Name: Captura e identificación de proteínas de unión a RNA usando Click química asistida por ARN-interactoma capturan (CARIC) estrategia (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-10-19T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 36 s
Description: Aprende a capturar e identificar proteínas de unión a ARN usando la estrategia CARIC con química click en células HeLa. Este método permite estudiar interacciones ARN-proteína y regulación postranscripcional.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Este trabajo es apoyado por la nacional Ciencias naturales Fundación de China becas 91753206, 21425204 y 21521003 y por la nacional clave de investigación y proyecto de desarrollo 2016YFA0501500.

<ol><li>Djebali, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Landscape+of+transcription+in+human+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Landscape of transcription in human cells.</a> Nature. 489 (7414), 101-108 (2012).</li>
<li>Gerstberger, S., Hafner, M., Tuschl, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+census+of+human+RNA-binding+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Genetics%22%5BJournal%5D)">A census of human RNA-binding proteins.</a> Nature Reviews Genetics. 15 (12), 829-845 (2014).</li>
<li>Castello, A., Fischer, B., Hentze, M. W., Preiss, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA-binding+proteins+in+Mendelian+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Genetics%22%5BJournal%5D)">RNA-binding proteins in Mendelian disease.</a> Trends in Genetics. 29 (5), 318-327 (2013).</li>
<li>Nussbacher, J. K., Batra, R., Lagier-Tourenne, C., Yeo, G. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA-binding+proteins+in+neurodegeneration%3A+Seq+and+you+shall+receive%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">RNA-binding proteins in neurodegeneration: Seq and you shall receive.</a> Trends in Neuroscience. 38 (4), 226-236 (2015).</li>
<li>Jazurek, M., Ciesiolka, A., Starega-Roslan, J., Bilinska, K., Krzyzosiak, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identifying+proteins+that+bind+to+specific+RNAs+-+focus+on+simple+repeat+expansion+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">Identifying proteins that bind to specific RNAs - focus on simple repeat expansion diseases.</a> Nucleic Acids Research. 44 (19), 9050-9070 (2016).</li>
<li>Hentze, M. W., Castello, A., Schwarzl, T., Preiss, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+brave+new+world+of+RNA-binding+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Molecular+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">A brave new world of RNA-binding proteins.</a> Nature Reviews Molecular Cell Biology. 19 (5), 327-341 (2018).</li>
<li>Castello, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insights+into+RNA+biology+from+an+atlas+of+mammalian+mRNA-binding+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Insights into RNA biology from an atlas of mammalian mRNA-binding proteins.</a> Cell. 149 (6), 1393-1406 (2012).</li>
<li>Baltz, A. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mRNA-bound+proteome+and+its+global+occupancy+profile+on+protein-coding+transcripts%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Cell%22%5BJournal%5D)">The mRNA-bound proteome and its global occupancy profile on protein-coding transcripts.</a> Molecular Cell. 46 (5), 674-690 (2012).</li>
<li>Beckmann, B. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+RNA-binding+proteomes+from+yeast+to+man+harbour+conserved+enigmRBPs%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">The RNA-binding proteomes from yeast to man harbour conserved enigmRBPs.</a> Nature Communications. 6, 10127-10135 (2015).</li>
<li>Conrad, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serial+interactome+capture+of+the+human+cell+nucleus%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Serial interactome capture of the human cell nucleus.</a> Nature Communications. 7, 11212-11222 (2016).</li>
<li>Castello, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comprehensive+identification+of+RNA-binding+domains+in+human+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Cell%22%5BJournal%5D)">Comprehensive identification of RNA-binding domains in human cells.</a> Molecular Cell. 63 (4), 696-710 (2016).</li>
<li>Kwon, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+RNA-binding+protein+repertoire+of+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Structural+%26+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">The RNA-binding protein repertoire of embryonic stem cells.</a> Nature Structural & Molecular Biology. 20 (9), 1122-1130 (2013).</li>
<li>Liepelt, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+RNA-binding+proteins+in+macrophages+by+interactome+capture%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+%26+Cellular+Proteomics%22%5BJournal%5D)">Identification of RNA-binding proteins in macrophages by interactome capture.</a> Molecular & Cellular Proteomics. 15 (8), 2699-2714 (2016).</li>
<li>Liao, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+cardiomyocyte+RNA-binding+proteome%3A+Links+to+intermediary+metabolism+and+heart+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">The cardiomyocyte RNA-binding proteome: Links to intermediary metabolism and heart disease.</a> Cell Reports. 16 (5), 1456-1469 (2016).</li>
<li>Mitchell, S. F., Jain, S., She, M. P., Parker, R. <a target="_blank" href="https://www.nature.com/nsmb/journal/v20/n1/abs/nsmb.2468.html">Global analysis of yeast mRNPs.</a> Nature Structural & Molecular Biology. 20 (1), 127-133 (2013).</li>
<li>Matia-González, A. M., Laing, E. E., Gerber, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conserved+mRNA-binding+proteomes+in+eukaryotic+organisms%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Structural+%26+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Conserved mRNA-binding proteomes in eukaryotic organisms.</a> Nature Structural & Molecular Biology. 22 (12), 1027-1033 (2015).</li>
<li>Despic, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+RNA-protein+interactions+underlie+the+zebrafish+maternal-to-zygotic+transition%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Research%22%5BJournal%5D)">Dynamic RNA-protein interactions underlie the zebrafish maternal-to-zygotic transition.</a> Genome Research. 27 (7), 1184-1194 (2017).</li>
<li>Wessels, H. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mRNA-bound+proteome+of+the+early+fly+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Research%22%5BJournal%5D)">The mRNA-bound proteome of the early fly embryo.</a> Genome Research. 26 (7), 1000-1009 (2016).</li>
<li>Sysoev, V. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+changes+of+the+RNA-bound+proteome+during+the+maternal-to-zygotic+transition+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Global changes of the RNA-bound proteome during the maternal-to-zygotic transition in Drosophila.</a> Nature Communications. 7, 12128(2016).</li>
<li>Reichel, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+planta+determination+of+the+mRNA-binding+proteome+of+Arabidopsis+etiolated+seedlings%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">In planta determination of the mRNA-binding proteome of Arabidopsis etiolated seedlings.</a> Plant Cell. 28 (10), 2435-2452 (2016).</li>
<li>Marondedze, C., Thomas, L., Serrano, N. L., Lilley, K. S., Gehring, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+RNA-binding+protein+repertoire+of+Arabidopsis+thaliana%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">The RNA-binding protein repertoire of Arabidopsis thaliana.</a> Scientific Reports. 6, 29766-29778 (2016).</li>
<li>Zhang, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((UV+crosslinked+mRNA-binding+proteins+captured+from+leaf+mesophyll+protoplasts%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Methods%22%5BJournal%5D)">UV crosslinked mRNA-binding proteins captured from leaf mesophyll protoplasts.</a> Plant Methods. 12, 42-53 (2016).</li>
<li>Bunnik, E. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mRNA-bound+proteome+of+the+human+malaria+parasite+Plasmodium+falciparum%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biology%22%5BJournal%5D)">The mRNA-bound proteome of the human malaria parasite Plasmodium falciparum.</a> Genome Biology. 17, 147-164 (2016).</li>
<li>Lueong, S., Merce, C., Fischer, B., Hoheisel, J. D., Erben, E. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+expression+regulatory+networks+in+Trypanosoma+brucei%3A+insights+into+the+role+of+the+mRNA-binding+proteome%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Gene expression regulatory networks in Trypanosoma brucei: insights into the role of the mRNA-binding proteome.</a> Molecular Microbiology. 100 (3), 457-471 (2016).</li>
<li>Nandan, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comprehensive+identification+of+mRNA-binding+proteins+of+Leishmania+donovani+by+interactome+capture%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Comprehensive identification of mRNA-binding proteins of Leishmania donovani by interactome capture.</a> PLoS ONE. 12 (1), e0170068(2017).</li>
<li>Jankowsky, E., Harris, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specificity+and+nonspecificity+in+RNA-protein+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Molecular+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Specificity and nonspecificity in RNA-protein interactions.</a> Nature Reviews Molecular Cell Biology. 16 (9), 533-544 (2015).</li>
<li>Huang, R., Han, M., Meng, L., Chen, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptome-wide+discovery+of+coding+and+noncoding+RNA-binding+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Transcriptome-wide discovery of coding and noncoding RNA-binding proteins.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (17), E3879-E3887 (2018).</li>
<li>Shevchenko, A., Tomas, H., Havlis, J., Olsen, J. V., Mann, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In-gel+digestion+for+mass+spectrometric+characterization+of+proteins+and+proteomes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">In-gel digestion for mass spectrometric characterization of proteins and proteomes.</a> Nature Protocols. 1 (6), 2856-2860 (2006).</li>
<li>Boersema, P. J., Raijmakers, R., Lemeer, S., Mohammed, S., Heck, A. J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiplex+peptide+stable+isotope+dimethyl+labeling+for+quantitative+proteomics%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Multiplex peptide stable isotope dimethyl labeling for quantitative proteomics.</a> Nature Protocols. 4 (4), 484-494 (2009).</li>
<li>Rappsilber, J., Mann, M., Ishihama, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protocol+for+micro-purification%2C+enrichment%2C+pre-fractionation+and+storage+of+peptides+for+proteomics+using+StageTips%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Protocol for micro-purification, enrichment, pre-fractionation and storage of peptides for proteomics using StageTips.</a> Nature Protocols. 2 (8), 1896-1906 (2007).</li>
<li>Cox, J., Mann, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MaxQuant+enables+high+peptide+identification+rates%2C+individualized+p.p.b.-range+mass+accuracies+and+proteome-wide+protein+quantification%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">MaxQuant enables high peptide identification rates, individualized p.p.b.-range mass accuracies and proteome-wide protein quantification.</a> Nature Biotechnology. 26 (12), 1367-1372 (2008).</li>
<li>Ritchie, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((limma+powers+differential+expression+analyses+for+RNA-sequencing+and+microarray+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">limma powers differential expression analyses for RNA-sequencing and microarray studies.</a> Nucleic Acids Research. 43 (7), e47(2015).</li>
<li>Grammel, M., Hang, H., Conrad, N. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+reporters+for+monitoring+RNA+synthesis+and+poly%28A%29+tail+dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22ChemBioChem%22%5BJournal%5D)">Chemical reporters for monitoring RNA synthesis and poly(A) tail dynamics.</a> ChemBioChem. 13 (8), 1112-1115 (2012).</li>
<li>Curanovic, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+profiling+of+stimulus-induced+polyadenylation+in+cells+using+a+poly%28A%29+trap%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Chemical+Biology%22%5BJournal%5D)">Global profiling of stimulus-induced polyadenylation in cells using a poly(A) trap.</a> Nature Chemical Biology. 9 (11), 671-673 (2013).</li>
<li>Zheng, Y. X., Beal, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+and+evaluation+of+an+alkyne-modified+ATP+analog+for+enzymatic+incorporation+into+RNA%5BTitle%5D)+AND+%22Bioorganic+%26+Medicinal+Chemistry+Letters%22%5BJournal%5D)">Synthesis and evaluation of an alkyne-modified ATP analog for enzymatic incorporation into RNA.</a> Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters. 26 (7), 1799-1802 (2016).</li>
<li>Nainar, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+incorporation+of+azide+functionality+into+cellular+RNA%5BTitle%5D)+AND+%22ChemBioChem%22%5BJournal%5D)">Metabolic incorporation of azide functionality into cellular RNA.</a> ChemBioChem. 17 (22), 2149-2152 (2016).</li>
<li>Bao, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Capturing+the+interactome+of+newly+transcribed+RNA%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Capturing the interactome of newly transcribed RNA.</a> Nature Methods. 15 (3), 213-220 (2018).</li>
<li>Holmqvist, E., Vogel, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA-binding+proteins+in+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Microbiology%22%5BJournal%5D)">RNA-binding proteins in bacteria.</a> Nature Reviews Microbiology. , Published online (2018).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

El mantenimiento de la integridad de RNA Feria es una de las claves del éxito experimentos CARIC. Con ligandos apropiados de Cu(I) y cuidado, degradación de RNA puede reducirse significativamente, aunque se observó degradación parcial. La sustitución de la UE y 4SU en muestras experimentales son 1.18% y 0,46%, respectivamente (datos no mostrados). Para RNAs intactos con una longitud de 2.000 nt, ~ 90% de los ARN contienen por lo menos un UE y uno 4SU. Para RNAs parcialmente degradados con una longitud de 1.000 nt, ~ 70% ...

El genoma humano se transcribe en distintos tipos de codificación y noncoding RNAs (ncRNAs), incluyendo mRNAs, rRNAs y tRNAs, ARNs nucleares pequeños (snRNAs), RNAs nucleolares pequeño (ARNnop ' s) y largo no-codificación RNAs (lncRNAs)1. La mayoría de estos RNAs posee ropa de prácticas comerciales restrictivas y funciona como ribonucleoproteína partículas (RNPs)2. Por lo tanto, una identificación integral de prácticas comerciales restrictivas es un prerrequisito para la comprensión de la red reguladora entre RNAs y prácticas comerciales restrictivas, que está implicada en varias enfermedades humanas3,4,5.
Los últimos años han sido testigos de un gran refuerzo de prácticas comerciales restrictivas en varios sistemas eucariotas2,6, incluyendo humano7,8,9,10,11, ratón12,13,14, levadura9,15,16, pez cebra17, Drosophila melanogaster18,19 , Elegans de Caenorhabditis16, thaliana de Arabidopsis20,21,22y23,de parásitos humanos24,25 . Estos avances se han facilitado por una estrategia de captura RBP desarrollada por Castello et al. 7 y Baltz et al. 8 en el 2012, que combina en vivo UV Cross-linking de RNA y sus proteínas interactuantes, captura de oligo(dT) de poly(A) RNAs y espectrometría de masas (MS)-basado en perfiles proteómicos. Sin embargo, dado el hecho de que poly(A) existe sobre todo en los mRNAs maduros, que cuenta para solamente ~ 3-5% de los eucariotas transcriptoma26, esta estrategia ampliamente utilizada no es capaz de capturar restrictivas interactuando con non-poly(A) RNAs, incluyendo la mayoría ncRNAs y pre-mRNAs.
Aquí, Divulgamos los procedimientos detallados de una estrategia desarrollada recientemente para la captura de todo el transcriptoma de prácticas comerciales restrictivas de poly(A) y non-poly(A)27. Denomina CARIC, esta estrategia combina en vivo UV Cross-linking y el etiquetado metabólico de RNAs con photoactivatable y "clickable" nucleósidos análogos (que contienen un grupo funcional de bioorthogonal que participan en la reacción de clic), 4 - thiouridine (4SU) y 5-ethynyluridine (UE). Pasos que son claves para obtener resultados ideales con la estrategia de CARIC son etiquetado metabólico eficiente UV Cross-linking y haga clic en la reacción y el mantenimiento de la integridad del RNA. Porque el Cu(I) utilizada como catalizador en la reacción de clic puede causar la fragmentación del ARN, un ligando de Cu(I) que puede reducir la fragmentación de la RNA es esencial. Describimos cómo realizar reacciones eficientes clic en lysates de la célula sin causar grave degradación de RNA.
Aunque RBP captura e identificación de las células HeLa sólo se describe en el presente Protocolo, la estrategia de CARIC puede aplicarse a varios tipos de células y posiblemente a los organismos vivos. Además captura las prácticas comerciales restrictivas, este protocolo también proporciona procedimientos paso a paso ágil para preparación de muestras de MS y proteína identificación y cuantificación, que puede ser útil para aquellos que no están familiarizados con los experimentos de la proteómica.

<table><tbody><tr><td>HeLa</td><td>ATCC</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DMEM (Dulbecco's Modified Eagle Medium)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>11995065</td><td></td></tr><tr><td>FBS (Suero fetal bovino)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>10099141</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina & Estreptomicina</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>UE (5-etiniluridina)</td><td>Wuhu Huaren Co.</td><td>CAS:69075-42-9</td><td></td></tr><tr><td>4SU (4-tiouridina)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T4509</td><td></td></tr><tr><td>10&times; PBS (solución salina tamponada con fosfato)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>AM9625</td><td></td></tr><tr><td>Reticulante UV</td><td>UVP</td><td>CL-1000</td><td>Equipado con lámpara UV de 365 nm</td></tr><tr><td>DEPC (pirocarbonato de dietilo)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D5758</td><td>Para tratar el agua. ¡Altamente tóxico!</td></tr><tr><td>Tris&middot; HCl, pH 7,5</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15567027</td><td></td></tr><tr><td>LiCl</td><td>Sigma Aldrich</td><td>62476</td><td></td></tr><tr><td>Nonidet P-40</td><td>Biodee</td><td>74385</td><td></td></tr><tr><td>Cóctel de inhibidores de proteasas sin EDTA</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>88265</td><td>Un comprimido para 50 ml de tampón de lisis.</td></tr><tr><td>LDS (Dodecil sulfato de litio)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>L9781</td><td></td></tr><tr><td>Tubo de ultrafiltración de 15 mL (corte de 10 kDa)</td><td>Millipore</td><td>UFC901024</td><td></td></tr><tr><td>tubo de ultrafiltración de 0,5 mL (corte de 10 kDa)</td><td>Millipore</td><td>UFC501096</td><td></td></tr><tr><td>Perlas magnéticas de estreptavidina</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>88816</td><td></td></tr><tr><td>DMSO (sulfóxido de dimetilo)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>41639</td><td></td></tr><tr><td>Azida-biotina</td><td>Click Chemistry Tools</td><td>AZ104</td><td></td></tr><tr><td>Sulfato de cobre (II)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C1297</td><td></td></tr><tr><td>THPTA [Tris(3-hidroxipropiltriazolilmetil)amina]</td><td>Sigma Aldrich</td><td>762342</td><td></td></tr><tr><td>Ascorbato de sodio</td><td>Sigma Aldrich</td><td>11140</td><td></td></tr><tr><td>Azide-Cy5</td><td>Click Chemistry Tools</td><td>AZ118</td><td></td></tr><tr><td>Tampón de muestra LDS (4 veces)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>NP0008</td><td></td></tr><tr><td>10% bis-Tris gel</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>NP0301BOX</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>AM9260G</td><td></td></tr><tr><td>ARNasa A</td><td>Sigma Aldrich</td><td>R6513</td><td></td></tr><tr><td>SDS (Dodecil sulfato de sodio)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15525017</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S3014</td><td></td></tr><tr><td>Brij-97 [Éter oleílico de polioxietileno (20)]</td><td>J& K</td><td>315442</td><td></td></tr><tr><td>Trietanolamina</td><td>Sigma Aldrich V900257</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Estreptavidina agarosa</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>20353</td><td></td></tr><tr><td>Urea</td><td>Sigma Aldrich</td><td>U5378</td><td></td></tr><tr><td>Sarkosyl (N-Lauroilsarcosina sal sódica)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>61743</td><td></td></tr><tr><td>Biotina</td><td>Sigma Aldrich</td><td>B4501</td><td></td></tr><tr><td>Desoxicolato de sodio</td><td>Sigma Aldrich</td><td>30970</td><td></td></tr><tr><td>MaxQuant</td><td></td><td></td><td>Versión: 1.5.5.1</td></tr></tbody></table>

captura e identificación de proteínas de unión a rna usando click química asistida por arn-interactoma capturan (caric) estrategia

Capture and Identification of RNA-binding Proteins by Using Click Chemistry-assisted RNA-interactome Capture (CARIC) Strategy

Una completa identificación de proteínas de unión a RNA (restrictivas) es clave para entender la red de regulación postranscripcional en las células. Una estrategia ampliamente utilizada para la captura RBP explota la poliadenilación [poly(A)] de RNAs de destino, que ocurre sobre todo en eukaryotic mRNAs maduros, dejando la mayoría proteínas de non-poly(A) RNAs no identificados. Aquí describimos los procedimientos detallados de un método reciente denominado haga clic en ayuda de química RNA interactoma captura (CARIC), que permite la captura de todo el transcriptoma de poly(A) y non-poly(A) restrictivas combinando el etiquetado metabólico de RNAs en vivo UV Cross-linking y etiquetado bioorthogonal.

Se presentan los resultados representativos de pasos de control de calidad. Los resultados incluyen figuras de análisis en gel fluorescencia descrito en el paso 2.3.2 (figura 1), el análisis de western blot que se describe en el paso 4.1.3 (figura 2A) y el análisis de coloración de plata que se describe en el paso 4.2.2 (figura 2B). Las medidas de control de calidad son críticas para la optimización ...

Un protocolo detallado para la aplicación de la haga clic en ayuda de química RNA interactoma estrategia de captura (CARIC) para identificar proteínas de enlace de codificación de ambas y los RNAs se presenta.

Captura e identificación de proteínas de unión a RNA usando Click química asistida por ARN-interactoma capturan (CARIC) estrategia

A comprehensive identification of RNA-binding proteins (RBPs) is key to understanding the posttranscriptional regulatory network in cells. A widely used ...

Este método, CARIC, puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la post-transcripción de la recreación genética proporcionando un censo completo de proteínas de unión al ARN. La principal ventaja de CARIC es su capacidad para capturar proteínas unidas a varios tipos de ARN como los ARN y los ARN no codificantes. Este método se puede utilizar en varios tipos y el organismo para estudiar la interacción de la proteína de ARN en el trabajo.En primer lugar, el cultivo de células de HeLa en DMEM suplementado a 37 grados Celsius en una atmósfera de cinco por ciento de CO2. Cuando las células alcanzan alrededor del 80 por ciento de confluencia, reemplace el medio de cultivo en cada plato con 15 mililitros de medio precalentado y fresco. Añadir 15 microlitros de 100 mililitros de la UE a cada plato a una concentración final de un milimolar.Para muestras experimentales y sin control UV añadir 7,5 microlitros de 100 mililitros cuatro SU a cada plato. Cubrir los platos con papel de aluminio y cultivar las células durante 16 horas utilizando las condiciones anteriores. Después de esto, añadir la mitad de la cantidad anterior de la UE y/o cuatro SU a las placas apropiadas y continuar cultivando durante otras dos horas.Para comenzar la reticulación in vivo, retire el medio de cultivo y lave cada plato tres veces con PBS usando cinco mililitros de PBS por lavado. Retire el PBS residual tanto como sea posible. Para las muestras experimentales y no cuatro de control SU, coloque los platos sobre hielo con la tapa quitada.Utilice un enlace transversal UV para irradiar las células con luz UV a 365 nanómetros y a dos jules por centímetro cuadrado. Para las muestras de control SIN UV, coloque los platos sobre hielo y protéjalos de la luz. A continuación, agregue un mililitro de tampón de prelisis a cada plato.Utilice un elevador de células de goma para raspar las células y recoger la suspensión de prelisis en un tubo de 15 mililitros. Añadir tampón de prelisis a un tubo que contenga la suspensión de dos platos ajustando el volumen total a seis mililitros. A continuación, agregue un volumen igual de búfer de lysis R.Pase el lito celular a través de una jeringa con una aguja estrecha varias veces hasta que el izado sea claro y homogéneo. Incubar el izado a cuatro grados centígrados con rotación suave durante una hora. Después de esto diluir el analia en 20 volúmenes de tampón de dilución y dividirlo en fracciones de 15 mililitros en tubos de notrafiltración de 15 mililitros, corte molecular de 10 kilodaltones.Con un rotador de cucharón oscilante, gire los tubos a 4000 veces G y cuatro grados celsius durante unos 15 minutos hasta que cada fracción se concentre en un volumen inferior a un mililitro. Añadir 14 mililitros de tampón de dilución a cada fracción de izado concentrado y repetir el proceso de concentración. A continuación, combine las fracciones y concentrelas en un volumen de seis mililitros utilizando el proceso de concentración descrito anteriormente.En primer lugar, prepare la mezcla de reacciones como se describe en el protocolo de texto. Agregue esta mezcla de reacción a los seis mililitros de licate pre-despejado y mezcle bien. Añadir 162,5 microlitros de reactivo reductor y mezclar bien.Incubar a temperatura ambiente en un agitador orbital a 800 rpm durante dos horas. Después de esto apagar la reacción añadiendo cinco mililitros EDTA e incubando en el agitador orbital a temperatura ambiente durante cinco minutos. A continuación, divida la mezcla de reacción entre dos tubos de 50 mililitros, cada uno de los que contiene cuatro volúmenes de metanol preenfriado e incubar a 30 grados centígrados negativos durante 30 minutos.Centrifugar a 4000 veces G y cuatro grados celsius durante 15 minutos. Deseche el sobrenadante y agregue entre uno y dos mililitros de metanol preenfriado al pellet. Pipet arriba y abajo para romper el pellet asegurándose de que el pellet termina completamente suspendido sin trozos visibles.Repita dos veces el proceso de centrifugación y resuspensión. Después de esto, saque cuidadosamente el metanol residual tanto como sea posible asegurándose de no molestar el pellet. Añadir 10 mililitros de tampón de reconstitución y pipetear hacia arriba y hacia abajo para disolver el pellet.Centrifugar a 4000 veces G y cuatro grados celsius durante 10 minutos. A continuación, transfiera el sobrenadante a un nuevo tubo asegurándose de recoger 20 microlitros de la muestra para el control de calidad. Transfiera la muestra limpia y reconstituida a las cuentas de agarosa de estreptavidina preparadas.Incubar a cuatro grados centígrados con rotación suave durante la noche. Gire hacia abajo las cuentas a 4000 veces G durante cinco minutos. Transfiera el sobrenadante a un nuevo tubo asegurándose de recoger 20 microlitros de la muestra para el control de calidad.Lavar las perlas con 10 mililitros de tampón de lavado A.Incubar con rotación suave a 12 rpm y a temperatura ambiente durante 10 minutos. A continuación, gire hacia abajo las cuentas a 4000 veces G durante cinco minutos. Retire el sobrenadante y repita el proceso de lavado y centrifugación una vez más.Repita este proceso de lavado para el búfer de lavado B y el búfer de lavado C como se describe en el protocolo de texto. Después de esto, lavar las cuentas con 10 mililitros de clorhidrato de Tris de 50 milimolares. Gire las cuentas hacia abajo a 4000 veces G durante cinco minutos.Retire el sobrenadante y divida las perlas uniformemente entre dos tubos de microcentrífuga 1.5. Para comenzar a eludir los RNP capturados, agregue 400 microlitros de tampón de elución de biotina preparada a 400 microlitros de cuentas lavadas y asentadas. Incubar en un agitador orbital a 1500 rpm a temperatura ambiente durante 20 minutos.Luego incubar en un agitador orbital con un bloque de calor a 1500 rpm y 65 grados Celsius durante 10 minutos. Centrifugar las perlas a 7800 veces G durante un minuto y recoger el RNP eludido. Añadir 400 microlitros de tampón de elución de biotina fresca a las cuentas.Repita el proceso de incubación y centrifugación para recoger un segundo elute y combinar los dos eluidos en un solo tubo de 15 mililitros. A continuación, añada tres volúmenes de búfer de dilución a los eluts RNP combinados para disminuir la concentración de SDS. Usando un tubo de ultrafiltración de 0,5 mililitros, concentre la muestra en aproximadamente 40 microlitros como se describe en el protocolo de texto.Añadir 0,5 microgramos por microlitros RNase A e incubar a 37 grados Centígrados durante dos horas para liberar los RBP de la RNase reticulada. Recoger dos microlitros de RBP para el control de calidad. Al optimizar los protocolos CARIC, los pasos de control de calidad son críticos.El control de calidad representativo de las muestras etiquetadas con clic se realiza mediante análisis de fluorescencia en gel. Sólo la muestra doblemente etiquetada muestra una banda de frotis fuerte en el alto peso molecular que representa la señal de RNP reticulados. La señal RNP se suprime omitiendo las cuatro SU o la UE. También puede ser abolido por la digestión con RNase A.In algunos casos se observa una banda fuerte desprestigié en la muestra de control no cuatro SU.Esta banda representa la RNase sin cruzar etiquetada que se degradará durante la inaturación por calor en la mayoría de los casos. El control de calidad de la deficiencia de la encuesta de afinidad se evalúa a través del análisis de manchas occidentales que muestra las señales de biotina en las muestras antes de la extracción y después de la extracción. Un análisis de tinción de plata de los PBP capturados revela que para las células de HeLa, la eficiencia de captura total general está entre 0.05 y 0.1 por ciento de las proteínas de entrada.Al intentar este procedimiento es importante recordar que las ARNases son sensibles a las ribonucleasas. Mantenga el entorno experimental lo más limpio posible para reducir la desgredación de RNase. Después de este procedimiento, la identificación de almake de proteínas mediante espectrometría de masas se puede preformar para revelar las proteínas que unen el hierro.Después de su desarrollo, la técnica CARIC allanará el camino para una comprensión más completa de la transcripción postal de la regulación OT en el trabajo.

capture-identification-rna-binding-proteins-using-click-chemistry

Research

Investigación

JoVE Journal

Biochemistry

Bioquímica

Transcripciones de ARN están sujetas a numerosas normas posttranscriptional que está mediada por una multitud de trans-acción ARN-proteínas de unión (prácticas comerciales restrictivas). Aquí presentamos un método generalizable para identificar con precisión y en una escala de transcriptoma en todo los sitios de unión a ARN de las prácticas comerciales restrictivas.

PAR-Clip - un método para identificar transcriptoma en todo los sitios de unión de las proteínas de unión a ARN

Este video muestra un ensayo de extracción de ARN in vitro para identificar proteínas de unión a ARN (RBP), que interactúan con las secuencias de elementos ricos en adenilato-uridilato (ARE) en el ARNm. Las RBP diana de un lisado celular se mezclan con una sonda de ARN para formar complejos de ARN-proteína. Los complejos se aíslan mediante purificación por afinidad utilizando la afinidad de la marca de destiobiotina de la sonda de ARN a una perla magnética marcada con estreptavidina.

Ensayo de arn-proteína para aislar proteínas de unión a ARN mediante extracción por afinidad

En este video, describimos la evolución sistemática de ligandos mediante el método de enriquecimiento exponencial (SELEX) para identificar secuencias específicas de unión a ARN para una proteína diana de interés. La proteína se incuba con un gran grupo de secuencias de ARN aleatorias, y las secuencias de ARN de unión a proteínas se aíslan, se amplifican por PCR y se secuencian para identificar sus sitios de unión a proteínas.

Ensayo de unión in vitro basado en SELEX para identificar interacciones ARN-proteína

Un protocolo desplegable ARN se optimiza aquí para la detección de interacciones entre proteínas de unión a ARN (prácticas comerciales restrictivas) y no codificante, así como los ARN de codificación. Un fragmento de ARN de receptor de andrógenos (AR) se utilizó como un ejemplo para demostrar cómo recuperar su RBP de lystate de adipocitos marrones primarios.

La detección de las proteínas de unión a ARN por<em&gt; In Vitro</em&gt; ARN desplegable de adipocitos Cultura

Las interacciones ARN-proteína se encuentran en el corazón de muchos procesos celulares. Aquí, describimos un método in vivo para aislar ARN específico e identificar nuevas proteínas que están asociadas con él. Esto podría arrojar nueva luz sobre cómo se regulan los ARN en la célula.

Nuevas proteínas de unión a ARN aislamiento por la Metodología RaPID

Se describe un protocolo para identificar proteínas RNA-que atan y mapa de sus regiones de unión de ARN en células vivas usando photocrosslinking mediada por la UV y espectrometría de masas.

Preparación de muestras para identificación basada en espectrometría de masa de regiones de unión de ARN

Aquí, presentamos un protocolo para enriquecer los sitios endógenos de unión al ARN o "huellas" de los complejos de ARN:proteína (RNP) de células de mamíferos. Este enfoque implica dos inmunoprecipitaciones de subunidades RNP y por lo tanto se denomina inmunoprecipitación de ARN en tándem (RIPiT).

Identificación de Huellas de ARN:Complejos proteicos a través de la inmunoprecipitación de ARN en tándem seguido de secuenciación (RIPiT-Seq)

Aquí presentamos un protocolo CLIP-seq modificado llamado FbioCLIP-seq con purificación en tándem FLAG-biotina para determinar los objetivos de ARN de proteínas de unión al ARN (RPP) en células de mamíferos.

Perfilado en todo el transcriptoma de las interacciones entre proteínas y ARN por enlace cruzado e inmunoprecipitación mediada por la purificación en tándem FLAG-Biotin

La reticulación cinética y el análisis del ADNc es un método que permite la investigación de la dinámica de las interacciones proteína-ARN en células vivas a alta resolución temporal. Aquí se describe el protocolo en detalle, incluido el crecimiento de células de levadura, la reticulación UV, la recolección, la purificación de proteínas y los pasos de preparación de la biblioteca de secuenciación de próxima generación.

Monitorización de la dinámica de interacción proteína-ARN in vivo a alta resolución temporal utilizando χCRAC

Aquí, presentamos un método in vitro optimizado para descubrir, cuantificar y validar interactores de proteínas de secuencias específicas de ARN, utilizando extracto de proteína total de células humanas, perlas de estreptavidina recubiertas con ARN biotinilado y análisis de espectrometría de masas.

Un análisis extraíble cuantitativo optimizado de proteínas de unión al ARN utilizando ARN biotinilado corto

Aprende a capturar e identificar proteínas de unión a ARN usando la estrategia CARIC con química click en células HeLa. Este método permite estudiar interacciones ARN-proteína y regulación postranscripcional.

Captura e identificación de proteínas de unión a RNA usando Click química asistida por ARN-interactoma capturan (CARIC) estrategia (Video) | JoVE Journal

Captura e identificación de proteínas de unión a RNA usando Click química asistida por ARN-interactoma capturan (CARIC) estrategia

Explorar más videos