Name: Floración forzada en mandarinos Phytotron condiciones (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-03-06T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 42 s
Description: Aprende a inducir la floración en mandarinos usando estrés hídrico, alta iluminancia y fotoperíodo controlado en un fitotrón. Este método permite obtener flores viables en cualquier época del año.

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Los autores agradecen a José Javier Zaragozá Dolz para asistencia técnica y ayudar en las tareas de administración. Esta investigación fue parcialmente apoyada por la Asociación Club de Variedades Vegetales Protegidas como parte de un proyecto con la Universitat Politècnica de València (UPV 20170673).

1. crecimiento cámara características y requisitos de regulación
<ol><li>Utilizar una cámara de crecimiento mide 1,85 x 1,85 m x 2,5 m (L x W x H) con un volumen total de 8,56 m3 (figura 1). Una cámara de mayor o menor crecimiento puede recurrir si es necesario. Nota: Casi cualquier habitación, o incluso un invernadero, puede ser adaptado para ser utilizado como una cámara de crecimiento.</li>
	<li>Compruebe si las regulaciones como la temperatura (día/noche), fotoperiodo (día/noche), luz intensidad y mínima humedad relativa están disponibles (figura 2). Nota: Contadores de tiempo permitiría a temperatura y la luz del interruptor (encendido/apagado) control al menos cada 30 minutos.</li>
</ol>2. material vegetal
<ol><li>Obtener el material vegetal de viveros registrados con certificación libre de virus (por ejemplo, CV de seis árboles de mandarinas 'Clemenules' y CV 6 mandarinos 'Nova'). Nota: Árboles de mandarina pueden ser joven (por ejemplo, variedades de 1 o 2 años de edad injertadas sobre portainjertos).</li>
	<li>Utilizar macetas apropiadas (por ejemplo, un pote plástico de 22 cm x 20 cm (diámetro x altura) y preparar 5 L de sustrato estándar a base de turba de alta calidad blanco (50%) y fibra de coco (50%).</li>
	<li>Árboles de uso que son alrededor de 1,5 m de altura con una corona esférica bien desarrollada de 1 m a 1,5 m. plantas deben ser completamente sano y plagas-, patógeno o libre de enfermedad.</li>
</ol>3. primer riego
<ol><li>Regar las plantas por primera vez tan pronto como llegan del vivero para estandarizar el contenido de humedad. De agua por inmersión. Cubrir las macetas con agua hasta la mitad por 20 min.</li>
	<li>Mantener las plantas de exterior a media sombra sin riego durante 3-5 días (tabla 1).</li>
</ol>4. condiciones primavera en el Fitotrón
<ol><li>Revisión de condiciones de primavera del sitio para determinar el medio día y noche de temperatura, fotoperíodo y humedad relativa (por ejemplo, en la latitud de trabajo (39° 28′ N, 0 ° 20′ 37.71″ W de 53.95″) con una única floración al año que la floración de cítricos se extiende desde mediados de marzo a finales de abril con algunas variaciones anuales. Por lo tanto, estas fechas se verificaron en varias estaciones meteorológicas (por ejemplo w.s. 38 ° 57' 51.77″ N, 0 ° 15' 02.24″ W 113 m.s.n.m.) durante al menos 10 años, y se determinaron el promedio día y noche de temperatura, fotoperíodo y humedad relativa).</li>
	<li>Programa de la cámara de crecimiento para mandarinos con las siguientes condiciones: (i) temperatura de 22 ° C/11 ° C (día/noche); (ii) fotoperíodo de 13 11 h (luz/oscuridad); (iii) humedad relativa alrededor de 60% y no menos del 50% (figura 3).<ol>
<li>Utilizar dos controladores electrónicos con salida dual, uno para el día y uno para la humedad de la noche. Utilice un temporizador para cambiar de día a la humedad de la noche. Establecer mínima y máxima de humedad para día y noche.<ol>
<li>Para una humedad mínima, presione y suelte (solo prensa) el botón Set ; Aparecerá SP 1 (punto 1); Presione y suelte la tecla Set y presione la tecla arriba o abajo para cambiar el valor de Service Pack 1 (50%).</li>
			<li>Humedad máxima, presione y suelte (solo prensa) el botón Set ; Aparecerá SP 1 (punto 1); Pulse la tecla arriba o abajo para cambiar a SP 2; Aparecerá SP 2 (punto 2); Presione y suelte la tecla Set y presione la tecla arriba o abajo para cambiar el valor de Service Pack 2 (60%).</li>
		</ol>
</li>
		<li>Utilizar un regulador electrónico con 2 puntos de ajuste y un ajuste diferencial punto de ajuste para establecer la temperatura. Utilizar un temporizador para cambiar desde el día a la temperatura de la noche.<ol>
<li>Establecer la temperatura deseada del día (22 ° C). Presione y suelte el botón Set ; Aparecerá SP 1 (punto 1); Pulse el botón Set ; Pulse la tecla arriba o abajo clave para cambiar el valor de SP1.</li>
			<li>Establecer la banda de regulación, por ejemplo parámetros db1 y dF1. Refrigeración comenzará cuando juego el punto 1 (SP1) y db1 se alcanza y se detendrá a una temperatura igual a SP1 más db1 menos dF1. Pulse el botón Set durante 5 s; rE1 aparecerá; Oprima Set; Pulse la tecla UP ; db1 aparecerá; Presione Set y presione la tecla arriba o abajo para cambiar el valor de db1 (2 ° C); Presione Set | Para arriba; dF1 aparecerá; Presione Set y presione el arriba o abajo para cambiar el valor de dF1 (2 ° C).</li>
			<li>Para configurar la temperatura deseada de la noche (11 ° C), acceso a parámetro OS1 (Offset establece el punto 1). Pulse el botón Set durante 5 s; Presione 3 veces; cnF aparecerá; Presione Set | Hacia abajo; PA2 aparecerá; Oprima Set; rE1 aparecerá; Oprima Set; OS1 aparecerá; Presione Set y presione hacia arriba o abajo para cambiar el valor de OS1 (-11 ° C); Presione el botón de fnc (función ESC (salida)).</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>Aumentar la temperatura 1 ° c (23/12 ° C día/noche) después de 4 semanas y media hora de luz (luz/oscuridad de 13.5/10.5). Nota: Como el Fitotrón tiene rangos de variación, la temperatura durante la noche puede variar de 11 ° C a 14 ° C y la temperatura durante el día de 19 ° C a 22 ° C (figura 3).</li>
	<li>Utilice dos kits de luz con un reflector, un haluro de sodio lastre eléctrico y sodio de alta presión (HPS) 600 W Lámpara para obtener la intensidad de luz adecuada (figura 4). Intensidad de la luz es esencial para la floración.</li>
	<li>Modificar la distancia entre la lámpara y la corona para obtener la luminosidad deseada y configurar el fotoperíodo con el temporizador.</li>
	<li>Control de iluminación con un luxómetro. En la parte superior de la corona, debería alcanzarse 55.000 lux (671 μmol m-2 s-1), con 40.000 lux (488 μmol m-2 s-1) en la base de la corona.</li>
</ol>5. colocación de árboles en el Fitotrón
<ol><li>Colocar árboles en el Fitotrón y mantenerlos durante varias semanas sin regarlas (figura 5A).</li>
	<li>Distribuir los árboles con regularidad por lo que cada uno tiene el mismo espacio y la luz (por ejemplo, árboles fueron uniformemente distribuidos dentro de la cámara de crecimiento en tres líneas y en cuatro posiciones. La distancia entre las líneas era 0,46 cm, mientras que la distancia entre posiciones es de 0,37 cm) (figura 1).</li>
	<li>Distribución de individuos y variedades al azar entre posiciones (figura 1).</li>
</ol>6. Bioestimulante
<ol><li>Uso de estrés hídrico para la inducción floral. Después del primer riego, no regar los árboles hasta que el período de estrés de agua se considera haber terminado.</li>
	<li>Comprobar la intensidad de estrés de agua todos los días mirando de turgencia de hoja.</li>
	<li>Considerar suficiente estrés hídrico para la inducción floral cuando la mayoría de hojas son flácidas, pero no comenzó a caer (por ejemplo, después de 22 días sin riego, las hojas fueron flácidas y algunos empezaron a caer) (tabla 1). Nota: Si el estrés hídrico es excesivo (muchas hojas de otoño), la supervivencia de la planta puede ser comprometida, mientras que si el estrés hídrico es insuficiente (no suficientes hojas flácidas), pobre floración puede tener lugar.</li>
	<li>Regar los árboles abundantemente después del período de estrés de agua. Para este primer riego, del agua por inmersión. Cubre macetas con agua hasta la mitad por 20 min.</li>
	<li>Medir la intensidad del estrés de agua para cada individuo teniendo en cuenta el número total de hojas (figura 5BC). El porcentaje de hojas es una medida indirecta de la tensión de agua sufrida por cada individuo. Estimar el porcentaje de hojas mediante la comparación de la cantidad total de hojas antes y después del período de estrés de agua.</li>
</ol>7. flor de cosecha si es necesario para otros experimentos
<ol><li>En el principio y el fin de los periodos de floración, recoger flores una vez al día. En los días de producción máxima de la flor, recoger flores dos veces al día y 7 días a la semana.</li>
	<li>Flores de la cosecha a mano y mantener a-20 ° C en una bolsa de plástico marcada (figura 5). La producción de flores de seis árboles de mandarina puede variar desde 25 a más de 200 flores por día.<ol>
<li>Elegir el estado exacto de la flor al recoger.</li>
		<li>Flores para ensayos de germinación de polen in vitro o para cualquier otro fin con una viabilidad de polen es igual a polen fresco.</li>
	</ol>
</li>
</ol>8. otras tareas administrativas
<ol><li>Agua los árboles aproximadamente una vez por semana después del período de escasez de agua según las necesidades.</li>
	<li>Verificar la presencia de plagas y enfermedades cada 2-3 días (por ejemplo, sólo una pequeña población de Icerya purchasi Maskell se observó en este experimento y fue quitada manualmente para evitar el uso de tratamientos químicos (figura 5E)).</li>
	<li>Compruebe los ajustes de temperatura y humedad con un registrador de datos (figura 3).</li>
</ol>

<ol><li>Matsui, T., Omasa, K., Horie, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+difference+in+sterility+due+to+high+temperatures+during+the+flowering+period+among+japonica-rice+varieties%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Production+Science%22%5BJournal%5D)">The difference in sterility due to high temperatures during the flowering period among japonica-rice varieties.</a> Plant Production Science. 4 (2), 90-93 (2001).</li>
<li>Niedziela, C. E. Jr, Kim, S. H., Nelson, P. V., De Hertogh, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+N-P-K+deficiency+and+temperature+regime+on+the+growth+and+development+of+Lilium+longiflorum+%27Nellie+White%27during+bulb+production+under+phytotron+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Scientia+Horticulturae%22%5BJournal%5D)">Effects of N-P-K deficiency and temperature regime on the growth and development of Lilium longiflorum 'Nellie White'during bulb production under phytotron conditions.</a> Scientia Horticulturae. 116 (4), 430-436 (2008).</li>
<li>Hideo, I. T. O., Saito, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studies+on+the+flower+formation+in+the+strawberry+plants+I.+Effects+of+temperature+and+photoperiod+on+the+flower+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Tohoku+Journal+of+Agricultural+Research%22%5BJournal%5D)">Studies on the flower formation in the strawberry plants I. Effects of temperature and photoperiod on the flower formation.</a> Tohoku Journal of Agricultural Research. 13 (3), 191-203 (1962).</li>
<li>Shillo, R., Halevy, A. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interaction+of+photoperiod+and+temperature+in+flowering-control+of+Gypsophila+paniculata+L%5BTitle%5D)+AND+%22Scientia+Horticulturae%22%5BJournal%5D)">Interaction of photoperiod and temperature in flowering-control of Gypsophila paniculata L.</a> Scientia Horticulturae. 16 (4), 385-393 (1982).</li>
<li>Nunn, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+ozone+uptake+and+sensitivity+between+a+phytotron+study+with+young+beech+and+a+field+experiment+with+adult+beech+%28Fagus+sylvatica%29%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Pollution%22%5BJournal%5D)">Comparison of ozone uptake and sensitivity between a phytotron study with young beech and a field experiment with adult beech (Fagus sylvatica).</a> Environmental Pollution. 137 (3), 494-506 (2005).</li>
<li>Matyssek, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+in+understanding+ozone+impact+on+forest+trees%3A+messages+from+novel+phytotron+and+free-air+fumigation+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Pollution%22%5BJournal%5D)">Advances in understanding ozone impact on forest trees: messages from novel phytotron and free-air fumigation studies.</a> Environmental Pollution. 158 (6), 1990-2006 (2010).</li>
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<li>Distefano, G., Gentile, A., Hedhly, A., La Malfa, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temperatures+during+flower+bud+development+affect+pollen+germination%2C+self-incompatibility+reaction+and+early+fruit+development+of+clementine+%28Citrus+clementina+Hort.+ex+Tan.%29%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Biology%22%5BJournal%5D)">Temperatures during flower bud development affect pollen germination, self-incompatibility reaction and early fruit development of clementine (Citrus clementina Hort. ex Tan.).</a> Plant Biology. 20 (2), 191-198 (2018).</li>
<li>de Oliveira, C. R. M., Mello-Farias, P. C., de Oliveira, D. S. C., Chaves, A. L. S., Herter, F. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Water+availability+effect+on+gas+exchanges+and+on+phenology+of+%27Cabula%27+orange%5BTitle%5D)+AND+%22VIII+International+Symposium+on+Irrigation+of+Horticultural+Crops+1150%22%5BJournal%5D)">Water availability effect on gas exchanges and on phenology of 'Cabula' orange.</a> VIII International Symposium on Irrigation of Horticultural Crops 1150. , 133-138 (2015).</li>
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<li>Goldberg-Moeller, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+gibberellin+treatment+during+flowering+induction+period+on+global+gene+expression+and+the+transcription+of+flowering-control+genes+in+Citrus+buds%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+science%22%5BJournal%5D)">Effects of gibberellin treatment during flowering induction period on global gene expression and the transcription of flowering-control genes in Citrus buds.</a> Plant science. , 46-57 (2013).</li>
<li>Bermejo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Auxin+and+Gibberellin+Interact+in+Citrus+Fruit+Set%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Plant+Growth+Regulation%22%5BJournal%5D)">Auxin and Gibberellin Interact in Citrus Fruit Set.</a> Journal of Plant Growth Regulation. , 1-11 (2017).</li>
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<li>Reece, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fruit+set+in+the+sweet+orange+in+relation+to+flowering+habit%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+American+Society+for+Horticultural+Science%22%5BJournal%5D)">Fruit set in the sweet orange in relation to flowering habit.</a> Proceedings of the American Society for Horticultural Science. 46, 81-86 (1945).</li>
<li>Khan, S. A., Perveen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+pollen+germination+of+five+citrus+species%5BTitle%5D)+AND+%22Pak.+J.+Bot%22%5BJournal%5D)">In vitro pollen germination of five citrus species.</a> Pak. J. Bot. 46 (3), 951-956 (2014).</li>
<li>Planes, L., Catalán, J., Jaques, J. A., Urbaneja, A., Tena, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pezothrips+kellyanus+%28Thysanoptera%3A+Thripidae%29+nymphs+on+orange+fruit%3A+importance+of+the+second+generation+for+its+management%5BTitle%5D)+AND+%22Florida+Entomologist%22%5BJournal%5D)">Pezothrips kellyanus (Thysanoptera: Thripidae) nymphs on orange fruit: importance of the second generation for its management.</a> Florida Entomologist. , 848-855 (2015).</li>
<li>Carimi, F., Caleca, V., Mineo, G., De Pasquale, F., Crescimanno, F. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rearing+of+Prays+citri+on+callus+derived+from+lemon+stigma+and+style+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Entomologia+Experimentalis+et+Applicata%22%5BJournal%5D)">Rearing of Prays citri on callus derived from lemon stigma and style culture.</a> Entomologia Experimentalis et Applicata. 95 (3), 251-257 (2000).</li>
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<li>Iglesias, D. J., Tadeo, F. R., Primo-Millo, E., Talon, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fruit+set+dependence+on+carbohydrate+availability+in+citrus+trees%5BTitle%5D)+AND+%22Tree+Physiology%22%5BJournal%5D)">Fruit set dependence on carbohydrate availability in citrus trees.</a> Tree Physiology. 23 (3), 199-204 (2003).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Es posible forzar la floración de los árboles cítricos jóvenes (sólo 2 años de edad) rápidamente y en cualquier momento con producción de flores abundante (alrededor de 216 flores por árbol). En anteriores estudios14,15, iniciación de la flor fue inducida por las bajas temperaturas y el proceso duró alrededor de 120 días. Condiciones de la combinación de un período de estrés de agua corto con resorte en el Fitotrón este tiempo reducirse significativamente, con ma...

Fitotrón se ha utilizado ampliamente para evaluar el efecto de numerosos parámetros en el desarrollo de muchas herbáceas y plantas del bulbo. Especies como arroz1, lirio2, fresa3 y muchos otros4 han sido evaluados bajo condiciones Fitotrón. Experimentos de cámara en árboles forestales también se han realizado para evaluar la sensibilidad del ozono en juvenil haya5,6y para evaluar la influencia de las temperaturas en endurecimiento de frost en plántulas de pino y abeto de Noruega7 . Existe menos información acerca de cómo obtener rápido profusa floración en frutales jóvenes a través de cámaras de crecimiento.
La floración de los cítricos y su relación con muchos factores endógenos y exógenos, desde hace mucho tiempo se han ampliamente estudiados. Temperaturas8, de la disponibilidad de agua9, hidratos de carbono10, auxina y giberelina contenido11,12, ácido abscísico13y muchos otros factores que afectan los sistemas reproductivos de cítricos han sido estudió. Efectos de temperatura y el fotoperíodo en la iniciación de la flor han sido estudiados en naranja dulce (Citrus × sinensis (L.) Osbeck)14,15. En estos experimentos, se utilizaron condiciones tiempo inductivas (semanas 5 a 15/8 ° C) y la temperatura durante el desarrollo de la sesión influenciado inflorescencia tipo14. Durante la floración cítricos, el término "inflorescencia" se ha aplicado a todo tipo de rodamiento de flores crecimiento que surgen de yemas axilares, ya utilizado por Reece16.
Tener una metodología clara precisa para forzar la floración en un corto período de tiempo y otras veces que primavera puede proporcionar muchas ventajas para los investigadores. Excepto las áreas tropicales, el florecimiento de árboles frutales se produce sólo una vez al año, que limita el número de experimentos que se pueden hacer.
Flores obtenidas por métodos de forzado se pueden utilizar para una amplia variedad de experimentos para: obtener polen viable para el crecimiento in vitro y los experimentos de germinación en cualquier mes17; ejecutar experimentos con las plagas que afectan las primeras etapas de desarrollo de fruto, incluso antes de la caída de los pétalos, como Pezothrips kellyanus Bagnall18o19de Prays citri Millière; estudiar el efecto de las temperaturas, tratamientos químicos, predadores naturales o insectos sólo cría; evaluar la influencia de numerosos factores en las alteraciones fisiológicas que molestar las primeras etapas de desarrollo de fruta, como "arrugar" en naranja dulce20,21; ayudar a los criadores de planta para acortar el tiempo para la obtención de gametos masculinos y femeninos para realizar cruces forzados.
Este trabajo pretende esbozar el diseño y ejecución de una metodología rápida clara para forzar la floración en árboles jóvenes de mandarina (CV Nova y variedad Clemenules) y analizar la influencia de la intensidad de la inducción en el tipo de inflorescencia. Para lograr este objetivo, detalles de iluminación artificial (lúmenes), fotoperíodo, temperaturas, tamaño de la planta y edad, estrategia de inducción, días de inducción, días para la germinación, días para la floración y la cantidad total de flores por variedad se proporcionan. Intensidad de la inducción de estrés de agua fue también grabado y relacionada con el tipo de inflorescencia, las fechas y cantidades de flores.

<table><tbody><tr><td>Registrador de datos</td><td>Testo&nbsp;</td><td>Testo 177-H1</td><td>Testo 177-H1, registrador de humedad/temperatura, 4 canales, con sensores internos y temperatura externa adicional</td></tr><tr><td>Registrador de datos Sotfwae</td><td>Testo</td><td>Software Comsoft Basic Testo 5</td><td>Software básico para la programación y lectura de los registradores de datos Testo</td></tr><tr><td>Controlador electrónico diferencial</td><td>Eliwell&nbsp;</td><td>IC 915 (LX)&nbsp; (cód. 9IS23071)</td><td>Controlador electrónico con 2 puntos de ajuste y ajuste del punto de ajuste diferencial&nbsp;</td></tr><tr><td>Controlador electrónico dual&nbsp;</td><td>Eliwell&nbsp;</td><td>IC 915 NTC-PTC</td><td>Controladores electrónicos con doble salida</td></tr><tr><td>Cámara de crecimiento - phytotron</td><td>Cámara Rochina</td><td></td><td>de 1,85 x 1,85 x 2,5 m (largo x ancho x alto) con un volumen total de 8,56 m3. Con control de temperatura (día/noche), fotoperiodo (día/noche), intensidad lumínica y humedad relativa mínima.</td></tr><tr><td>Kit de luces</td><td>Cosmos Grow/Bloom Light</td><td></td><td>Kit de luces con reflector, balasto eléctrico de sodio/halogenuros y lámpara de sodio de alta presión (HPS) de 600W&nbsp;</td></tr><tr><td>Luxómetro</td><td>Delta OHM</td><td>HD 9221</td><td>HD 9221 Luxómetro para medir la intensidad de la luz</td></tr><tr><td>Material vegetal</td><td>Beniplant S.L (AVASA)Mandarinos</td><td></td> <td>procedentes de viveros registrados con certificación libre de virus&nbsp;</td></tr><tr><td>Sustrato</td><td>Plant Vibel</td><td></td><td>Sustrato estándar a base de fibra de coco 50% y 50% de fibra de coco</td></tr></tbody></table>

floración forzada en mandarinos phytotron condiciones

Forced Flowering in Mandarin Trees under Phytotron Conditions

Fitotrón se ha utilizado ampliamente para evaluar el efecto de numerosos parámetros en el desarrollo de muchas especies. Sin embargo, menos información está disponible en cómo conseguir rápido profusa floración en frutales jóvenes con esta cámara de crecimiento de la planta. Este estudio pretende describir el diseño y ejecución de una metodología rápida clara para forzar la floración en árboles jóvenes de mandarina (CV Nova y variedad Clemenules) y analizar la influencia de la intensidad de la inducción en el tipo de inflorescencia. La combinación de un período de estrés de agua corta con condiciones simuladas del resorte (día 13 h, 22 ° C, 11 h, 12 ° C la noche) en el Fitotrón permitido flores a obtenerse solamente después de 68-72 días desde el momento en el experimento comenzó. Requisitos de baja temperatura adecuadamente fueron substituidos por estrés hídrico. Respuesta floral fue proporcional al estrés hídrico (medido como el número de hojas): cuanto mayor sea la inducción, cuanto mayor sea la cantidad de flores. Intensidad de la inducción floral también influyó el tipo de inflorescencia y las fechas de floración. Detalles en iluminación artificial (lúmenes), fotoperíodo, temperatura, tamaño y edad de la planta, cuentan con estrategia de inducción y días para cada etapa. Obtención de flores de árboles frutales en cualquier momento y también varias veces al año, puede tener muchas ventajas para los investigadores. Con la metodología propuesta en este documento, tres o incluso cuatro, períodos de floración pueden ser forzados cada año, y los investigadores deben ser capaces de decidir cuando, y que se conocen, la duración de todo el proceso. La metodología puede ser útil para: flores producción y ensayos de germinación de polen in vitro; experimentos con las plagas que afectan las etapas iniciales del desarrollo de fruto; estudios sobre alteraciones fisiológicas de la fruta. Todo esto puede ayudar a los criadores de planta para acortar el tiempo para la obtención de gametos masculinos y femeninos para realizar cruces forzados.

El experimento se llevó a cabo en la cámara de crecimiento de planta ubicada en el Campus de Gandía de la Universidad Politécnica de Valencia (Municipio de Gandía) en la provincia de Valencia (39° 28′ N, 0 ° 20′ 37.71″ W de 53.95″), en otoño e invierno ((26 de octubre - 5 de febrero de 2018 2017) Tabla 1). CV de seis árboles de mandarinas 'Clemenules' (una mutación del brote del Citrus clementina Hort ex Tanaka) y CV de seis árboles de mandarina 'Nova' (el híbrid...

Aquí, presentamos un protocolo para forzar la floración en mandarinos en condiciones Fitotrón. Agua estrés, alta iluminación y fotoperiodo resorte simulado permitida flores viables obtener en un corto período de tiempo. Esta metodología permite a los investigadores tener varios periodos de floración en 1 año.

Floración forzada en mandarinos Phytotron condiciones

Phytotron has been widely used to assess the effect of numerous parameters on the development of many species. However, less information is available on ...

Los experimentos que implican flores cítricas generalmente se limitan a la primavera. Con estas metodologías, los investigadores podrán controlar y diseñar cuándo obtener las flores con las que trabajar. Es una técnica clara y fácil que permite obtener flores de mandarinas jóvenes en cualquier época del año.Los investigadores pueden controlar las fechas y la intensidad de las flores. Esta técnica se puede utilizar no sólo para árboles mandarín, sino también para otros árboles cítricos como limones o pomelos y otros árboles frutales. Para preparar, utilice una cámara de crecimiento de 1,85 metros, una anchura de 1,85 metros y una altura de 2,5 metros con un volumen total de 8,56 metros cúbicos.Compruebe si existen regulaciones como la temperatura para el día y la noche, el período fotográfico, la intensidad de la luz y la humedad relativa mínima. Obtener el material vegetal de los viveros registrados con una certificación libre de virus. Por ejemplo, seis árboles de mandarín cultivares Clemenules y seis árboles de mandarín cultivares Nova.Los árboles de mandarín pueden ser jóvenes, por ejemplo, variedades de una o dos años de edad injertadas en las poblaciones de raíces. Utilice macetas apropiadas como una olla de plástico con diámetro de 22 centímetros y altura de 20 centímetros y prepare cinco litros de sustrato estándar basado en el 50% de turba blanca de alta calidad y el 50% de fibra de coco. Irrigar las plantas por primera vez tan pronto como lleguen desde el vivero para estandarizar el contenido de humedad.Agua por inmersión. Cubra las ollas con agua a mitad de 20 minutos. Mantener las plantas al aire libre a media sombra sin riego durante tres a cinco días.Programe la cámara de crecimiento de los árboles de mandarín en función de las condiciones de primavera del sitio. Utilice dos controladores electrónicos con salida doble, uno para el día y otro para la humedad nocturna. Usa un temporizador para cambiar de día a noche.Para configurar la humedad del minium, pulse y suelte el botón de ajuste. Cuando aparezca SP1, pulse y suelte el botón de ajuste y pulse la tecla arriba o abajo para cambiar el valor SP1 a 50%Para la humedad máxima, presione y suelte el botón de ajuste y luego presione la tecla hacia arriba o hacia abajo para cambiar a SP2. Presione y suelte el botón de ajuste y presione la tecla arriba o abajo para cambiar el valor SP2 a 60%Para configurar la temperatura del día deseada a 22 grados Celsius, presione y suelte el botón de ajuste.Cuando aparezca SP1, pulse el botón de ajuste y, a continuación, pulse la tecla arriba o hacia abajo para cambiar el valor SP1. Para configurar la temperatura nocturna deseada, desfase el punto de ajuste uno para acceder al parámetro OS1. Pulse el botón de ajuste durante cinco segundos y, a continuación, pulse la tecla de abajo tres veces.Cuando aparezca CnF, pulse el botón de ajuste y, a continuación, pulse el botón de abajo. Cuando aparezca PA2, pulse set dos veces con rE1 y OS1 que aparecen en secuencia. Pulse set de nuevo y presione la tecla arriba o abajo para cambiar el valor OS1 a menos 11 grados Celsius y luego presione el botón FNC para salir.Después de cuatro semanas, aumente la temperatura en un grado Celsius y agregue media hora de luz. Como el fitotrón tiene rangos de variación, la temperatura nocturna puede variar de 11 a 14 grados Celsius y la temperatura diurna de 19 a 22 grados Celsius. Utilice dos kits de luz con un reflector, un halogenuro de sodio de lastre eléctrico y una lámpara de sodio de alta presión de 600 vatios para obtener la intensidad lumínica adecuada.Utilice un medidor de lux para comprobar la iluminación. Se desea alcanzar 55.000 lux en la parte superior de la corona y 40.000 lux en la base de la corona. Antes de la inducción floral, coloque los árboles dentro del fitotrón y guárdalos durante varias semanas sin regarlos.Distribuya los árboles regularmente para que cada uno tenga el mismo espacio y luz disponibles. Distribuir individuos y variedades aleatoriamente entre posiciones. Para utilizar el estrés hídrico para la inducción floral, después del primer riego, no irrigar los árboles hasta que se considere que el período de estrés hídrico ha terminado.Mira la turgesión de la hoja para comprobar la intensidad del estrés del agua todos los días. Cuando la mayoría de las hojas son flácidas pero no han comenzado a caer, considere suficiente estrés hídrico para la inducción floral. Esto suele ocurrir después de 22 días sin regar.Irrigar los árboles abundantemente después del período de estrés del agua. Para este primer riego, cubra las ollas con agua a mitad de camino para sumergirse durante 20 minutos. Compare la cantidad total de hojas antes y después del período de estrés hídrico.Calcular el porcentaje de hojas caídas que es una medida indirecta de la tensión de agua sufrida por cada individuo. Al principio y al final de los períodos de floración, recoger flores una vez al día. En los días de máxima producción de flores, recoger flores dos veces al día y siete días a la semana.Realizar otras tareas de gestión, como regar árboles aproximadamente una vez a la semana después del período de tensión de agua y comprobar la configuración de temperatura y humedad con un registrador de datos. En este experimento, se establecieron tres niveles de intensidad de estrés hídrico para el mismo número de días sin riego, de baja intensidad que tiene una caída de cinco a 10% de hoja de los individuos Clemenules, de intensidad media a alta que tiene 50 a 60% de caída de hoja de los individuos Nova, de muy alta intensidad que tiene 80 a 90% de caída de hoja de los individuos Nova. La gran mayoría de las flores eran completas y viables.Algunas pequeñas flores frondosas con pétalos muy cortos se observaron al comienzo del período de floración probablemente debido a la inducción parcial de algunos cogollos. Cuanto mayor sea el porcentaje de caída de la hoja, mayor será el estrés hídrico y, por lo tanto, mayor intensidad de inducción floral. Individuos con alta inducción mostraron principalmente cogollos sin hojas con una flor o varios.Los individuos con inducción intermedia mostraron principalmente cogollos con un número equilibrado de hojas y flores, pero también cogollos sin hojas con una flor o varios y muy pocos cogollos con muchas hojas y algunas flores. Individuos con baja inducción mostraron principalmente cogollos con muchas más hojas que flores. El nivel de estrés hídrico se puede estimar con la turgencia de la hoja y se correlacionará con la intensidad floral.Se determinarán las fechas, la cantidad de flores y el tipo de inflorescencia. Esta técnica puede ser útil para cualquier otro árbol frutal para obtener flores en cualquier momento.

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