterización de las vesículas extracelulares de adultos Schistosoma japonicum (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-22T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 37 s
Description: Aprende a aislar vesículas extracelulares de Schistosoma japonicum en cultivo in vitro con mínimo estrés. Este protocolo eficiente permite obtener EVs fisiológicas para estudiar la biología parasitaria.

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Este estudio fue, en parte o en conjunto, apoyados por la Fundación de Ciencias naturales nacionales de China (31472187 y 31672550) y la ciencia agrícola y tecnología programa de innovación de la Academia China de ciencias agrícolas.

Todos los experimentos en animales fueron aprobados por el Comité de ética local de Shanghai Instituto de investigación veterinaria, Academia China de ciencias agrícolas (permiso número: SHVRIAU-14-0101).
1. in Vitro cultura de esquistosomas
Nota: Esquistosomas representan un riesgo biológico. Los trabajadores deben usar guantes de látex en todo momento cuando manejo de gusanos, schistosomal suspensiones u otras relacionadas con los materiales biológicos. Conejos de Nueva Zelandia infectaron con ~ 2.000 cercariae vía abdominal la exposición. Se recolectaron esquistosomas en la etapa hígada de conejos infectados con S. japonicum cercariae en 28 días post-infección por la perfusión del hígado y las venas mesentéricas. Los procedimientos de colección de gusano han sido referenciados en publicaciones anteriores, informes de estudios realizados en ratones18.
<ol><li>Recoger parásitos en un vaso de precipitados de 500 mL. Lávelos cuidadosamente y suavemente 3 x con 200 mL de precalentado (37 ° C) PBS (pH 7.4).</li>
	<li>Separar ~ 200 pares de gusano para cada plato de Petri de 90 mm. Luego lave bien los parásitos y suavemente 2 x con 50 mL de precalentado (37 ° C) medio de cultivo RPMI-1640 que contiene 100 U de penicilina y 100 mg/mL de estreptomicina.</li>
	<li>Mantener parásitos en 40 mL de medio de cultivo RPMI-1640 precalentado sin antibióticos a 37 ° C debajo del 5% de CO2 a una densidad de gusano ~ 5 pares/ml para 2 h en 90 mm Petri dish. Notas: El Medio RPMI 1640 no debe contener suero, de lo contrario se introducirán exógeno vesículas extracelulares.</li>
</ol>2. tratamiento previo de la condición Media
<ol><li>Recoge el medio de cultivo y luego centrifugar el medio a 4 ° C a 2.000 x g por 30 min eliminar huevos y desechos tegmental del gusano.</li>
	<li>Transfiera el sobrenadante a un tubo nuevo y luego filtrar la solución con un filtro de jeringa de 0,22 μm.</li>
	<li>Recoger la solución filtrada en un bolso del dializado (corte de peso molecular: 3.5kD) y luego dializarse la solución utilizando 8% PEG8000 solución a 4 ° C durante la noche. Notas: Este paso es importante para enriquecer el SjEVs para aumentar el rendimiento de aislamiento de SjEVs.</li>
</ol>3. aislamiento de SjEVs
<ol><li>Transferir la solución de dializado a un tubo nuevo y añadir 0,5 volúmenes de reactivo de aislamiento total exosomas.</li>
	<li>Mezcle la solución bien por Vortex o pipeteando arriba y abajo para asegurar la homogeneidad de la solución.</li>
	<li>Incubar la mezcla a 2 ° C a 8 ° C durante la noche.</li>
	<li>Centrifugar la mezcla a 15.000 × g durante 1 h a 2 ° C a 8 ° C.</li>
	<li>Aspirar y descartar el sobrenadante. Notas: EVs están contenido en el sedimento en el fondo del tubo (no visible en la mayoría de los casos).</li>
	<li>Resuspender el precipitado de EVs en 2 mL de PBS y luego almacenar la solución de EVs a-80 ° C hasta su posterior análisis.</li>
</ol>4. Caracterización de los vehículos eléctricos por Western Blot
<ol><li>Determinar la concentración de proteína de la muestra SjEVs, por ejemplo, por análisis de la BCA.</li>
	<li>Preparar 10-20 μg de EVs en 22,5 μl de tampón de RIPA. Luego agregar 7.5 μl de 4 x cargando buffer y calor durante 5 minutos a 95 ° C.</li>
	<li>Proteínas de SjEVs separadas por gel de SDS-PAGE de 12%.</li>
	<li>Transferencia de las proteínas a membranas PVDF y luego probe con anticuerpos anti-CD63 (1:1, 000 dilución), seguidos por sondeo con anti-conejo IgG-HRP (1:5, 000 dilución).</li>
	<li>Utilizar el reactivo de detección ECL para el desarrollo de la membrana y detectar las señales de una sistema de imagen de la quimioluminescencia.</li>
</ol>5. Caracterización de los vehículos eléctricos por microscopía electrónica de transmisión
<ol><li>Añadir 2 μl de SjEVs aisladas a rejillas de formvar recubierto de malla 200 y luego deje que se seque a temperatura ambiente.</li>
	<li>Mancha con el 2% de ácido fosfotúngstico durante 1 minuto y luego deje que se seque a temperatura ambiente.</li>
	<li>Carga de las rejillas sobre el portamuestras de microscopio electrónico de transmisión y expuesto a un haz de electrones kV 80 para la captura de la imagen.</li>
</ol>6. etiqueta SjEVs con PKH67 y análisis de absorción de la célula
Notas: Todos los pasos posteriores se realizaron a temperatura ambiente (20-25 ° C), a menos que se indique lo contrario.
<ol><li>Transferencia 5 μg solución SjEVs en un tubo de polipropileno de fondo cónico y ajustar el volumen de 12 mL mediante la adición de Medio RPMI 1640.</li>
	<li>Centrifugue el SjEVs en 110.000 × g durante 90 minutos a 4 ° C para SjEVs de pellets.</li>
	<li>Después de la centrifugación, cuidadosamente aspirar el sobrenadante. Nota: El tinte de etanol de PKH67 no se debe agregar directamente a la SjEV de la pelotilla, como esto daría lugar a la coloración heterogénea y viabilidad celular reducida.</li>
	<li>Preparar una solución de suspensión EV 2 x añadiendo 1 mL de diluyente C a la pelotilla SjEV; para asegurar la completa dispersión, resuspender con pipeteo suave.</li>
	<li>Justo antes de la tinción en diluyente C, preparar un fresco 2 x solución colorante agregando 2 μl de la solución de tinte etanólico de PKH67 a 1 mL de diluyente C en un tubo de centrífuga de polipropileno y mezcla bien para dispersar.</li>
	<li>Rápidamente añadir 1 mL de 2 x EV suspensión (paso 6.4) a 1 mL de 2 x solución de colorante (paso 6.5) e inmediatamente mezcle la muestra mediante pipeteo.</li>
	<li>Incubar la mezcla a temperatura ambiente durante 4 minutos.</li>
	<li>Detener la coloración añadiendo 4 mL de SBF y luego incubar durante 1 minuto.</li>
	<li>Añadir medio RPMI1640 para ajustar el volumen de 12 mL y centrifugar luego a 110.000 × g a 4 ° C durante 90 minutos.</li>
	<li>Quite el sobrenadante y añadir medio RPMI1640 para Resuspender el PKH67 etiquetada SjEV pellets.</li>
	<li>Centrifugue a 110.000 × g a 4 ° C durante 90 minutos a lavar una vez y luego añadir PBS para volver a suspender los pellets de SjEVs.</li>
</ol>7. ensayo de absorción de célula de SjEVs
<ol><li>Las células mamíferas de la semilla como NCTC clonación células de 1469 o células HEK293T en placas de 6 pocillos (2 × 105 células por pocillo) y las células de la cultura durante la noche.</li>
	<li>Añadir 5 μg SjEVs etiqueta de PKH67 y las células a 37 ° C para 2-4 h después de la cultura.</li>
	<li>Después de la incubación, retirar el medio y lavar las células con PBS dos veces.</li>
	<li>Fijar las células con solución de formaldehído 4% durante 15 minutos y lavar dos veces con PBS.</li>
	<li>Se tiñen los núcleos de célula con 4′, 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI).</li>
	<li>Observar las células utilizando microscopía de fluorescencia.</li>
</ol>

<ol><li>Tetta, C., Ghigo, E., Silengo, L., Deregibus, M. C., Camussi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+vesicles+as+an+emerging+mechanism+of+cell-to-cell+communication%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrine%22%5BJournal%5D)">Extracellular vesicles as an emerging mechanism of cell-to-cell communication.</a> Endocrine. 44 (1), 11-19 (2013).</li>
<li>Abels, E. R., Breakefield, X. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Introduction+to+Extracellular+Vesicles%3A+Biogenesis%2C+RNA+Cargo+Selection%2C+Content%2C+Release%2C+and+Uptake%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Mol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Introduction to Extracellular Vesicles: Biogenesis, RNA Cargo Selection, Content, Release, and Uptake.</a> Cell Mol Neurobiol. 36 (3), 301-312 (2016).</li>
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<li>Li, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circular+RNA+is+enriched+and+stable+in+exosomes%3A+a+promising+biomarker+for+cancer+diagnosis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Circular RNA is enriched and stable in exosomes: a promising biomarker for cancer diagnosis.</a> Cell Res. 25 (8), 981-984 (2015).</li>
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<li>Cwiklinski, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Extracellular+Vesicles+of+the+Helminth+Pathogen%2C+Fasciola+hepatica%3A+Biogenesis+Pathways+and+Cargo+Molecules+Involved+in+Parasite+Pathogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Proteomics%22%5BJournal%5D)">The Extracellular Vesicles of the Helminth Pathogen, Fasciola hepatica: Biogenesis Pathways and Cargo Molecules Involved in Parasite Pathogenesis.</a> Mol Cell Proteomics. 14 (12), 3258-3273 (2015).</li>
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<li>Sotillo, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+vesicles+secreted+by+Schistosoma+mansoni+contain+protein+vaccine+candidates%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Extracellular vesicles secreted by Schistosoma mansoni contain protein vaccine candidates.</a> Int J Parasitol. 46 (1), 1-5 (2016).</li>
<li>Nowacki, F. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+and+small+non-coding+RNA-enriched+extracellular+vesicles+are+released+by+the+pathogenic+blood+fluke+Schistosoma+mansoni%5BTitle%5D)+AND+%22J+Extracell+Vesicles%22%5BJournal%5D)">Protein and small non-coding RNA-enriched extracellular vesicles are released by the pathogenic blood fluke Schistosoma mansoni.</a> J Extracell Vesicles. 4, 28665(2015).</li>
<li>Wang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exosome-like+vesicles+derived+by+Schistosoma+japonicum+adult+worms+mediates+M1+type+immune-+activity+of+macrophage%5BTitle%5D)+AND+%22Parasitol+Res%22%5BJournal%5D)">Exosome-like vesicles derived by Schistosoma japonicum adult worms mediates M1 type immune- activity of macrophage.</a> Parasitol Res. 114 (5), 1865-1873 (2015).</li>
<li>Koh, Y. Q., Almughlliq, F. B., Vaswani, K., Peiris, H. N., Mitchell, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exosome+enrichment+by+ultracentrifugation+and+size+exclusion+chromatography%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Biosci+%28Landmark+Ed%29%22%5BJournal%5D)">Exosome enrichment by ultracentrifugation and size exclusion chromatography.</a> Front Biosci (Landmark Ed). 23, 865-874 (2018).</li>
<li>Safdar, A., Saleem, A., Tarnopolsky, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+potential+of+endurance+exercise-derived+exosomes+to+treat+metabolic+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">The potential of endurance exercise-derived exosomes to treat metabolic diseases.</a> Nat Rev Endocrinol. 12 (9), 504-517 (2016).</li>
<li>Livshits, M. A., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26616523">Isolation of exosomes by differential centrifugation: Theoretical analysis of a commonly used protocol.</a> Sci Rep. 5, 17319(2015).</li>
<li>Zhu, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Release+of+extracellular+vesicles+containing+small+RNAs+from+the+eggs+of+Schistosoma+japonicum%5BTitle%5D)+AND+%22Parasit+Vectors%22%5BJournal%5D)">Release of extracellular vesicles containing small RNAs from the eggs of Schistosoma japonicum.</a> Parasit Vectors. 9 (1), 574(2016).</li>
<li>Zhu, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+characterization+of+S.+japonicum+exosome-like+vesicles+reveals+their+regulatory+roles+in+parasite-host+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Molecular characterization of S. japonicum exosome-like vesicles reveals their regulatory roles in parasite-host interactions.</a> Sci Rep. 6, 25885(2016).</li>
<li>Lewis, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Schistosomiasis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Immunol%22%5BJournal%5D)">Schistosomiasis.</a> Curr Protoc Immunol. , Chapter 19 Unit 19 11(2001).</li>
<li>Cheng, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulating+miRNAs%3A+roles+in+cancer+diagnosis%2C+prognosis+and+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Drug+Deliv+Rev%22%5BJournal%5D)">Circulating miRNAs: roles in cancer diagnosis, prognosis and therapy.</a> Adv Drug Deliv Rev. 81, 75-93 (2015).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Estudios recientes sobre EVs han demostrado eso schistosome que EVS juegan un papel importante en huésped-patógeno interacciones3,9,12,16. Atender más sus funciones reguladoras es esencial aislar EVs de esquistosomas. Aquí, describimos un método alternativo para el aislamiento de SjEV. Este método produce un tamaño de amplia gama de SjEVs, de 100 nm a 400 nm, en adultos S. japonicum. E...

Las vesículas extracelulares (EVs) son una población de pequeñas vesículas de membrana-limita con varias proteínas, lípidos y ácidos nucleicos. Estudios recientes demostraron que EVs desempeñan un papel crucial en la comunicación de la célula y participan en la regulación de numerosos procesos fisiológicos, incluyendo el desarrollo de las células, regulación inmune, angiogénesis y migración de célula2, 3,4,5. La acumulación de pruebas indica que EVs, circulación de exosomas y su carga de miRNA representan potenciales biomarcadores de ciertas enfermedades6.
Varios protozoos como Trichomonas vaginalis, Trypanosoma cruziy Leishmania spp., han demostrado ser capaces de secretar EVs; helmintos, además se han encontrado secretar EVs en vida alberga7. EVs parasitarias han demostrado para estar implicado en el mantenimiento de la infección, patogenicidad8y9de la regulación inmune. Recientes estudios en esquistosomas ambos Schistosoma mansoni (S. mansoni) 10,11 y S. japonicum12 han indicado que los esquistosomas adultos secretan exosomas como vesículas que pueden ser involucrados en las normas funcionales de procesos biológicos específicos.
Hasta la fecha, se han utilizado varios métodos para aislar las vesículas extracelulares, como la ultracentrifugación, ultrafiltración13, el uso de reactivos basados en polímeros, cromatografía por exclusión de tamaño y aislamiento de inmunoafinidad. Estos métodos poseen sus propias ventajas y limitaciones de la14. Generalmente, la ultracentrifugación se considera el método estándar de oro para el aislamiento de la vesícula. Sin embargo, este método adolece de la limitación del potencial de agregación EV14.
De esquistosomas, han divulgado un par de métodos para el aislamiento de EV: Estos incluyen ultracentrifugación11,12,10 y el uso de comerciales EV aislamiento kit16 para varias etapas (huevos16, esquistosómula11, esquistosomas adultos10,12,17). Dado que microvesículas son de una amplia gama de tamaño de varios cientos nanómetros a mil nanómetros, desarrollamos un método alternativo que combina con el uso de la centrífuga de banco, ultrafiltración y un kit de aislamiento comercial de EV para aislar el servicio voluntario europeo de adultos Schistosoma japonicum. El servicio voluntario europeo aislado típicamente poseía un diámetro de 100-400 nm y con éxito fueron internalizado por las células del receptoras.

<table><tbody><tr><td><Material>fuerte</fuerte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Reactivo de aislamiento total de exosomas (a partir de medios de cultivo celular)</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>4478359</td><td>Para aislar vesículas extracelulares de S. japonicum</td></tr><tr><td>PKH67</td><td>Sigma-aldrich</td><td>MINI67</td><td>Para el etiquetado de Evs</td></tr><tr><td>RPMI 1640 Medium</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>11875119</td><td>Para el cultivo de parásitos</td></tr><tr><td>Penicilina-estreptomicina</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>0.22&mu; m filtro de jeringa</td><td>Merck</td><td>SLGP033RB</td><td></td></tr><tr><td>SnakeSkin tubo de diálisis</td><td>Thermo SCIENTIFIC</td><td>68035</td><td></td></tr><tr><td>PEG8000</td><td>Sangon Biotech</td><td>A100159&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>RIPA</td><td>Beyotime</td><td>P0013B</td><td></td></tr><tr><td>EMD Millipore&trade; Inmuebles&comercio; Sustrato HRP quimioluminiscente occidental (ECL)</td><td>Fisher scientific</td><td>WBKLS0100&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Tecnología de señalización celular</td> <td>DAPI</td><td>4083</td><td></td></tr><tr><td>BCA kit</td><td>Beyotime</td><td>P0010</td><td></td></tr><tr><td>Anticuerpos CD63</td><td>Sangon Biotech</td><td>D160973-0025</td><td></td></tr><tr><td>PVDF</td><td>Bio-Rad</td><td>1704273</td><td></td></tr><tr><td>Formvar/Carbon 400 malla</td><td>Ted Pella</td><td>01754-F</td><td></td></tr><tr><td>Ácido fosfotúngstico</td><td>Ted Pella</td><td>19402</td><td></td></tr><tr><td>anti-ratón IgG-HRP</td><td>CWBIO</td><td>CW0102</td><td></td></tr><tr><td>NCTC clon 1469 células</td><td>ATCC</td><td>ATCC&reg; CCL-9.1 y comercio;</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>HyClone</td><td>SV30087.02</td><td></td></tr><tr><td>Equipments</td>GE sistema de <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>imagen de quimioluminiscancia</td>, <td>GE</td><td>ImageQuant LAS4000mini</td><td></td></tr><tr><td>Microscopía electrónica de transmisión</td><td>Hitachi</td><td>H-7600</td><td></td></tr><tr><td>Milli-Q agua</td><td>Milli-Q Milli-Q</td><td>Elix</td><td></td></tr><tr><td>Eppendor Centrífuga&nbsp;</td><td>Centrífuga Eppendorf</td><td>5804R</td><td></td></tr><tr><td>Zetasizer Nano</td><td>Malvern</td><td>Zetasizer Nano ZS&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Ultracentrífuga</td><td>Beckman</td><td>Optima L-100 XP Incubadora de ultracentrífugas</td><td></td></tr><tr><td></td><td>ESCO</td><td>CCL-107B</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio</td><td>Zeiss</td><td>Zeiss Axin Observer Z1</td><td></td></tr></tbody></table>

aislamiento y caracterización de las vesículas extracelulares de adultos schistosoma japonicum

Isolation and Characterization of Extracellular Vesicles from Adult Schistosoma japonicum

Las vesículas extracelulares (EVs) son vesículas membranosas por una variedad de células en el microambiente extracelular. EVs representan una población de vesículas heterogéneas, cuyo rango de tamaño entre 40 y 1.000 nm. Evidencia acumulada indica que EVs desempeñan importantes funciones reguladoras en las interacciones patógeno-host. Una profunda comprensión del schistosome EVs debe proporcionar penetraciones en los mecanismos subyacentes a las interacciones host esquistosoma, permitir el desarrollo de nuevas estrategias contra la esquistosomiasis. Aquí, nuestro objetivo es profundizar el estudio funciones de EVs en esquistosomas presentando un protocolo para el aislamiento y la caracterización de los vehículos eléctricos de adultos Schistosoma japonicum (S. japonicum). EVs se aislaron en vitro el medio de cultivo utilizando centrifugación combinada con un kit de aislamiento comercial exosomas. Los aislados de S. japonicum EVs (SjEVs) por lo general poseen un diámetro de 100-400 nm y se caracterizan por microscopía electrónica de transmisión y el borrar occidental. El uso de PKH67 SjEVs de marcado tinte ha demostrado que SjEVs es internalizados por las células del receptoras. En general, el protocolo proporciona un método alternativo para aislar EVs de esquistosomas adultos; el SjEVs aislado puede ser adecuado para el análisis funcional.

Para cuantificar el rendimiento de SjEVs aislados usando el protocolo descrito, se utilizan análisis de proteína BCA para acceder a la concentración de proteína de la SjEVs aislada de esquistosomas adultos de 28 días. Como se muestra en la tabla 1, la concentración de proteína de SjEV sido 208 μg 250 μg por 100 mL de medio (tabla 1). El tamaño de partícula, según lo determinado por análisis de nanopartículas de Malvern, indica que el aislado SjEVs varió d...

Aquí, presentamos un protocolo para describir el aislamiento de las vesículas extracelulares (EVs) en medio de cultivo en vitro de adultos Schistosoma japonicum.

Aislamiento y caracterización de las vesículas extracelulares de adultos Schistosoma japonicum

Extracellular vesicles (EVs) are membranous vesicles released by a variety of cells into the extracellular microenvironment. EVs represent a population of ...

El objetivo general de este procedimiento es aislar vesículas extracelulares del medio de Schistosoma japonicum adulto cultivado in vitro. Este método puede aislar eficientemente EV en un medio de cultivo in vitro de Schistosoma japonicum adulto. La principal ventaja de esta técnica es que es capaz de aislar eficientemente la vesícula extracelular del medio de cultivo in vitro a corto plazo, lo que puede minimizar el estrés que puede resultar en la secreción no fisiológica de EV.La demostración estará a cargo de Juntao Liu, un técnico de mi laboratorio. Recoja los parásitos en un vaso de precipitados de 500 mililitros y lávelos a fondo pero suavemente tres veces con 200 mililitros de PBS tibio. Mantenga los lavados breves y use la sedimentación por gravedad para separar los parásitos.A continuación, en platos de 90 milímetros, coloque unos 200 pares de gusanos por plato. En el plato, lave los parásitos dos veces más utilizando la sedimentación por gravedad. Para estos lavados, use medio RPMI tibio complementado con pen-strep.Reemplace el segundo lavado con 40 mililitros del medio sin antibióticos. Luego, cultive los parásitos a 37 grados Celsius bajo un 5% de dióxido de carbono durante dos horas. Después de dos horas, transfiera los medios de las placas a los tubos de centrífuga y luego agrupe los huevos y los restos de lombrices a 2.000 g durante 30 minutos a cuatro grados centígrados.Luego, recoja y transfiera el sobrenadante a un tubo nuevo. A continuación, filtre el sobrenadante a través de un filtro de jeringa de 0,22 micras y recoja la solución filtrada en una bolsa de dialización con un corte de peso molecular de 3,5 kilodaltons. Luego, dialice la solución con una solución de PEG8000 al 8% a cuatro grados centígrados durante la noche.Este paso es importante para aumentar el rendimiento de las vesículas extracelulares. Al día siguiente, transfiera la solución dializada a un tubo nuevo y agregue 0,5 volúmenes del reactivo de aislamiento de exosomas total. Mezcle la solución hasta que esté homogénea e incube a unos cinco grados centígrados durante la noche.A la mañana siguiente, centrifugar la mezcla a 15.000 g durante una hora a unos cinco grados centígrados. A continuación, aspire y deseche el sobrenadante, y vuelva a suspender la bolita de los EV en dos mililitros de PBS. Es probable que el perdigón no sea visible.Para el análisis de Western blot, primero determine la concentración de proteínas de la muestra, como con el ensayo BCA. A continuación, prepare de 10 a 20 microgramos de EV en 22,5 microlitros de tampón RIPA. A continuación, añade 7,5 microlitros de tampón de carga 4X y calienta la mezcla a 95 grados centígrados durante cinco minutos.Después del tratamiento térmico, separar las proteínas de las vesículas extracelulares en un gel 12%SDS-PAGE. Después de hacer funcionar el gel, las proteínas se transfieren a la membrana de PVDF. Pruebe la membrana con anticuerpos anti-CD63 en una dilución de uno a 1.000.A continuación, tratar la membrana con IgG-HRP anti-conejo en una dilución de uno a 5.000. Ahora, use un reactivo de detección ECL para desarrollar la membrana y siga con el análisis en un sistema de imágenes de quimioluminiscencia. Comience transfiriendo cinco microgramos de muestra a un tubo de ultracentrífuga de polipropileno y ajuste el volumen a 12 mililitros con medio RPMI-1640.A continuación, centrifugar la muestra a 110.000 g durante 90 minutos a cuatro grados centígrados. Después de la centrifugación, aspire con cuidado y deseche el sobrenadante. A continuación, prepare una suspensión de vesícula extracelular 2X añadiendo un mililitro de diluyente C al pellet.Vuelva a suspender el pellet con un pipeteo suave. Ahora, prepare una nueva solución de tinte 2X. Agregue dos microlitros del colorante etanólico PKH67 a un mililitro de diluyente C en un tubo de microfuga y mezcle bien.A continuación, tiñe la muestra mezclando las dos soluciones e incubando la mezcla a temperatura ambiente durante cuatro minutos. A continuación, detenga la mancha agregando cuatro mililitros de FBS y espere un minuto más. Luego, agregue el medio RPMI-1640 para ajustar el volumen a 12 mililitros y gire la suspensión para aislar las vesículas teñidas.Retire y deseche el sobrenadante. A continuación, vuelva a suspender los EV peletizados con la etiqueta PKH67 en 12 mililitros de medio RPMI-1640. A continuación, repita la centrifugación, pero esta vez recoja las vesículas en un mililitro de PBS.Para el ensayo de absorción, prepare cultivos nocturnos de células de mamíferos en placas de seis pocillos. A la mañana siguiente, agregue cinco microgramos de vesículas marcadas con PKH67 a cada pocillo y continúe el cultivo durante dos a cuatro horas. Después de la incubación, retire el medio y lave las células con PBS dos veces.Luego, fije las células durante 15 minutos, lávelas dos veces con PBS y tíñelas con DAPI antes de obtener imágenes. Los esquistosomas en la etapa hepática se recolectaron de conejos 28 días después de la infección. A continuación, se recogieron vesículas extracelulares de los gusanos esquistosomas y se analizaron.Su tamaño de partícula, determinado por el análisis de nanopartículas de Malvern, oscilaba entre 100 y 400 nanómetros, con la mayor parte de la población cerca de los 220 nanómetros. La microscopía electrónica de transmisión reveló que las vesículas extracelulares eran redondas y tenían entre 100 y 200 nanómetros de diámetro. El análisis de Western blot indicó que las vesículas extracelulares aisladas se reconocieron mediante anticuerpos CD63, que es un marcador típico de vesículas extracelulares.La microscopía de fluorescencia de vesículas extracelulares marcadas con PKH67 internalizadas por las células del clon 1469 de NCTC mostró que las vesículas extracelulares se distribuían principalmente en el citoplasma de las células receptoras. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo aislar EV en un medio de cultivo in vitro de Schistosoma japonicum adulto.

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