22 de mayo de 2018
Este protocolo describe cómo preparar oligómeros de Aß de un péptido sintético en vitro y evaluar cantidades relativas de oligómero Aβ mediante un punto de análisis el borrar.
Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo neurofarmacológico. La principal ventaja de esta técnica es que es sencilla, fiable y reproducible para formar oligómero beta-amiloide. Mostramos que la demostración de este método es fundamental ya que los pasos para preparar el oligómero beta son difíciles de aprender.
Primero, ajuste la concentración de la solución de monómero A-beta a 0,25 miligramos por mililitro agregando 900 microlitros de agua bidestilada al tubo. Luego continúe evaporando la solución de monómero con gas nitrógeno de alta pureza hasta que el volumen alcance aproximadamente 850 microlitros con una concentración de aproximadamente 0,29 miligramos por mililitro. La presencia de HR5P afecta a la formación de oligómero A-beta.
Por lo tanto, evaporar tanto como sea posible es un paso crítico de este procedimiento. A continuación, utilice agua bidestilada para diluir la solución madre de curcumina y preparar una solución de trabajo de 0,2 y dos micromolares. Mantenga una proporción de uno a uno y mezcle la solución A-beta con curcumina para lograr la concentración final de curcumina en 0,1 y un micromolar.
Luego, deje la solución en un agitador magnético. Conecte una caja divisoria de plástico al agitador magnético. Coloque dos barras de agitación magnéticas en las dos esquinas de la caja, luego coloque los tubos con las muestras en el centro de la caja.
Continúe agitando la caja a temperatura ambiente durante 48 horas a 60 revoluciones por minuto, luego centrifugue el tubo a 18, 000 veces G durante 15 minutos a cuatro grados centígrados. Después de la centrifugación, recoja el sobrenadante. Para el análisis de transferencia de puntos, tome una membrana de nitrocelulosa y córtela en tiras de un centímetro de ancho, luego coloque dos microlitros de la muestra de manera uniforme en las tiras uno y dos con cada intervalo de puntos a 0,5 centímetros.
Al rociar la muestra sobre la membrana, es necesario esparcir uniformemente y las diferentes gotas se controlan para que las diferentes muestras no se unan entre sí. A continuación, incuba las tiras a temperatura ambiente durante cinco minutos para que las gotas se sequen. Después de cinco minutos, incubar las tiras con 5% de albúmina sérica bovina durante 30 minutos a temperatura ambiente.
Una vez finalizada la incubación, lave las tiras con tampón TBST durante cinco minutos. Aspire el tampón una vez finalizado el lavado, luego incube la tira uno con el anticuerpo antioligómero A11 y la tira dos con la solución del anticuerpo anti-A-beta 6E10 durante una hora. Después de una hora, lave las tiras con TBST durante cinco minutos cada tres veces, luego aspire el tampón e incube las tiras con una solución de anticuerpos secundarios durante 40 minutos.
Después de la incubación secundaria de anticuerpos, vuelva a lavar las tiras con TBST durante cinco minutos cada tres veces. Luego, agregue aproximadamente 300 microlitros de líquido ECL mezclado a la superficie de las tiras húmedas, luego exponga las tiras en un sistema automático de imágenes de quimioluminiscencia. Los estudios TEM muestran la ausencia de agregados visibles en la solución de monómero A-beta disuelto en HFIP, sin embargo, después de 48 horas de incubación, el mismo monómero forma oligómeros, que son principalmente agregados globulares con un diámetro de 10 a 80 nanómetros.
Al someter las muestras ricas en monómeros y oligómeros A-beta a un análisis de transferencia de puntos, muestra la presencia de oligómeros A-beta positivos A11 en muestras ricas en oligómeros A-beta. Curiosamente, los péptidos A-beta 6E10 positivos están presentes tanto en el monómero A-beta como en las muestras ricas en oligómeros. A continuación, también se realiza un análisis semicuantitativo para expresar las muestras específicas de monómero A-beta beta y oligómero positivas para anticuerpos como un porcentaje de control.
Los péptidos A-beta positivos A11 son significativamente más altos en las muestras ricas en oligómeros A-beta en comparación con los monómeros. Por el contrario, el péptido A-beta 6E10 positivo A-beta está presente tanto en las muestras ricas en monómeros como en oligómeros. De hecho, los oligómeros A-beta también se incuban conjuntamente con la curcumina y el inhibidor de los oligómeros A-beta.
La curcumina conduce a una reducción significativa en la cantidad relativa de oligómero A-beta positivo A11 con una disminución de la tinción de A11 en las muestras de oligómero A-beta co-incubadas con curcumina. Sin embargo, las concentraciones variables de curcumina no afectan el número de péptidos A-beta en las muestras ricas en monómeros y oligómeros positivos para 6E10 en comparación con las muestras positivas para A11. Una vez dominada, esta técnica se puede realizar en varias horas si se realiza correctamente.
Tras su desarrollo, esta técnica allanó el camino para que los investigadores exploraran candidatos a fármacos para trastornos neurodegenerativos como la enfermedad de Alzheimer. Después de ver este video, debe tener una buena comprensión de cómo preparar el oligómero A-beta y evaluar su cantidad.
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Este protocolo describe la preparación de oligómeros de Aβ a partir de un péptido sintético in vitro y la evaluación de sus cantidades relativas mediante análisis de inmunotransferencia por puntos (dot blotting). Este método es sencillo, fiable y reproducible, lo que lo hace esencial para la investigación neurofarmacológica.
La preparación y cuantificación confiable de oligómeros de β-amiloide positivos para A11 es fundamental para la validación de dianas en etapas tempranas de neurodegeneración y para el cribado de inhibidores en la investigación de la enfermedad de Alzheimer. Este protocolo permite la generación reproducible y la evaluación semicuantitativa de especies oligoméricas tóxicas, lo que respalda la confianza predictiva en la prueba de hipótesis terapéuticas. El método aborda directamente un punto crítico clave para la desestimación mecanicista y la selección de carteras en la I+D neurofarmacológica.
Este protocolo se integra en la interfaz entre el descubrimiento inicial y la identificación de compuestos activos, permitiendo pruebas de hipótesis sólidas y el desarrollo de ensayos para carteras de enfermedades neurodegenerativas.