Name: In Vitro Cría de las abejas solitarias: una herramienta para evaluar factores de riesgo larvas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-07-16T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 50 s
Description: Aprende a criar larvas de abejas solitarias in vitro para evaluar el impacto de fungicidas y sus interacciones con simbiontes microbianos. Este método permite estudiar factores de riesgo en polinizadores.

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Los autores agradecen Kimball Clark y Tim Krogh para proporcionar Cañas anidación Osmia , Meredith Nesbitt y Molly Bidwell para asistencia en el laboratorio, los doctores Cameron Currie, Christelle Guédot, Terry Griswold, Michael Branstetter y tres revisores anónimos sus útiles observaciones que mejoraron el manuscrito. Este trabajo fue apoyado por fondos de USDA-Agricultural Research Service apropiado (actual investigación sistema de información #3655-21220-001), Departamento de agricultura de Wisconsin, el comercio y la protección de los consumidores (#197199), National Science Foundation (bajo Grant no. DEB-1442148), el DOE grandes lagos bioenergía Research Center (Oficina de DOE de ciencia BER DE-FC02-07ER64494).

1. Preparar soluciones de Propiconazol fungicida exposición experimentos
<ol><li>Preparar 0.1 x solución fungicida disolviendo volúmenes apropiados de comercialmente comprados propiconazole 14.3% en agua estéril el día del experimento. Asegúrese de que la única solución fungicida recién preparado se utiliza para todos los tratamientos.</li>
	<li>Añadir 23 μl de 0,1 x solución de fungicida por gramo de provisión de polen para obtener la concentración máxima de propiconazole previamente divulgado del polen de abeja-recogido24 (0,361 PPM o μg del principio activo g-1 de polen).</li>
</ol>2. cosecha de huevos y provisiones de polen Host de Osmia Cañas
<ol><li>Con un bisturí esterilizado, diseccionar recién conectado anidación cañas de Osmia, dividir en dos partes a lo largo de la longitud de la caña para exponer las cámaras individuales. Nota: Cada nido puede contener entre 8 y 14 cámaras y un solo huevo dentro de una cámara.</li>
	<li>Inspeccione las cañas visualmente para identificar las cámaras que contienen huevos macho basados en directrices previamente publicado77. Uso esterilizado agujas despuntadas para quitar cada provisión de polen junto con el huevo asociado de la caña de anidación y colocar en un peso barco.</li>
	<li>Suavemente separa el huevo de la prestación con un pincel limpio fino y registrar el peso fresco de la provisión de polen y de huevo con una balanza de laboratorio estándar. Calcular el peso promedio de las disposiciones del polen masculino.</li>
	<li>Realice los pasos siguientes con retardo mínimo para reducir las posibilidades de daño al huevo de la exposición a exceso de temperatura y la deshidratación.</li>
</ol>3. preparar provisiones de polen de planta huésped
<ol><li>Inspeccione visualmente el polen de las plantas de anfitrión maternal recogidos de las cámaras de anidamiento para asegurar que no hay parásitos presentes78. Con el fin de reducir cualquier sesgo potencial maternal, combinar las disposiciones de polen en una sola masa en una placa Petri estéril y mezclar bien con una aguja esterilizada.</li>
	<li>Dividir la masa combinada de nuevas provisiones de polen, asegurando que el peso de cada disposición reconstituido es aproximadamente igual al peso promedio de una disposición naturalmente asignado masculino (promedio ± SE de 0,35 ± 0,01 g, N = 42). Nota: Porque Osmia sp. asigna más pequeñas provisiones de polen a la descendencia masculina, esto se traduce en menor peso corporal de las larvas macho comparada con la de las mujeres77. Para evitar tal sesgo resultante de las diferencias de sexo, solamente use huevos masculinos en los experimentos.</li>
</ol>4. preparar la disposición de polen de planta no huésped
<ol><li>Pulverizar comercialmente comprado miel abeja recoge polen a un polvo fino usando un molino de bolas de laboratorio estándar.</li>
	<li>Basado en el contenido de humedad de las disposiciones acogida maternal recogen polen (~ 20%), hidratar el polvo del polen usando adecuados volúmenes de solución de azúcar 40% esterilizado79 y mezcla bien para formar una consistencia de masa.</li>
	<li>Se dividen en masas de polen individuales, cada uno pesa aproximadamente lo mismo que el peso medio de una disposición masculina naturalmente asignado. Nota: Grado de humedad del polen de acogida maternal recogen disposiciones pueden estandarizarse en previos comparando el peso fresco y seco de provisiones de polen de 30 cámaras hombres seleccionados al azar80. Para obtener el peso seco, provisiones de polen deben ser liofilizados en un liofilizador (1.5 Pa durante 72 h).</li>
</ol>5. preparar platos para cultivo celular pocillos
<ol><li>Línea de pozos individuales de la placa de cultivo de 48 pozos estériles con autoclave tazas de lata (5 × 9 cm). Utilizando pinzas estériles, toque suavemente hacia fuera el borde superior de la cápsula de manera que puede contener el suministro de polen.</li>
	<li>Coloque una sola masa de anfitrión o host no provisión de polen dentro de la taza lata utilizando herramientas estériles basados en el grupo de tratamiento. Nota: Para evitar la contaminación cruzada, utilizar placas separadas por grupos de tratamiento y control.</li>
</ol>6. Añadir fungicidas
<ol><li>Hacer una depresión centralmente colocada dentro de la masa de polen usando un palillo de madera estéril. Utilice un palillo nuevo para cada suministro de polen.</li>
	<li>Añadir volúmenes adecuados de solución fungicida (para tratamiento), o agua estéril (para controles) en la depresión. Pellizcar la apertura de la depresión usando pinzas estériles para minimizar la superficie de contacto entre el fungicida / estéril agua y el huevo.</li>
	<li>Asegúrese de que la configuración factorial del diseño experimental se alinea con el representado en la representación esquemática (figura 4).</li>
</ol><img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57876/57876fig4.jpg"> Figura 4. Representación esquemática de la disposición experimental. El experimento representa un totalmente cruzado 2 x 2 factorial configuraciones. El factor 1 representa exposición fungicida y consta de 2 niveles: (i) ningún fungicida (N = 10) y (ii) fungicida (N = 10). Factor 2 representa la fuente de polen y consta de 2 niveles: polen (i) Host (N = 8) y (ii) no-host polen (N = 8). <a href="/files/ftp_upload/57876/57876fig4large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
7. posterior y observar las larvas
<ol><li>Colocar un huevo masculino seleccionado al azar en la parte superior de la provisión de polen con un pincel limpio fino. Una vez que los huevos han sido colocados en todas las disposiciones, vuelva a colocar la tapa de la placa de cultivo celular, asegurándola con cinta en las esquinas de etiquetado.</li>
	<li>Coloque las placas bien en una bandeja limpia y cubrirla con un paño oscuro para obstruir el contacto con la luz directa. Lugar un pozo 6 de la placa que contiene 30 mL de agua estéril dentro de la bandeja para evitar desecación. Deje las bandejas de incubación sin perturbaciones dentro de una incubadora a temperatura ambiente.</li>
	<li>Observar las placas bien diariamente bajo un microscopio de disección sin quitar la tapa de las placas bien. Asegúrese de que las larvas están vivas comprobando el movimiento. Si se detecta ningún movimiento, deseche la taza lata con larvas muertas y la provisión de polen restante. Permita que todas las larvas sobrevivientes a desarrollar sin perturbaciones dentro de las placas bien hasta llegar a la etapa prepupal.</li>
	<li>Eliminar la larva de la Copa de lata una vez que alcanza la etapa prepupal41. Utilice un cepillo para limpiarlas defecar desde el capullo de seda. Cuidadosamente corte el capullo de seda utilizando un microscopio de disección y extraer la prepupa con pinzas de goma.</li>
	<li>La prepupa suavemente para asegurar que las herramientas no perforar el cuerpo suave de la manija. Registrar el peso fresco de la prepupa (prepupal biomasa) y el tiempo de desarrollo de huevo a la etapa prepupal (tiempo de desarrollo larval). Nota: Cualquier larva muerta debe ser desechada inmediatamente para evitar el crecimiento microbiano indeseable en el cadáver y disposición de restos de polen. Esto reduce el riesgo de infección a las larvas sanas restantes.</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Cría de abejas fuera de sus naturales desove Cañas, bajo condiciones de laboratorio, permite la prueba de hipótesis múltiples sobre larvas fitness. En la medida en que factores no identificados continúan causan mortalidad de las abejas, estudios de evaluación de riesgos en vitro experimentos pueden ayudar a identificar posibles amenazas e informar las prácticas de manejo para este grupo de especies de polinizadores silvestres 12 ,38,<sup clas...

Dado su papel como el grupo dominante de insectos polinizadores1, la pérdida global de las poblaciones de abejas amenaza la seguridad alimentaria y el ecosistema estabilidad2,3,4,5,6 ,7. La tendencia descendente en ambas poblaciones de abejas manejadas y silvestres se han atribuido a varios factores de riesgo compartidos, incluyendo la fragmentación del hábitat, emergentes de parásitos y patógenos, pérdida de diversidad genética y la introducción de especies invasoras3 ,4,7,8,9,10,11,12. En particular, el dramático incremento en el uso de plaguicidas, (por ejemplo, neonicotinoides) ha sido relacionado con efectos perjudiciales entre las abejas13,14,15. Varios estudios han demostrado que el sinergismo entre neonicotinoides y fungicidas (EBI) inhibición de biosíntesis de ergosterol puede llevar a elevada mortalidad a través de múltiples abejas especies16,17,18 , 19 , 20 , 21 , 22. sin embargo, fungicidas, considerados durante mucho tiempo ser 'bee-safe', continúan ser aplicados en cultivos de in bloom sin mucho escrutinio23. Las abejas libadoras se han documentado para llevar habitualmente cargas de polen contaminadas con residuos de fungicida24,25,26. El consumo de esto fungicidas-ladenpollen puede causar alta mortalidad larval abejas27,28,29,30y una suite de efectos subletales entre abejas adultas16 , 31 , 32 , 33 , 34. un estudio reciente sugiere que los fungicidas pueden causar pérdidas de abejas alterando la comunidad microbiana dentro de polen almacenado de colmena, interrumpiendo así las simbiosis fundamentales entre abejas y polen transmitidas por microbios35.
Aunque las abejas solitarias son vitales para la polinización de plantas silvestres y agrícolas varios36,37,38, este grupo diverso de polinizadores ha recibido mucha menos atención en estudios de monitoreo de pesticidas. El nido de una hembra solitaria adulta contiene 5-10 cámaras de cría selladas, cada uno abastecido con una masa finita de maternal recogen polen y néctar y un huevo individual39. Después de la eclosión, las larvas se basan en el suministro de polen asignado y la microbiota asociada transmitidas por el polen para obtener una nutrición adecuada40,41. Porque carecen de los beneficios de un estilo de vida social, las abejas solitarias pueden ser más vulnerables a los pesticidas de exposición42. Por ejemplo, mientras déficits en abejas sociales siguiendo un aerosol puede ser compensada a algunos extienden por trabajadores y emergentes cría, la muerte de una sola hembra adulta solitaria termina toda actividad reproductiva43. Tales diferencias en la susceptibilidad resaltan la necesidad de incorporar taxones diversos abeja en estudios ecotoxicológicos para asegurar una protección adecuada para las abejas silvestres y manejadas por igual. Sin embargo, aparte de un puñado de estudios, las investigaciones sobre los efectos de la exposición de fungicida se ha enfocado principalmente en abejas sociales18,23,32,44,45 ,46,47,48,49.
Las abejas solitarias pertenecientes al género Osmia (figura 1) se han utilizado en todo el mundo como eficientes polinizadores de varias importantes frutos y tuerca cultivos39,50,51,53, 53. como con otros polinizadores gestionado grupos de24,54,55,56,57,58, abejas adultas nomada son rutinariamente expuestos a fungicidas en cultivos en floración44. Hembras adultas alimentándose en los cultivos recientemente pulverizados pueden acumular y almacenar sus cámaras de cría con polen cargados de fungicida, que más tarde forma la dieta única para las larvas en desarrollo. Consumiendo las provisiones de polen contaminados posteriormente puede exponer las larvas a fungicida residuos42. El riesgo de exposición puede ser mayor entre las especies de oligolectic que alimentan solamente en algunos host relaciona plantas59,60,61. Por ejemplo, ciertas abejas megachilid, parecen forraje preferencial de polen de Asteraceae de baja calidad, como una forma de reducir el parasitismo62. Sin embargo, la medida que fungicidas impactan fitness larvas entre las abejas solitarias oligolectic no sido empíricamente cuantificada. El objetivo de este estudio es desarrollar un protocolo para prueba de la cañería y efectos interactivos de la fuente de exposición y polen de fungicida en la aptitud de in vitro criaban abejas solitarias. Para investigar, huevos de o. ribifloris sensu lato (s.l.) se pueden obtener comercialmente (tabla de materiales). Esta población es ideal debido a su importancia como un polinizador nativo y su fuerte predilección por el rico néctar de Mahonia aquifolium (uvas de Oregón) encontrado dentro de la región53,63,64 (Figura 2).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57876/57876fig1.jpg"> Figura 1. Una foto de alta resolución de un adulto Osmia ribifloris. Foto crédito Dr. Jim Cane, entomólogo de la investigación, USDA-ARS <a href="/files/ftp_upload/57876/Figure_1.pdf" target="_blank">haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57876/57876fig2.jpg"> Figura 2. Phragmite nidos juncos de Osmia ribifloris (s.l.) con una hembra de anidación en el primer plano. Particiones de cámara y tapones terminales para las cañas están construidas de hojas masticados. Foto cortesía Sr. Kimball Clark, NativeBees.com <a href="/files/ftp_upload/57876/57876fig2large.jpg" target="_blank">por favor haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
El primer objetivo de este estudio es evaluar el efecto del consumo de polen tratados con fungicida en larvas fitness (medido en términos de tiempo de desarrollo y biomasa prepupal). Mientras que la exposición al Propiconazol fungicida aplicado comúnmente se ha relacionado con aumento de la mortalidad entre abejas adultas a través de varias especies 23,24,32,44,45, 54,55,56,57,58,65,66,67, su impacto en las abejas larvas es menor conocido. El segundo objetivo de este estudio es evaluar los efectos del consumo de polen no host en fitness larval. Estudios previos indican que las larvas de las abejas oligolectic no desarrollar cuando obligado a consumir polen de host no68. Estos resultados pueden atribuirse a variaciones en la abeja fisiología69, polen bioquímica70y el microbioma benéfico asociados con polen natural disposiciones71. El tercer objetivo de este estudio es evaluar los efectos interactivos de polen dietético y tratamiento fungicida en fitness larval.
Numerosos rasgos biológicos incluyendo el tamaño del cuerpo materno, aprovisionamiento ritmo, estrategia de forrajeo y polen cantidad72,73,74,75 se saben que afectan larvas fitness entre las abejas solitarias. Estos factores pueden introducir variabilidad significativa entre Cañas, que plantea un desafío en el desarrollo de diseños experimentales defendibles cuando se evalúan salud de larvas. Por otra parte, dado que el desarrollo larvario se produce dentro de cañas de anidación selladas, los efectos de tal variabilidad en la descendencia son difíciles de visualizar y cuantificado sin utilizar técnicas no letales (figura 3). Para superar este desafío, todas las hipótesis en este estudio se analizan utilizando larvas criadas fuera de sus nidos juncos. El diseño experimental representa una totalmente cruzado 2 x 2 factorial configuraciones, con cada factor que consta de 2 niveles; Factor 1: Exposición fungicida (fungicida; Sin fungicida); Factor 2: Fuente de polen (Host polen, polen no-host). Las abejas se levantan de lo huevo a la etapa prepupal en placas pocillos estériles de la célula bajo condiciones controladas de laboratorio. Cada bien individualmente está equipado con una cantidad estandarizada de provisión de polen y un solo huevo. Después de la eclosión, la larva se alimenta de polen asignado dentro del pozo, completa el desarrollo larvario e inicia la pupación. Estudios anteriores han demostrado que la mortalidad inexplicada es menor entre las abejas planteadas dentro de este ambiente de crianza artificial que encontró en el salvaje49,76. El uso de vitro-abejas criadas tiene varias ventajas sobre los estudios de campo: 1) minimiza los efectos de confusión de la variabilidad natural y factores no controlados típicamente asociados con estudios en el campo; 2) que permite varios niveles de manipulación para cada factor de interés a probarse simultáneamente en los grupos de tratamiento; 3) el número de repeticiones puede ser predeterminado, y factores experimentales para cada repetición pueden manipularse individualmente; 4) variables de respuesta larvas pueden ser fácilmente visualizadas y grabadas independientemente sin inquietantes larvas adyacentes; 5) el protocolo puede ser modificado para adaptarse a diseños experimentales más complejos que involucra múltiples factores y variables de respuesta.
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57876/57876fig3.jpg"> Figura 3. Contenidos dentro de una caña de anidación natural de Osmia ribifloris (s.l.). Cerca de (A) una caña disecada que muestran las cámaras, provisiones de polen y (B) y particiones recién cosechadas provisiones de polen y los huevos asociados (indicados con un círculo negro). <a href="/files/ftp_upload/57876/57876fig3large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>

<table><tbody><tr><td>huevos de O. ribifloris sensu lato (s.l.)</td><td></td><td></td><td>Kaysville, Davis County, Utah, USA</td></tr><tr><td>Cañas Osmia</td><td>Nativebees.com</td><td>NA</td><td>Cañas recién tapadas</td></tr><tr><td>Set de disección</td><td>VWR</td><td>89259-964</td><td>Esterilizar antes de usar</td></tr><tr><td>Alicates de punta larga</td><td>Husky</td><td>1006</td><td></td></tr><tr><td>6 placas de cultivo de pocillos</td><td>VWR</td><td>10062-892</td><td>Sellado estéril</td></tr><tr><td>Placas de cultivo de 48 pocillos</td><td>VWR</td><td>10062-898 Placas de</td> Petri <td>selladas estériles</td></tr><tr><td></td><td>VWR</td><td>25373100</td> Botes de pesaje cuadrados <td>sellados estériles</td></tr><tr><td></td><td>VWR</td><td>10770-448</td><td></td></tr><tr><td>Cepillo de pelo de camello</td><td>Bioquip</td><td>1153A</td> Cápsulas de hojalata <td></td></tr><tr><td></td><td>EA Consumibles</td><td>D1021</td><td>Esterilizar antes de usar</td></tr><tr><td>sacarosa</td><td>VWR</td><td>470302-808</td><td></td></tr><tr><td>Propiconazol 14.3</td><td>Quali-Ppro</td><td>60207-90-1</td><td>Propiconazol 14.3%</td></tr><tr><td>Polen de abeja melífera</td><td>897098001244 Abeja energizada</td><td></td><td>Polen crudo, natural y sin tratar</td></tr><tr><td>Microbalance</td><td>VWR</td><td>10204-990</td><td></td></tr><tr><td>Pulverisette</td><td>LAB SYNERGY INC.</td><td></td><td></td>30334913</tr><tr><td>Palos de madera</td><td>VWR</td><td>470146908</td><td>Esterilizar antes de usar</td></tr><tr><td>Cinta de sellado</td><td>VWR</td><td>89097-912</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio</td><td>VWR</td><td>89403-384</td><td></td></tr><tr><td>Bandeja de plantación</td><td>VWR</td><td>470150-632</td><td></td></tr><tr><td>Etanol</td><td>VWR</td><td>BDH1158-4LP</td><td></td></tr><tr><td>Tubo de centrífuga</td><td>VWR 21008936</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microjeringa</td><td>Cole-Palmer</td><td>UX-07940-07</td><td></td></tr><tr><td>Pinza de goma</td><td>Amazon</td><td>B0135HWPN4</td><td></td></tr><tr><td>Agujas de jeringa</td><td>VWR</td><td>89219-334</td><td></td></tr><tr><td>Liofilizador</td><td>Labcono</td><td>LFZ-1L</td><td></td></tr><tr><td>Software estadístico</td><td>SPSS</td><td>Versión 21.0</td><td></td></tr></tbody></table>

in vitro cría de las abejas solitarias: una herramienta para evaluar factores de riesgo larvas

In Vitro Rearing of Solitary Bees: A Tool for Assessing Larval Risk Factors

Aunque las abejas solitarias servicios de polinización crucial para cultivos silvestres y manejados, este grupo de especies ha sido en gran parte pasado por alto en estudios de reglamentación de pesticidas. El riesgo de exposición a los residuos del fungicida es probable que sea especialmente alto si el aerosol se produce en o cerca de plantas huésped mientras que las abejas recolectan polen para sus nidos. Para especies de nomada que consumen polen de un selecto grupo de plantas (oligolecty), la incapacidad de utilizar el polen de plantas no hospederas puede aumentar su factor de riesgo para toxicidad relacionada con el fungicida. Este manuscrito describe protocolos utilizados para criar con éxito a oligolectic mason abejas, Osmia ribifloris sensu lato, de huevo a la etapa prepupal en placas de la célula bajo condiciones estandarizadas de laboratorio. El en vitro-abejas criadas se utilizan posteriormente para investigar los efectos de la exposición y polen fuente de fungicida en fitness de la abeja. Basado en un diseño factorial 2 × 2 totalmente cruzado, el experimento examina los efectos principales e interactivos de fungicida exposición y polen fuente en larvas fitness, cuantificado por biomasa prepupal, el tiempo de desarrollo larval y la supervivencia. Una gran ventaja de esta técnica es que en vitro-criadas abejas reduce la variabilidad natural de fondo y permite la manipulación simultánea de varios parámetros experimentales. El protocolo descrito presenta una herramienta versátil para las hipótesis de prueba que implica el conjunto de factores que afectan la salud de las abejas. Para que esfuerzos de conservación para cumplir con éxito significativo, duradero, tales ideas sobre la compleja interacción de factores fisiológicos y ambientales abeja disminución de conducción será crítica.

Fitness larval se cuantificó usando tres tiempo de desarrollo (i) larvas de métricas (ii) prepupal biomasa y supervivencia (iii) por ciento. Se llevó a cabo un ANOVA de dos vías con exposición de fungicida (dos niveles: ningún fungicida, fungicida) y fuente de polen (dos niveles: Host polen, polen no-host) como variables independientes y tiempo de desarrollo larval como variable dependiente. El principal efecto para la exposición de fungicida (F1,28 = 1,24, P ...

Pulverizaciones de fungicidas en plantas con flores pueden exponer a las abejas solitarias a altas concentraciones de residuos de fungicida transmitidas por el polen. Mediante experimentos en laboratorio en vitro-larvas de abeja criados, este estudio investiga los efectos interactivos de consumir polen tratados con fungicida derivado de plantas huésped y anfitrión no.

In Vitro Cría de las abejas solitarias: una herramienta para evaluar factores de riesgo larvas

Although solitary bees provide crucial pollination services for wild and managed crops, this species-rich group has been largely overlooked in pesticide ...

Las especies de abejas solitarias representan el grupo más diverso de abejas en el planeta, pero puede ser bastante difícil criar con éxito las larvas en condiciones altamente controladas. Hemos creado un método para el cultivo in vitro de especies de abejas solitarias, que nos permite aislar y medir los factores de riesgo asociados a sus simbiontes microbianos. Entre ciertas especies de abejas solitarias que anidan en el tallo, es fundamental que las técnicas de cultivo se adapten a las larvas jóvenes, así como a sus simbiontes microbianos nacidos en el polen.Aquí hemos iluminado los efectos principales e interactivos de múltiples factores estresantes, lo que nos permite discernir si los factores estresantes actúan en gran medida solos o en conjunto. Molly Bidwell y Prarthana Dharampal, ambas de mi laboratorio, harán la demostración del procedimiento. Con un bisturí esterilizado, diseccione las cañas de anidación de Osmia recién tapadas.Divida las cañas en dos partes a lo largo para exponer las cámaras individuales. Los nidos suelen contener de ocho a 14 cámaras con un huevo por cámara. Identifique los huevos machos utilizando el método estándar.En este experimento solo se utilizan huevos machos debido al sesgo sexual en el tamaño de la provisión de polen. Las provisiones masculinas suelen ser más pequeñas que las femeninas. Luego, con un instrumento esterilizado, retire cada provisión de polen junto con el huevo asociado y colóquelos en un bote de pesaje limpio.En el bote de pesaje, separe suavemente el huevo de la provisión. A continuación, pesa el suministro de polen y el huevo por separado. Trabaja rápidamente con los huevos de Osmia para minimizar su tiempo fuera del polen.Para las preparaciones de provisión de polen del huésped, primero inspeccione visualmente el polen de la planta huésped recolectado por la madre y excavado de las cámaras de anidación en busca de parásitos. Luego, para reducir cualquier posible sesgo materno, combine las provisiones de polen en una sola masa y mézclelas con una aguja esterilizada. A continuación, divida el polen del huésped en nuevas provisiones de masa estándar.Para preparar provisiones de polen de plantas no hospederas, pulverize el polen recolectado por abejas melíferas comprado comercialmente hasta convertirlo en un polvo fino utilizando un molino de huesos de laboratorio estándar. Luego, en función del contenido de humedad de las provisiones de polen del huésped, hidrate el polvo de polen con una solución de azúcar esterilizada al 40%. Mezcle esto hasta obtener una consistencia similar a una masa.A continuación, haga provisiones de polen no huésped que tengan el mismo peso que las provisiones recolectadas por la madre. Para la placa de tratamiento, cubra los pocillos individuales de una placa de cultivo de 48 pocillos con tazas de estaño esterilizadas en autoclave. Prepare placas separadas para los grupos de tratamiento y control.Luego, con pinzas estériles, ensanchar suavemente el borde superior de las copas para que puedan acomodar la provisión de polen. A continuación, cargue provisiones individuales de polen en las tazas de hojalata. Ahora, dentro de cada masa de polen, haga una depresión colocada en el centro con un palo de madera estéril.Use un palo nuevo para cada suministro de polen. En la depresión, agregue los volúmenes apropiados de solución de tratamiento, como fungicida y agua estéril para los controles. Después de cada adición, apriete la depresión para cerrarla con pinzas estériles limpias.Para comenzar, cargue bien cada placa de tratamiento con un óvulo macho seleccionado al azar. Colóquelo encima de la provisión de polen con un pincel fino y limpio. Una vez que se hayan colocado los huevos, asegure la tapa en el plato con cinta adhesiva en las esquinas.Luego, coloque cada plato preparado en una incubadora que se mantenga a temperatura ambiente. Incluya una placa de seis pocillos cargada con agua estéril para evitar la desecación. Deje las placas intactas dentro de la incubadora.Revise la placa diariamente bajo un microscopio de disección sin quitar la tapa. Si las larvas están vivas, se moverán. Si no se detecta ningún movimiento, deseche la taza de hojalata que contiene las larvas muertas y el resto de la provisión de polen.Cuando una larva alcance la etapa de prepupa, retírela de la taza de hojalata y use un cepillo para limpiar los excrementos del capullo de seda. Luego, usando un microscopio de disección, corte cuidadosamente a través del capullo de seda y extraiga la prepupa con pinzas de peso pluma. Manipula la prepupa con cuidado para evitar cualquier daño a su cuerpo.Ahora registre la masa de la prepupa y el tiempo de desarrollo desde el huevo hasta la etapa de prepupa. La aptitud larvaria se cuantificó utilizando el tiempo de desarrollo larvario y la biomasa prepupal. Hubo una correlación negativa significativa entre el tiempo de desarrollo larvario y la biomasa prepupal entre los grupos tratados con fungicidas y no tratados.Aunque hubo una correlación negativa significativa para las larvas criadas con polen de no hospedador, no se observó tal relación para las larvas criadas con polen de hospedador. La fuente de polen tuvo un efecto principal significativo en la aptitud de las abejas. Cuando se criaron en polen no huésped, el tiempo de desarrollo de las larvas aumentó significativamente, mientras que la biomasa de prepupa disminuyó significativamente entre los grupos tratados con fungicidas y no tratados en comparación con las larvas criadas con polen huésped.La exposición a fungicidas no tuvo un efecto principal significativo sobre la aptitud física. No hubo diferencias estadísticamente significativas en el tiempo de desarrollo y la biomasa de prepupa para los tratamientos criados en polen del huésped y del no huésped en los grupos tratados con fungicidas y no tratados. No hubo un efecto interactivo significativo de la exposición a fungicidas y la fuente de polen sobre el tiempo de desarrollo de las larvas y la biomasa de prepupa.Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo criar con éxito larvas de abejas solitarias en condiciones in vitro. Una vez dominada, esta técnica se puede utilizar para criar abejas en condiciones in vitro desde el huevo hasta la etapa de pupa, al tiempo que causa una mortalidad mínima por estrés de manipulación. Al usar este procedimiento, es importante recordar usar huevos o larvas muy jóvenes.Esto asegura que las larvas se críen casi en su totalidad con la manipulación prevista de los tratamientos dietéticos. Este protocolo puede extenderse a varias otras especies de abejas y avispas solitarias y puede modificarse fácilmente para probar los efectos principales e interactivos de múltiples factores de riesgo que afectan la salud de los polinizadores. Al proporcionar un medio para el cultivo in vitro de larvas de abejas solitarias, esta técnica puede ayudar a identificar factores de riesgo previamente desconocidos entre las poblaciones de abejas vulnerables.Por ejemplo, algunos de sus experimentos basados en este protocolo pueden ayudar a determinar el papel del microbioma del polen en la conferir diversos grados de resistencia a los factores estresantes de los xenobióticos. Como técnica accesible y económica, este protocolo representa una herramienta versátil para la prueba de hipótesis que puede ser fácilmente modificada por los investigadores para abordar sus propios objetivos de investigación.

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Evaluar el efecto de sustancias químicas ambientales en la miel de abeja Desarrollo de la colonia individual a nivel

En este protocolo, se describen métodos para la realización de cruzamientos de consanguinidad y para evaluar el éxito de esas cruces, de la hormiga Vollenhovia emeryi. Estos protocolos son importantes para experimentos para entender la base genética de los sistemas de determinación de sexo en himenópteros.

Inducción y evaluación de cruces de consanguinidad con la hormiga, Vollenhovia Emeryi

Aquí, presentamos protocolos para 1) la propagación cautiva de laboratorio de la mariposa azul de Miami en peligro federal (Cyclargus thomasi bethunebakeri), y 2) la evaluación de la información básica de la historia de la vida, como el tiempo de desarrollo inmaduro y el número de estadios larvales. Ambos métodos se pueden adaptar para su uso con otros programas de conservación ex situ.

Programas de propagación cautiva de mariposas en riesgo para mejorar el conocimiento de la historia de la vida y técnicas eficaces de conservación ex situ

Aquí describimos dos protocolos: primero para propagar, extraer, purificar y cuantificar grandes cantidades de partículas de virus no envueltas de abejas melíferas, incluido un método para eliminar las pupas de abejas melíferas y segundo para probar los efectos de la infección viral utilizando un bioensayo de jaula altamente repetible y de alto rendimiento.

Preparación de inóculo enriquecido con virus para la infección oral de abejas melíferas (Apis mellifera)

Este protocolo fue desarrollado para mejorar la comprensión de cómo los agroquímicos afectan la reproducción de lasabejas melíferas (Apis mellifera)mediante el establecimiento de métodos para exponer a las reinas de las abejas melíferas y sus cuidadores trabajadores a los agroquímicos en un entorno controlado y de laboratorio y monitoreando cuidadosamente sus respuestas relevantes.

Evaluación del riesgo agroquímico para las reinas de abejas melíferas apareadas

El presente protocolo explica un método para alimentar con provisiones contaminadas con pesticidas a las larvas de las abejas solitarias, Osmia excavata. El procedimiento examina la ecotoxicidad del pesticida para las larvas de las abejas solitarias.

Evaluación del efecto de los pesticidas en las larvas de las abejas solitarias

En este trabajo se detallan dos protocolos para evaluar la fuente de alimento y las preferencias de oviposición en larvas y hembras de moscardones. Estos comprenden cuatro opciones con dos factores que interactúan: el tipo de sustrato y la temperatura. Los ensayos permiten determinar la preferencia por la fuente de alimento de las larvas y la preferencia por el sitio de oviposición de las hembras.

Explorando las opciones de la historia de vida: Uso de la temperatura y el tipo de sustrato como factores que interactúan para las preferencias de las larvas y las hembras de moscardón

Demostramos un método probado para el manejo seguro de abejas recolectadas en el campo. Este método permite una rápida manipulación, identificación, muestreo genético y confirmación de las interacciones planta-insecto a través del polen recolectado durante el muestreo. Fácilmente adaptable, este enfoque ofrece un medio rentable y no letal para estudiar grupos de insectos raros.

Un método rápido para confinar y manipular de forma segura a las abejas en el campo

Aprende a criar larvas de abejas solitarias in vitro para evaluar el impacto de fungicidas y sus interacciones con simbiontes microbianos. Este método permite estudiar factores de riesgo en polinizadores.

In Vitro Cría de las abejas solitarias: una herramienta para evaluar factores de riesgo larvas

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