Name: Inducción quirúrgica simple de pérdida auditiva conductiva con verificación mediante la visualización del otoscopio y la respuesta de golpe de golpe conductual en Rata (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-10-26T12:30:00.000+00:00
Duration: 6 s
Description: Aprenda a inducir pérdida auditiva conductiva en ratas mediante punción quirúrgica de la membrana timpánica. Este método verifica el daño mediante otoscopio y respuesta de sobresalto al aplauso, proporcionando un modelo fiable para estudiar trastornos auditivos humanos.

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Este trabajo fue apoyado en parte por el Consejo de Becas de Investigación de Hong Kong, Early Career Scheme, Project #21201217 a C. L., para el proyecto Brain mapping guided electrophysiology with applications in hearing and noise pollution research. Agradecemos a Posgrado en Ciencias Biomédicas, el Instituto de Neurobiología de la Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM), el Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACyT) México por la Beca de Posgrado 578458 a FAM Manno.

El presente estudio y procedimientos fueron aprobados por los comités de ética de investigación animal de la Universidad de la Ciudad de Hong Kong, la Universidad de Hong Kong y el Departamento de Salud de la Región Administrativa Especial de Hong Kong.
1. Animales
<ol><li>Utilice ratas Sprague-Dawley (SD) de dos meses (N .90, 200-250 g). NOTA: Los roedores fueron proporcionados por la Unidad de Animales de Laboratorio acreditada de la Universidad de Hong Kong.</li>
	<li>Mantener las ratas bajo una temperatura constante de 25oC y 60-70% de humedad en la Unidad de Investigación Animal de Laboratorio.</li>
	<li>Casa de roedores en ciclos de luz/oscuridad de 12/12 h con acceso a alimentos y agua potable, ad libitum.</li>
	<li>Aclimatar a los roedores al entorno de la vivienda durante al menos un día antes de la cirugía de CHL.</li>
	<li>Recoger el roedor por el escruff y anestesiar al roedor con un cóctel de ketamina y xilazina (80-100 mg/kg: 5-10 mg/kg, respectivamente) a través de inyección intraperitoneal (combinar 1,0 ml de ket de amina con 0,5 ml de xilazina como concentración final). NOTA: Utilice una jeringa de 1 ml con una aguja de 23-25G. Inyectar aproximadamente 0,2 ml por 100 g de peso corporal de la rata durante 30 minutos de anestesia.</li>
	<li>Realice el pellizco del dedo del dedo del dedo del dedo del rallado para verificar la sensación de dolor y para corroborar la anestesia adecuada. Una reacción al pellizco profundo del dedo del pies (por abstinencia de la extremidad posterior) indica anestesia insuficiente.</li>
</ol>2. Configuración quirúrgica
<ol><li>Esterilice todos los equipos en un esterilizador de cuentas de autoclave o vidrio caliente antes de comenzar la cirugía. Limpie el área quirúrgica con 70% de etanol.</li>
	<li>Use guantes de látex y bata de laboratorio antes de iniciar el procedimiento.</li>
	<li>Coloque una cortina quirúrgica estéril en el banco limpio(Figura 1A).</li>
	<li>Esterilizar microtijeras y un otoscopio antes de la cirugía para minimizar la infección del oído(Figura 1B).</li>
	<li>Coloque las microtijeras y el otoscopio en el área estéril.</li>
	<li>Coloque el roedor en el campo quirúrgico y alineado con el cirujano.</li>
	<li>Proceder con la inducción quirúrgica de CHL.</li>
</ol>3. Inducción quirúrgica de la hipoacusia conductiva
<ol><li>Coloque la cola y la cabeza del roedor alineados en una posición propensa, la cabeza más cercana al cirujano.</li>
	<li>Visualizar el oído izquierdo y derecho del roedor bajo el otoscopio para asegurar una membrana timpánica saludable(Figura 2a). Evalúe el oído derecho e izquierdo de cada roedor para verificar la condición saludable antes de la inducción de CHL.</li>
	<li>Agarre la hélice del oído y extienda el canal auditivo externo (es decir, canal auditivo, carnoso auditivo externo, canal auditivo aquí) para hacer que el interior se oscurezca y ennegrezca por la profundidad. Aquí, el canal auditivo se hace perpendicular a la superficie de la TM. NOTA: Asegúrese de que el cannel auditivo sea directamente paralelo ahora y que la TM forme un ángulo recto con el eje de inserción de las microtijeras. Se visualizará como un tubo negro sin luz. A veces, el canal auditivo necesita ser inclinado en un ángulo leve, aproximadamente 15o a la superficie plana del cráneo. Esto garantiza que la mano del cirujano sea perpendicular a la superficie de la TM.</li>
	<li>Introducir las microtijeras en el centro del canal auditivo prestando atención a no desnatar o rasgar el tejido del canal auditivo y proceder ligeramente, aproximadamente a 5 mm del centro de la oscuridad, empujando hacia adelante suavemente a través del centro de la TM. NOTA: La punción TM puede ser confirmada por un sonido pop cuando las puntas de la micro-tijera perforan la TM. El sonido de estallido se puede escuchar a aproximadamente 2 min 52 s en el video. Esto no es un sonido de tijera; este es un sonido de punción TM. Como se mide el post-análisis, el "pop" es aproximadamente 20 dB SPL mayor que el sonido de fondo grabado por un micrófono de alta frecuencia. No hay necesidad de verificar el sonido "pop" en esta medida, la visualización del otoscopio es suficiente. Es posible que el investigador tenga que practicar para asegurarse de que se escucha un "pop" durante cada procedimiento de CHL.</li>
	<li>Abra inmediatamente las microtijeras de resorte y gire tres veces después de puntuar la TM para asegurar el desplazamiento de la cabeza del malleus lejos de la TM (sólo si se desea desplazamiento de malleus).</li>
	<li>Retire las microtijeras y coloque el roedor debajo del otoscopio para su visualización. NOTA: Es importante tener en cuenta que no debe producirse ningún sangrado significativo después del procedimiento quirúrgico. Eutanasia al roedor y no proceda a la evaluación del comportamiento si se produce sangrado.</li>
	<li>Inducir chL bilateral procediendo como arriba en el oído opuesto.</li>
</ol>4. Visualización del otoscopio
<ol><li>Confirme una cirugía exitosa de CHL con un otoscopio utilizando un espéculo de diámetro pequeño para visualizar el oído medio del roedor.</li>
	<li>Evalúe cada roedor antes y después del procedimiento quirúrgico de CHL debajo del otoscopio. Asegurar la confirmación de TM normal(Figura 2a)y TM dañada después de la inducción de CHL(Figura 2b).</li>
	<li>
Cuidado postoperatorio para el roedor
	<ol>
<li>Coloque el roedor en la jaula de casa bajo una lámpara caliente.</li>
		<li>Observe la inducción posterior a CHL del roedor hasta que el roedor se eniture.</li>
		<li>Inyectar el roedor con suero de glucosa (dextrosa/salina) para recuperar la conciencia y colocar el roedor en la jaula natal para su recuperación. NOTA: Utilice una aguja de 23G con una jeringa de 10 ml para inyectar 5 ml de salina después de la cirugía de CHL.</li>
		<li>Inyectar el roedor a través de intramuscular con Enrofloxacino antibacteriano 0,05 mg/kg dos veces durante el período de recuperación de 24 horas.</li>
		<li>Observe al roedor regularmente para ver si el comportamiento o los síntomas del dolor después de la cirugía.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. Evaluación del comportamiento (validación de la inducción de CHL) - respuesta de sobresmáxima de aplausos
<ol><li>Corroborar CHL (después de la confirmación del otoscopio) 24 h después de la cirugía con la evaluación conductual que consiste en la prueba de aplauso-arranque.</li>
	<li>Coloque la rata inducida por CHL junto a una rata normal en dos jaulas adyacentes separadas.</li>
	<li>Coloque a los roedores en una habitación silenciosa.</li>
	<li>Permanecer de pie aproximadamente a 0,5 m de distancia de los roedores y proceder a aplaudir en duraciones igualmente espaciadas un número de veces (5 aplausos fueron elegidos y espaciados más de 1 segundo). NOTA: El sobresalto de aplausos producido por el aplauso de mano medido a 40 dB SPL mayor que el sonido de fondo grabado por un micrófono de alta frecuencia.</li>
</ol>

<ol><li>Shargorodsky, J., Curhan, S. G., Curhan, G. C., Eavey, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Change+in+prevalence+of+hearing+loss+in+US+adolescents%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+the+American+Medical+Association%22%5BJournal%5D)">Change in prevalence of hearing loss in US adolescents.</a> The Journal of the American Medical Association. 304 (7), 772-778 (2010).</li>
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<li>Finck, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Auditory+sensitivity+of+the+Mongolian+Gerbil+%28Merionesunguiculatus%29%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+the+Acoustical+Society+of+America%22%5BJournal%5D)">Auditory sensitivity of the Mongolian Gerbil (Merionesunguiculatus).</a> The Journal of the Acoustical Society of America. 41 (60), 1579(1967).</li>
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</ol>

Los autores no declaran conflictos de intereses financieros o no financieros.

Describimos una simple inducción quirúrgica de CHL con verificación utilizando la visualización del otoscopio y la respuesta de sobregolpe de aplausos conductuales en rata. Aquí demostramos el método en rata y anteriormente este método se ha aplicado a jerbos y ratones. El método se puede adoptar fácilmente a otros roedores. La inducción de CHL permite el estudio de una forma sutil de pérdida auditiva que se manifiesta en alteraciones corticales auditivas y hallazgos psicofísicos del comportamiento4</su...

La prevalencia de la pérdida auditiva en niños y adultos es de aproximadamente 19,5%1 y 15,2%2 respectivamente. Sin embargo, aproximadamente el 39,3% de todos los recién nacidos con un examen auditivo anormal no reciben tratamiento corrector según lo informado por los Centros para el Control de Enfermedades3. La pérdida auditiva es una condición ampliamente estudiada, y el roedor es un modelo robusto para estudiar trastornos normales relacionados con la audición y la audición4,5,6,7,8,9 ,10,11,12,13,14,15. Los trastornos auditivos como la hipoacusia conductiva (CHL) conducen a un aumento de la depresión sináptica a corto plazo en la corteza auditiva4,lo que da lugar a pendientes psicométricas más superficiales asociadas con umbrales de detección de modulación de frecuencia 5. Los modelos de pérdida auditiva conductiva por extracción quirúrgica/desplazamiento del malleus, la punción de la membrana timpánica (TM) o el tapón para los oídos se emplean fácilmente y permiten la inducción rápida del modelo de pérdida auditiva5,14 ,15,16,17,18. El objetivo del protocolo y método actual es demostrar un modelo CHL simple y reproducible en roedores.
El protocolo actual es barato (USD$300 con todas las herramientas), y fácilmente modificable para diferentes actividades de investigación. La rata ha tenido evaluaciones detalladas de la anatomía del oído medio19,20,21,22,23, enfoques quirúrgicos24, modelos en otitis media25, 26,27 y TM regeneración de pinchazos16,17,18,28,29,30, por lo que es un modelo ideal para estudiar pérdida auditiva. Aquí, un procedimiento de inducción de CHL simple se describe con la verificación por otoscopio y evaluación del comportamiento con respuesta de sobregolpe de aplausos en rata, que luego se puede utilizar para explorar secuencias adicionales de pérdida auditiva. El procedimiento de CHL es inducido por punción quirúrgica de la TM. La verificación del procedimiento CHL se realiza mediante visualización de otoscopio para determinar la ausencia de la TM. La evaluación del comportamiento se realiza mediante un aplauso manual de alto nivel de presión sonora (SPL) de decibelios (dB). Este método se ha aplicado previamente en una variedad de roedores. Es fácil de replicar, produce fuertes diferencias psicométricas y cambios en las respuestas fisiológicas neuronales4,5,16,17,18.

<table><tbody><tr><td>Guantes de látex, polivinilo o nitrilo</td><td>AMMEX</td><td></td><td>Utilice guantes sin polvo Tijeras Micro Spring de 8 milésimas de pulgada</td></tr><tr><td>(ver Fig. 1b)</td><td>RWD Life Science</td><td>S11035-08</td><td>8.0 cm de longitud total, con filo de corte de 3.5 mm, o micro pinzas similares. Las pinzas estándar con acción de resorte serán suficientes</td></tr><tr><td>Otoscopio mini 3000</td><td>HEINE &nbsp;</td><td>D-008.70.120M El</td><td>otoscopio LED estándar será suficiente</td></tr><tr><td>Rata o ratón</td><td>JAX labs</td><td></td><td>Cualquier roedor pequeño&nbsp;</td></tr><tr><td>Jaula para roedores pequeña</td><td>Tecniplast</td><td>1284L</td><td>Necesita dos jaulas para separar el roedor CHL del roedor oyente. Si los roedores están en contacto directo entre sí, se asustarán entre sí. Dimensiones de la jaula 365 x 207 x 140 mm, superficie del suelo: 530 cm2/82,15 in2</td></tr></tbody></table>

inducción quirúrgica simple de pérdida auditiva conductiva con verificación mediante la visualización del otoscopio y la respuesta de golpe de golpe conductual en rata

Simple Surgical Induction of Conductive Hearing Loss with Verification Using Otoscope Visualization and Behavioral Clap Startle Response in Rat

La hipoacusia conductiva (CHL) es una deficiencia auditiva prevalente en los seres humanos. El objetivo del protocolo es describir un procedimiento quirúrgico simple para inducir CHL en roedores. El protocolo demuestra CHL por punción de membrana timpánica. La verificación de la cirugía de CHL fue por examen de otoscopio y evaluación del comportamiento por respuesta de sobrescopio de aplausos, replicable y confiable, y son métodos simples para demostrar que se ha producido pérdida auditiva. El sencillo procedimiento de CHL es ventajoso debido a su reproducibilidad y flexibilidad para diferentes actividades en la investigación de pérdida auditiva. Las limitaciones de inducir CHL por un enfoque quirúrgico se asocian con la curva de aprendizaje para realizar el procedimiento quirúrgico y la confianza en el examen audiológico. Inducir una discapacidad auditiva por CHL permite estudiar fácilmente las manifestaciones neuronales y los resultados conductuales de la pérdida auditiva.

El sencillo procedimiento de CHL se realizó en 90 ratas y de este grupo 2 tuvo sangrado significativo y 2 no tuvieron pérdida de audición al día siguiente, según lo evaluado por el contragolpe de aplausos conductuales. Estas cuatro ratas fueron descartadas. Las ratas deben descartarse como se describe por las razones en la discusión debido a complicaciones. Inducir la punción y/o el desplazamiento/eliminación de la TM (Figura 2B) provoca CHL, lo que resulta e...

Aquí, presentamos un protocolo para establecer una inducción de pérdida auditiva conductiva replicable a través de la punción quirúrgica de la membrana timpánica y la verificación por visualización del otoscopio y evaluación del comportamiento por golpe de aplauso.

Inducción quirúrgica simple de pérdida auditiva conductiva con verificación mediante la visualización del otoscopio y la respuesta de golpe de golpe conductual en Rata

Conductive hearing loss (CHL) is a prevalent hearing impairment in humans. The goal of the protocol is to describe a simple surgical procedure for ...

El objetivo general de este estudio es establecer una inducción fiable de la pérdida auditiva a través de la punción quirúrgica de la membrana timpánica y la verificación por visualización del otoscopio y evaluación del comportamiento por el sobresalto del clap. El propósito de nuestra práctica es desarrollar un modelo para los trastornos conductores auditivos humanos. Demostramos en el procedimiento quirúrgico práctico de pérdida auditiva conductiva, que es una simplificación en la eliminación del malleus, el método para verificar la pérdida auditiva conductiva por visualización del otoscopio, y un simple sobreso de aplausos conductuales, que validan que se ha producido una pérdida auditiva conductiva.La principal ventaja del procedimiento que describimos son los procedimientos no invasivos, la verificación de la pérdida auditiva conductiva por otoscopio y la validación por inicio de aplausos. El presente estudio y los procedimientos fueron aprobados por el comité de ética de la investigación animal y la Universidad de la Ciudad de Hong Kong, la Universidad de Hong Kong y el Departamento de Salud de la Región Administrativa Especial de Hong Kong. Para el presente protocolo, elegim

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Research

Investigación

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociencia

La aplicación de un paradigma temor condicionamiento clásico de comportamiento para auditivo protésico investigación en ratas se ha descrito. Este paradigma proporciona un mecanismo para identificar tanto la detección de, y la discriminación entre, acústica diferente y los estímulos eléctricos utilizando la frecuencia cardíaca como medida de resultado.

Determinación del comportamiento de discriminación de estímulos acústicos par de estímulos auditivos y de corriente mediante el condicionamiento clásico y el enfoque del ritmo cardíaco

Un método rápido y de bajo costo para la determinación del comportamiento de la audiencia parámetros como los umbrales de audición, discapacidad auditiva o percepciones fantasmas (tinnitus subjetivo) se describe. Utiliza pre-pulso de inhibición de la respuesta de sobresalto acústico y se puede implementar fácilmente en un ordenador personal mediante un AD programable / DA convertidor y un sensor piezoeléctrico.

Una instalación de Bajo Costo para audiometría conductual en roedores

Este video muestra un método para registrar las respuestas auditivas del tronco encefálico (ABRs) de las crías de rata. Describe los pasos para la colocación de electrodos, la aplicación de estímulos sonoros y el análisis de procesamiento de señales en el tronco encefálico para evaluar las respuestas neuronales.

Registro de las respuestas auditivas del tronco encefálico en un cachorro de rata

Este video muestra el procedimiento para implantar un dispositivo coclear en un ratón sordo y aplicar estímulos eléctricos para registrar las respuestas auditivas del tronco encefálico. Este procedimiento permite comprender los mecanismos básicos de la audición eléctrica y puede contribuir a los avances en la tecnología de implantes cocleares y la neurociencia auditiva.

Registro de las respuestas auditivas del tronco encefálico evocadas eléctricamente en un ratón sordo

Diferentes recubrimientos de electrodos afectan al rendimiento de grabación neural a través de cambios en las propiedades electroquímicas, químicas y mecánicas. Comparación de los electrodos in vitro es relativamente simple, sin embargo la comparación de la respuesta in vivo típicamente se complica por las variaciones en la distancia de los electrodos / neurona y entre animales. Este artículo proporciona un método robusto para comparar electrodos de grabación neural.

Un método para Sistemática Electroquímica y electrofisiológico Evaluación de Neuronales Grabación Electrodos

Los implantes cocleares (IC) permitir la audición por la estimulación eléctrica directa del nervio auditivo. Sin embargo, la mala frecuencia y la intensidad de la resolución limita la calidad de la audición con entidades de crédito. Aquí se describe la estimulación optogenética del nervio auditivo en ratones como estrategia alternativa para la investigación auditiva y el desarrollo de las futuras entidades de crédito.

Estimulación Optogenética del nervio auditivo

Presentamos una técnica de administración localizada de fármacos a través de la ruta trans-timpánica en la cóclea. Administración de fármacos por esta vía no interferiría con la eficacia de la lucha contra el cáncer de los medicamentos quimioterapéuticos como el cisplatino.

Trans-timpánica fármaco para el tratamiento de la ototoxicidad

Este protocolo describe métodos para registrar la respuesta auditiva del médula oblonga de crías de rata postnatal. Para examinar el desarrollo funcional de las células de pelo externas, el procedimiento experimental de la abrazadera del remiendo de célula entera en aisladas células de pelo externas se describe paso a paso.

Respuesta auditiva del médula oblonga y la célula de pelo externa celulares parche abrazadera grabación en ratas postnatales

Este protocolo describe el labyrinthectomy quirúrgica de una rata, que es un método útil para el estudio del sistema vestibular.

Labyrinthectomy quirúrgica de la rata para el estudio del sistema Vestibular

Modelos animales de implantes cocleares pueden avanzar el conocimiento de los fundamentos tecnológicos de tratamiento de la pérdida permanente de audición neurosensorial con estimulación eléctrica. Este estudio presenta un protocolo quirúrgico de implantación coclear de una matriz de electrodos en ratones, así como la evaluación funcional con respuesta auditiva del médula oblonga y agudo ensordecedor.

Cirugía de implante coclear y eléctricamente evocada médula oblonga auditivo respuesta grabaciones en ratones C57BL/6

Aquí, presentamos un protocolo para un modelo de ratón de pérdida auditiva inducida por ruido (NIHL). Para inducir el NIHL, desarrollamos un dispositivo nuevo y sencillo que utiliza plástico corrugado, una jaula trampa para ratas y un altavoz. Se emplearon imágenes de inmunofluorescencia y respuesta auditiva del tronco encefálico para evaluar la función auditiva y el daño de las células ciliadas externas, respectivamente.

Condiciones experimentales modificadas para la pérdida de audición inducida por ruido en ratones y evaluación de la función auditiva y el daño de las células ciliadas externas

Aprenda a inducir pérdida auditiva conductiva en ratas mediante punción quirúrgica de la membrana timpánica. Este método verifica el daño mediante otoscopio y respuesta de sobresalto al aplauso, proporcionando un modelo fiable para estudiar trastornos auditivos humanos.

Inducción quirúrgica simple de pérdida auditiva conductiva con verificación mediante la visualización del otoscopio y la respuesta de golpe de golpe conductual en Rata (Video) | JoVE Journal

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