Name: 3D impreso celulosa poroso nanocompuesto hidrogel andamios (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-04-24T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 36 s
Description: Aprende a imprimir en 3D andamios de hidrogel nanocompuesto de celulosa con estructuras de poro gradiente que imitan las propiedades mecánicas del cartílago natural para ingeniería de tejidos.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Este estudio es apoyado financieramente por Knut y Alice Wallenberg Foundation (centro de Ciencias de la madera del Wallenberg), Consejo de investigación sueco, VR (Bioheal, 05709 DNR 2016 y 2017 DNR 04254).

1. preparación de precursores
<ol><li>Preparación de la suspensión de nanocristales de celulosa Nota: El aislamiento de celulosa nanocristales se realiza de acuerdo al procedimiento reportado por Mathew, y otros30.<ol>
<li>Diluir 17 wt % suspensión de nanocristales de celulosa al 2% de peso mediante la adición de agua destilada agua para hacer un volumen total de mezcla de L. 2 con ultra sonicación y uso lotes más pequeños (250-300 mL) para la mezcla eficaz.</li>
		<li>Pasar la suspensión sonified por el homogeneizador 10 veces a una presión de 500-600 bar. En este punto, se obtiene un gel transparente grueso de 2 wt % celulosa nanocristales.</li>
		<li>Se concentran 2 wt % de celulosa gel de nanocristales a 11% de peso a través de centrifugados a 24.500 x g de 1,5 h. decantar agua entre cada 30 minutos. Nota: Experimento puede hacer una pausa aquí.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Preparación de las fases de la matriz<ol>
<li>Preparar una solución homogénea de peso 6% alginato de sodio (SA) en agua destilada a 60 º C bajo agitación continua.</li>
		<li>Preparar una solución homogénea de 12 wt % de gelatina (Gel) en agua destilada a 60 º C bajo agitación continua. Nota: Preparar un volumen de 20 mL para las soluciones de matrix y almacenar en el refrigerador.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Preparación de reticulantes<ol>
<li>Preparar la solución 3 wt % de cloruro de calcio en agua destilada a temperatura ambiente con agitación continua.</li>
		<li>Preparar la solución de glutaraldehído de % wt 3 en agua destilada a temperatura ambiente con agitación continua. Nota: Preparar un volumen de 50 mL para soluciones de reticulación y almacenar en temperatura ambiente. Consulte la Tabla de materiales para la información del vendedor. Experimento puede hacer una pausa aquí.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. preparación de la tinta de hidrogel
<ol><li>Preparar 40 mL de tinta de hidrogel en un contenedor de poliestireno mediante la mezcla de 11% en CNC, 6 wt % SA y 12% en Gel para obtener un mojado (wt %) composición de la CNC, SA, Gel, agua: 6.87/1.50/1.50/90.12.</li>
	<li>Calienta la mezcla a 40 ° C y mezclar con una espátula hasta obtener una pasta suave.</li>
	<li>Transferir la mezcla en una jeringa de 60 mL. Pasar la mezcla a través de una serie de boquillas de diferentes diámetros en otra jeringa de 60 mL, con la ayuda de la abrazadera mecánica. Repita el proceso hasta que se obtienen filamentos suavemente sacados de hidrogel tinta. Comience con la boquilla con diámetro mayor de 800 μm, seguido de 600 μm y μm 400.</li>
	<li>Suavemente la centrifugadora (4.000 x g) la jeringa llena de tinta de hidrogel para eliminar aire atrapado. Nota: Experimento puede hacer una pausa aquí.</li>
</ol>3. medición de propiedades reológicas de hidrogel
NTE: Llevar a cabo las propiedades reológicas con una geometría de cono sobre la placa lisa, CP25-2-SN7617, diámetro 25 mm, 2 ° ángulo nominal y altura del entrehierro 0,05 mm a 25 ° C.
<ol><li>Encienda el Reómetro, compresor de aire y caja de control de temperatura. Inicializar el software.</li>
	<li>Monte el aparato de medición en el Reómetro y ajuste zero-gap.</li>
	<li>Extraer aproximadamente 1 mL de la tinta de hidrogel en la plataforma de reómetro.</li>
	<li>Medir la viscosidad en función de la tarifa del esquileo. Seleccione el rango de velocidad de cizalla de 0,001 a 1000.</li>
	<li>Después de la medición, limpie la plataforma del reómetro y herramienta de medición. 1 mL de tinta de hidrogel fresco otra vez en la plataforma de reómetro de extrusión.</li>
	<li>Medir módulos de almacenamiento de información (G′) y módulos de pérdida (G″) como una función de la tensión de esquileo en una frecuencia de 1 Hz. Seleccione el rango de tensión de esquileo de 103 107.</li>
	<li>Una vez finalizadas las pruebas, copiar los datos en archivo de texto y trazar curvas reológicas en escala logarítmica.</li>
</ol>4. preparación para la impresión 3D de archivos
Nota: Cura 2.4.0 software se utiliza para el diseño 3D andamios (20 mm3) tiene tres tipos de poros. 1-uniforme poros de 0,6 mm, 2-uniforme poros de 1,0 mm y poros 3-degradado de rango 0.5-1 mm.
<ol><li>Descargar archivo de la estereolitografía (stl) de un cubo sólido de thingsinverse.com y abra el archivo en la Cura.</li>
	<li>Haga clic en el modelo cargado y a X/Y/Z: 0/0/0 mm. Haga clic en escala, desmarque la casilla de escala uniforme y establecer las dimensiones en X/Y/Z: 20/20/20 mm. Haga clic en girar y girar el cubo de 45 ° en plano XY.</li>
	<li>En el panel lateral, en Material y boquilla, seleccione 0,4 mm y el perfil de la goma. Seleccione Discov3ry completa como la impresora.</li>
	<li>En el lado del panel, seleccione personalizada para la Configuración de impresión. En la sección de calidad , entre 0,2 mm para todas las secciones de la sub. En la sección Shell , introduzca 0 mm para todas las secciones de la sub. En la sección de Material , introduzca 26 ° C de temperatura, fluyen de 1 mm de diámetro y 100%. Tramo de velocidad , introduzca 30 mm/s Velocidad de impresión y 120 mm/s como Velocidad de desplazamiento. En la sección de apoyo , desmarque la casilla para Activar. En la sección Construir placa de adherencia , seleccione falda, entrar en 3 mm como la Distancia de la falda y 150 mm longitud de la Falda/borde mínimo.</li>
	<li>Para andamios con tamaño de poro uniforme, ingrese 0.6 o 1 mm de Distancia de línea de relleno y seleccione el Patrón de relleno de cuadrícula.</li>
	<li>Para andamios de porosidad gradiente, fusión y agrupación de herramienta se utilizan. Haga clic con el botón derecho el modelo cargado, seleccione Múltiples modelos, escriba 2 y pulse OK. Escala de cada modelo como X/Y/Z: 7/20/20 mm. Coloque los modelos encima de la otra. Entrar en Distancia de línea de relleno como 0.3, 0.5 y 0.7 mm para el modelo inferior, medio y superior, respectivamente. Seleccione los tres modelos (Ctrl + A), haga clic derecho y haga clic en Grupo de modelos.</li>
	<li>Guardar los modelos de la tarjeta Digital segura (SD). Cura automáticamente guardar el archivo como gcode que es leída por la impresora.</li>
</ol>5. 3D impresión andamios porosos
<ol><li>Inserte el tubo de transferencia en el portainyector y conectarse 400 μm boquilla. Nivel de la placa de la construcción para obtener la distancia correcta entre la acumulación de placa y la boquilla.</li>
	<li>Cargar la jeringa de centrifugado en el cartucho y conectarlo al otro lado del tubo de transferencia.</li>
	<li>Inserte la tarjeta SD en la impresora, seleccione purgar rápidamente y empezar a purgar el hidrogel de tinta hasta que comience a sacar de la boquilla. Continuar la purga durante 2-3 minutos obtener un flujo homogéneo.</li>
	<li>Desde la tarjeta SD, seleccione los archivos guardados para andamios de porosidad uniforme y degradado y comenzar la impresión. Mantener un ojo en la tasa de extrusión. Si es necesario, ajustar la velocidad de flujo y velocidad por consiguiente. De tamaño de poro más pequeño, usar una velocidad más rápida combinada con bajo caudal (50 mm/s y el 70%). Nota: No toque los andamios impresos 3D.</li>
</ol>6. entrecruzamiento de 3D impreso andamios
<ol><li>Una vez finalizada la impresión 3D, suavemente añadir gotas de 3% en peso de CaCl2 al andamio hasta que esté completamente húmeda. Espere 5 minutos.</li>
	<li>Transferencia muy cuidadosamente el andamio de la impresora a un recipiente de 50 mL con 3% en peso de CaCl2. Dejarlo durante la noche.</li>
	<li>Lave bien con agua destilada y transferir al cadalso a un recipiente de 50 mL llenado de glutaraldehído de % wt 3. Dejarlo durante la noche.</li>
	<li>Lave bien y almacenar el andamio impreso 3D en agua destilada.</li>
</ol>7. ensayos de compresión de
Nota: Realizar pruebas de compresión con célula de carga de 100 N en agua a 37 ° C.
<ol><li>Llenar el contenedor equipado con placa base compresión sumergible con 2 L de agua y empezar el sistema de calefacción para alcanzar los 37 ° C.</li>
	<li>Software Bluehill Universal de inicializar y configurar el método de prueba. Seleccione la geometría rectangular de la muestra y elegir la opción de introducir dimensiones antes de probar cada muestra.  Establecer el grado de deformación de 2 mm/min y al final del resultado como 80% tensión compresiva junto con N de fuerza de 90.</li>
	<li>En la sección de medición , seleccione fuerza, desplazamiento, esfuerzo de compresión y tensión a la compresión. Elija la opción de exportar datos a archivos de texto para un futuro.</li>
	<li>Establecer el punto cero extensión mediante los controles de avance lento para bajar la placa de la cruceta lo más cerca posible a la placa base.</li>
	<li>Mida y tenga en cuenta las dimensiones de las muestras a ensayar.</li>
	<li>Cuando la temperatura del agua llega a 37 ° C, coloque la muestra en la placa base.  Fije la muestra moviendo la placa de la cruceta para que comience a tocar la muestra.</li>
	<li>Mueva la bañera de agua, para que las placas con el medio de la muestra ellos se sumergen en agua.</li>
	<li>Entrar en dimensiones y nombre de la muestra. Iniciar la prueba.</li>
	<li>Una vez finalizada la prueba, primero baje el baño de agua y entonces levante la placa de la cruceta.</li>
	<li>Retire la muestra y sus piezas, si, limpiar las placas de ambos y una nueva muestra de la carga.</li>
	<li>Después de todas las muestras se prueban, exportar los datos en bruto. Diagrama de esfuerzo de compresión vs curvas de deformación compresiva y determinar el módulo tangente a la compresión en los valores de tensión de 1-5% y un 25-30%. Nota: Coloque el cubo degradado de tal manera que los agujeros más grandes frente a la placa base de escritorio. Primero fijar el andamio entre los puños y luego iniciar/detener la medida.</li>
</ol>

<ol><li>Moon, R. J., Martini, A., Nairn, J., Simonsen, J., Youngblood, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellulose+nanomaterials+review%3A+structure%2C+properties+and+nanocomposites%5BTitle%5D)+AND+%22Chemical+Society+Reviews%22%5BJournal%5D)">Cellulose nanomaterials review: structure, properties and nanocomposites.</a> Chemical Society Reviews. 40 (7), 3941-3994 (2011).</li>
<li>Dufresne, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanocellulose%3A+a+new+ageless+bionanomaterial%5BTitle%5D)+AND+%22Materials+Today%22%5BJournal%5D)">Nanocellulose: a new ageless bionanomaterial.</a> Materials Today. 16 (6), 220-227 (2013).</li>
<li>Chinga-Carrasco, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potential+and+limitations+of+nanocelluloses+as+components+in+biocomposite+inks+for+three-dimensional+bioprinting+and+for+biomedical+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Potential and limitations of nanocelluloses as components in biocomposite inks for three-dimensional bioprinting and for biomedical devices.</a> Biomacromolecules. 19 (3), 701-711 (2018).</li>
<li>Naseri, N., Poirier, J., Girandon, L., Fröhlich, M., Oksman, K., Mathew, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3-Dimensional+porous+nanocomposite+scaffolds+based+on+cellulose+nanofibers+for+cartilage+tissue+engineering%3A+tailoring+of+porosity+and+mechanical+performance%5BTitle%5D)+AND+%22Royal+Society+of+Chemistry+Advances%22%5BJournal%5D)">3-Dimensional porous nanocomposite scaffolds based on cellulose nanofibers for cartilage tissue engineering: tailoring of porosity and mechanical performance.</a> Royal Society of Chemistry Advances. 6 (8), 5999-6007 (2016).</li>
<li>Naseri, N., Deepa, B., Mathew, A. P., Oksman, K., Girandon, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanocellulose-Based+Interpenetrating+Polymer+Network+%28IPN%29+Hydrogels+for+Cartilage+Applications%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Nanocellulose-Based Interpenetrating Polymer Network (IPN) Hydrogels for Cartilage Applications.</a> Biomacromolecules. 17 (11), 3714-3723 (2016).</li>
<li>Naseri, N., Mathew, A. P., Girandon, L., Fröhlich, M., Oksman, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Porous+electrospun+nanocomposite+mats+based+on+chitosan-cellulose+nanocrystals+for+wound+dressing%3A+effect+of+surface+characteristics+of+nanocrystals%5BTitle%5D)+AND+%22Cellulose%22%5BJournal%5D)">Porous electrospun nanocomposite mats based on chitosan-cellulose nanocrystals for wound dressing: effect of surface characteristics of nanocrystals.</a> Cellulose. 22 (1), 521-534 (2015).</li>
<li>Xing, Q., Zhao, F., Chen, S., McNamara, J., DeCoster, M. A., Lvov, Y. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Porous+biocompatible+three-dimensional+scaffolds+of+cellulose+microfiber%2Fgelatin+composites+for+cell+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">Porous biocompatible three-dimensional scaffolds of cellulose microfiber/gelatin composites for cell culture.</a> Acta Biomaterialia. 6 (6), 2132-2139 (2010).</li>
<li>Nandgaonkar, A., Krause, W., Lucia, L. Fabrication of cellulosic composite scaffolds for cartilage tissue engineering. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aNandgaonkar%2C+A+%22Nanocomposites+for+musculoskeletal+tissue+regeneration%22">Nanocomposites for musculoskeletal tissue regeneration</a>. , Elsevier. 187-212 (2016).</li>
<li>Gross, B. C., Erkal, J. L., Lockwood, S. Y., Chen, C., Spence, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+3D+printing+and+its+potential+impact+on+biotechnology+and+the+chemical+sciences%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Evaluation of 3D printing and its potential impact on biotechnology and the chemical sciences.</a> Analytical Chemistry. 86 (7), 3240-3253 (2014).</li>
<li>Markstedt, K., Mantas, A., Tournier, I., Martínez Ávila, H., Hägg, D., Gatenholm, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+bioprinting+human+chondrocytes+with+nanocellulose-alginate+bioink+for+cartilage+tissue+engineering+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">3D bioprinting human chondrocytes with nanocellulose-alginate bioink for cartilage tissue engineering applications.</a> Biomacromolecules. 16 (5), 1489-1496 (2015).</li>
<li>Sultan, S., Mathew, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+printed+scaffolds+with+gradient+porosity+based+on+a+cellulose+nanocrystal+hydrogel%5BTitle%5D)+AND+%22Nanoscale%22%5BJournal%5D)">3D printed scaffolds with gradient porosity based on a cellulose nanocrystal hydrogel.</a> Nanoscale. 10, 4421-4431 (2018).</li>
<li>Sultan, S., Siqueira, G., Zimmermann, T., Mathew, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+printing+of+nano-cellulosic+biomaterials+for+medical+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Biomedical+Engineering%22%5BJournal%5D)">3D printing of nano-cellulosic biomaterials for medical applications.</a> Current Opinion in Biomedical Engineering. 2, 29-34 (2017).</li>
<li>Sultan, S., Abdelhamid, H. N., Zou, X., Mathew, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CelloMOF%3A+Nanocellulose+Enabled+3D+Printing+of+Metal-Organic+Frameworks%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Functional+Materials%22%5BJournal%5D)">CelloMOF: Nanocellulose Enabled 3D Printing of Metal-Organic Frameworks.</a> Advanced Functional Materials. , 1805372-1805384 (2018).</li>
<li>Siqueira, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellulose+Nanocrystal+Inks+for+3D+Printing+of+Textured+Cellular+Architectures%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Functional+Materials%22%5BJournal%5D)">Cellulose Nanocrystal Inks for 3D Printing of Textured Cellular Architectures.</a> Advanced Functional Materials. 27 (12), 1604619-1604629 (2017).</li>
<li>Wang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((All-in-One+Cellulose+Nanocrystals+for+3D+Printing+of+Nanocomposite+Hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22Angewandte+Chemie+International+Edition%22%5BJournal%5D)">All-in-One Cellulose Nanocrystals for 3D Printing of Nanocomposite Hydrogels.</a> Angewandte Chemie International Edition. 57 (9), 2353-2356 (2018).</li>
<li>Hausmann, M. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamics+of+Cellulose+Nanocrystal+Alignment+during+3D+Printing%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Nano%22%5BJournal%5D)">Dynamics of Cellulose Nanocrystal Alignment during 3D Printing.</a> ACS Nano. 12 (7), 6926-6937 (2018).</li>
<li>Liu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanoscale+assembly+of+cellulose+nanocrystals+during+drying+and+redispersion%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Macro+Letters%22%5BJournal%5D)">Nanoscale assembly of cellulose nanocrystals during drying and redispersion.</a> ACS Macro Letters. 7 (2), 172-177 (2018).</li>
<li>Murphy, S. V., Atala, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+bioprinting+of+tissues+and+organs%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">3D bioprinting of tissues and organs.</a> Nature Biotechnology. 32 (8), 773-785 (2014).</li>
<li>Pati, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Printing+three-dimensional+tissue+analogues+with+decellularized+extracellular+matrix+bioink%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+communications%22%5BJournal%5D)">Printing three-dimensional tissue analogues with decellularized extracellular matrix bioink.</a> Nature communications. 5, 3935(2014).</li>
<li>Xia, Z., Jin, S., Ye, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+and+organ+3D+bioprinting%5BTitle%5D)+AND+%22SLAS+TECHNOLOGY%3A+Translating+Life+Sciences+Innovation%22%5BJournal%5D)">Tissue and organ 3D bioprinting.</a> SLAS TECHNOLOGY: Translating Life Sciences Innovation. 23 (4), 301-314 (2018).</li>
<li>Zhang, Q., Lu, H., Kawazoe, N., Chen, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pore+size+effect+of+collagen+scaffolds+on+cartilage+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">Pore size effect of collagen scaffolds on cartilage regeneration.</a> Acta Biomaterialia. 10 (5), 2005-2013 (2014).</li>
<li>Loh, Q. L., Choong, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+scaffolds+for+tissue+engineering+applications%3A+role+of+porosity+and+pore+size%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering%2C+Part+B%3A+Reviews%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional scaffolds for tissue engineering applications: role of porosity and pore size.</a> Tissue Engineering, Part B: Reviews. 19 (6), 485-502 (2013).</li>
<li>Bružauskaitė, I., Bironaitė, D., Bagdonas, E., Bernotienė, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scaffolds+and+cells+for+tissue+regeneration%3A+different+scaffold+pore+sizes-different+cell+effects%5BTitle%5D)+AND+%22Cytotechnology%22%5BJournal%5D)">Scaffolds and cells for tissue regeneration: different scaffold pore sizes-different cell effects.</a> Cytotechnology. 68 (3), 355-369 (2016).</li>
<li>Zhang, L., Hu, J., Athanasiou, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+tissue+engineering+in+articular+cartilage+repair+and+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Critical+Reviews%E2%84%A2+in+Biomedical+Engineering%22%5BJournal%5D)">The role of tissue engineering in articular cartilage repair and regeneration.</a> Critical Reviews™ in Biomedical Engineering. 37 (1-2), (2009).</li>
<li>Athanasiou, K., Rosenwasser, M., Buckwalter, J., Malinin, T., Mow, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interspecies+comparisons+of+in+situ+intrinsic+mechanical+properties+of+distal+femoral+cartilage%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Interspecies comparisons of in situ intrinsic mechanical properties of distal femoral cartilage.</a> Journal of Orthopaedic Research. 9 (3), 330-340 (1991).</li>
<li>Schinagl, R. M., Gurskis, D., Chen, A. C., Sah, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Depth-dependent+confined+compression+modulus+of+full-thickness+bovine+articular+cartilage%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Depth-dependent confined compression modulus of full-thickness bovine articular cartilage.</a> Journal of Orthopaedic Research. 15 (4), 499-506 (1997).</li>
<li>Athanasiou, K., Niederauer, G., Schenck, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomechanical+topography+of+human+ankle+cartilage%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+Biomedical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Biomechanical topography of human ankle cartilage.</a> Annals Biomedical Engineering. 23 (5), 697-704 (1995).</li>
<li>Athanasiou, K. A., Liu, G. T., Lavery, L. A., Lanctot, D. R., Schenck, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomechanical+topography+of+human+articular+cartilage+in+the+first+metatarsophalangeal+joint%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Orthopaedics+and+Related+Research%22%5BJournal%5D)">Biomechanical topography of human articular cartilage in the first metatarsophalangeal joint.</a> Clinical Orthopaedics and Related Research. 348, 269-281 (1998).</li>
<li>Guilak, F., Jones, W. R., Ting-Beall, H. P., Lee, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+deformation+behavior+and+mechanical+properties+of+chondrocytes+in+articular+cartilage%5BTitle%5D)+AND+%22Osteoarthritis+and+Cartilage%22%5BJournal%5D)">The deformation behavior and mechanical properties of chondrocytes in articular cartilage.</a> Osteoarthritis and Cartilage. 7 (1), 59-70 (1999).</li>
<li>Mathew, A. P., Oksman, K., Karim, Z., Liu, P., Khan, S. A., Naseri, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Process+scale+up+and+characterization+of+wood+cellulose+nanocrystals+hydrolysed+using+bioethanol+pilot+plant%5BTitle%5D)+AND+%22Industrial+Crops+and+Products%22%5BJournal%5D)">Process scale up and characterization of wood cellulose nanocrystals hydrolysed using bioethanol pilot plant.</a> Industrial Crops and Products. 58, 212-219 (2014).</li>
<li>Compton, B. G., Lewis, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D-printing+of+lightweight+cellular+composites%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Materials%22%5BJournal%5D)">3D-printing of lightweight cellular composites.</a> Advanced Materials. 26 (34), 5930-5935 (2014).</li>
<li>Sarem, M., Moztarzadeh, F., Mozafari, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+can+genipin+assist+gelatin%2Fcarbohydrate+chitosan+scaffolds+to+act+as+replacements+of+load-bearing+soft+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Carbohydrate+Polymers%22%5BJournal%5D)">How can genipin assist gelatin/carbohydrate chitosan scaffolds to act as replacements of load-bearing soft tissues.</a> Carbohydrate Polymers. 93 (2), 635-643 (2013).</li>
<li>Chia, H. N., Hull, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Compressive+moduli+of+the+human+medial+meniscus+in+the+axial+and+radial+directions+at+equilibrium+and+at+a+physiological+strain+rate%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+orthopaedic+research%22%5BJournal%5D)">Compressive moduli of the human medial meniscus in the axial and radial directions at equilibrium and at a physiological strain rate.</a> Journal of orthopaedic research. 26 (7), 951-956 (2008).</li>
<li>Zhang, K., Fan, Y., Dunne, N., Li, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+microporosity+on+scaffolds+for+bone+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Regenerative+biomaterials%22%5BJournal%5D)">Effect of microporosity on scaffolds for bone tissue engineering.</a> Regenerative biomaterials. 5 (2), 115-124 (2018).</li>
<li>Lin, N., Dufresne, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanocellulose+in+biomedicine%3A+Current+status+and+future+prospect%5BTitle%5D)+AND+%22European+Polymer+Journal%22%5BJournal%5D)">Nanocellulose in biomedicine: Current status and future prospect.</a> European Polymer Journal. 59, 302-325 (2014).</li>
<li>Domingues, R. M., Gomes, M. E., Reis, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+potential+of+cellulose+nanocrystals+in+tissue+engineering+strategies%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">The potential of cellulose nanocrystals in tissue engineering strategies.</a> Biomacromolecules. 15 (7), 2327-2346 (2014).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Impresión 3D requiere adecuadas propiedades reológicas de la tinta de hidrogel. La tinta de alta viscosidad requiere presiones extremas para su extrusión mientras que tinta de baja viscosidad no mantiene su forma después de la extrusión. La viscosidad de la tinta del hidrogel puede controlarse a través de la concentración de los ingredientes. En comparación con nuestro anterior trabajo11, el contenido de sólidos de la tinta de hidrogel aumenta de 5.4 a 9,9% de peso, dando por resultado la tinta co...

La celulosa es un polisacárido formado por cadenas lineales de β (1-4) unidades de D-glucosa enlazadas. Es el polímero natural más abundante en la tierra y se extrae de una variedad de fuentes, incluyendo fuentes bacterianas, como las algas (por ejemplo, Valonia), hongos e incluso amebas (protozoos, animales marinos (e.g., tunicados) y plantas (por ejemplo, madera, algodón, paja de trigo) )1,2. Nanofibras de celulosa (CNF) y celulosa nanocristales (CNC) con al menos una dimensión de nanoescala se obtienen a través de tratamientos mecánicos y la hidrólisis ácida de la celulosa. No sólo poseen las propiedades de la celulosa, tales como potencial de modificación química, baja toxicidad, biocompatibilidad, biodegradable y renovable, pero también tiene características de la nanoescala como superficie específica alta, altas características mecánicas , propiedades reológicas y el ópticos. Estas propiedades atractivas han hecho CNFs y CNCs conveniente para aplicaciones biomédicas, principalmente en forma de 3 dimensiones (3D) hidrogel andamios3. Los andamios requieren dimensiones modificadas para requisitos particulares con estructura de poro controlado y porosidad interconectada. Nuestro grupo y otros han reportado 3D celulosa porosa nanocompuestos preparados por fundición, electrospinning y liofilización4,5,6,7,8. Sin embargo, control sobre la estructura de poro y fabricación de geometría compleja no se logra a través de estas técnicas tradicionales.
La impresión 3D es una técnica de fabricación aditiva, en el cual se crean objetos 3D capa por capa a través de la deposición controlada por ordenador de los de tinta9. Las ventajas de la impresión 3D sobre técnicas tradicionales incluye libertad de diseño, control macro y micro dimensiones, fabricación de arquitecturas complejas, personalización y reproducibilidad.  Además, la impresión 3D de la CNFs y CNCs ofrece alineaciones por cizalla de nanopartículas, prefirió direccionalidad, porosidad gradiente y puede ampliarse fácilmente a 3D bioprinting10,11,12, 13 , 14 , 15. la dinámica de la CNCs alineación durante la impresión en 3D ha sido divulgado recientemente,16,17. Han permitido avances en el campo de bioprinting 3D impresos tejidos y órganos a pesar del desafío involucrado como elección y concentración de las células vivas y factores de crecimiento, composición del portador de la impresión de tinta, presiones y diámetros de boquilla18 ,19,20.
La porosidad y resistencia a la compresión de andamios regenerador de cartílago son propiedades importantes que dicta su eficiencia y rendimiento. Tamaño de poro desempeña un papel importante para la adhesión, diferenciación y proliferación de las células, así como para el intercambio de nutrientes y residuos metabólicos21. Sin embargo, no hay ningún tamaño de poro definido que puede ser considerado como un valor ideal, algunos estudios demostraron mayor bioactividad con poros más pequeños, mientras que otros mostraron mejor regeneración del cartílago con poros más grandes. Macroporos (< 500 μm) facilitan la mineralización del tejido, fuente de nutrientes y eliminación de desechos, mientras que microporos (150-250 μm) facilitan el accesorio de celular y mejores propiedades mecánicas22,23. El andamio implantado debe tener suficiente integridad mecánica desde los tiempos de manejo, implantación y hasta la realización de su propósito deseado. El módulo de compresión agregado para cartílago articular natural se divulga para estar en el rango de 0.1-2 MPa dependiendo de la edad, sexo y ubicación probado4,24,25,26,27 ,28,29.
En nuestro anterior trabajo11, impresión 3D se utilizó para fabricar bioscaffolds porosa de un reticulado doble compenetrados red de polímero (IPN) de una tinta de hidrogel que contiene CNCs reforzados en una matriz de alginato de sodio y gelatina. La vía de impresión 3D se ha optimizado para conseguir andamios 3D con las estructuras de poro uniforme y degradado (2.125 80 μm) donde nanocristales se orientan preferentemente en la dirección de la impresión (grado de orientación entre 61-76%). Aquí te presentamos la continuación de este trabajo y demuestra el efecto de la porosidad en las propiedades mecánicas de 3D impreso andamios de hidrogel en condición corporal simulado. CNCs utilizados aquí, antes informaron nos cytocompatible y no tóxico (es decir, crecimiento de la célula después de 15 días de incubación fue confirmado30). Por otra parte, andamios preparan mediante liofilización usando el mismo CNCs, alginato de sodio y gelatina demostraron alta porosidad, alta absorción de la solución salina buffer fosfato y cytocompatibility hacia las células madre mesenquimales5. El objetivo de este trabajo es demostrar el proceso de la tinta de hidrogel, impresión 3D de andamios porosos y la prueba de compresión. Esquemas de la ruta de procesamiento se muestra en la figura 1.

<table><tbody><tr><td>Jeringa de 60 mL</td><td>StructurImpresión 3D Sal</td><td></td><td></td></tr><tr><td>sódica de ácido algínico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>9005-38-3</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro de calcio anhidro</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>10043-52-4</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas, tres puntas, Talon</td><td>VWR</td><td>241-0404</td><td>102 mm, Pinza de ajuste doble, grande, extensión de abrazadera 127 mm</td></tr><tr><td>Cura 2.4.0</td><td>Ultimaker</td><td></td><td>Software de corte gratuito</td></tr><tr><td>Discov3ry</td><td>Estructura completaImpresión</td><td></td> 3D <td>Ultimaker 2+ Impresora 3D integrada con Discov3ry extrusora</td></tr><tr><td>de pasta Gelatina de piel de bovino</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>9000-70-8</td><td></td></tr><tr><td>Solución de glutaraldehído 50 % en peso en H2O</td><td>Homogeneizador Sigma-Aldrich</td><td>111-30-8</td><td></td></tr><tr><td></td><td>SPX</td><td>APV-2000</td><td></td></tr><tr><td>Instron 5960</td><td>Instron</td><td></td><td>Instron 5960, Baño Biopuls, célula de carga de 100 N, 37 & grados; </td></tr><tr><td>C,Physica MCR 301 reómetro</td><td>Anton Paar</td><td></td><td>CP25-2-SN7617, altura del espacio 0,05 mm, 25 & deg; C</td></tr><tr><td>Centrífuga Sorvall Lynx 6000</td><td>AB Ninolab</td><td>s/n 41881692</td><td>F12-rotor (6x500 ml)</td></tr><tr><td>boquilla de acero inoxidable</td><td>Structur3D Printing</td><td></td><td>800, 600 y 400 &micro; m</td></tr><tr><td>thingsinverse</td><td>MakerBot's</td><td></td><td>&nbsp; compartir y descargar cosas imprimibles en 3D en forma de archivos stl</td></tr><tr><td>ultra sonicación</td><td>Qsonica, LLC</td><td>Q500</td><td></td></tr><tr><td>Astillas de madera sin corteza</td><td>Abeto de Noruega (Picea abies)</td><td></td> <td>contenido de materia seca de 50&ndash; 55%</td></tr></tbody></table>

3d impreso celulosa poroso nanocompuesto hidrogel andamios

3D Printed Porous Cellulose Nanocomposite Hydrogel Scaffolds

Este trabajo muestra el uso de la impresión tridimensional (3D) para producir andamios porosos cúbicos usando tinta de hidrogel de nanocompuestos de celulosa, con propiedades mecánicas y estructura de poro controlado. Nanocristales de celulosa (CNCs, 69,62% peso) tinta de hidrogel basado con el matriz (alginato de sodio y gelatina) fue desarrollada y 3D impreso en andamios con estructura de poro uniforme y degradado (1.100 110 μm). Los andamios demostraron módulo de compresión en el rango de 0.20-0.45 MPa en simula condiciones en vivo (en agua destilada a 37 ° C). Los tamaños de poro y el módulo de compresión de los andamios 3D con los requisitos necesarios para los usos de la regeneración de cartílago. Este trabajo demuestra que la consistencia de la tinta puede ser controlada por la concentración de los precursores y porosidad puede ser controlada por el proceso de impresión 3D y a cambio de estos factores define la mecánica propiedades del 3D impresión poroso andamio de hidrogel. Por lo tanto, este método de proceso puede utilizarse para fabricar andamios estructuralmente y compositivamente modificado para requisitos particulares según las necesidades específicas de los pacientes.

CNCs base de nanocompuestos hidrogel tinta muestra un fuerte esquileo no newtonianos del adelgazamiento del comportamiento (figura 2a). La viscosidad aparente de 1.55 x 105 Pa.s a una velocidad de corte baja (0,001 s-1) cae en cinco órdenes de magnitud a un valor de 22,60 Pa.s a una velocidad de corte de 50 s-1 (≈50 s-1 siendo una tarifa del esquileo típica experimentada durante la impresión en 3D)31 . La ti...

Los tres pasos críticos de este protocolo son i) el desarrollo de la correcta composición y consistencia de la tinta de hidrogel de celulosa, ii) 3D impresión de andamios en vario poro estructuras con fidelidad de buena forma y dimensiones y iii) demostración de la propiedades mecánicas en condiciones simuladas de cuerpo para la regeneración del cartílago.

3D impreso celulosa poroso nanocompuesto hidrogel andamios

This work demonstrates the use of three-dimensional (3D) printing to produce porous cubic scaffolds using cellulose nanocomposite hydrogel ink, with ...

Este es el primer informe sobre andamios de hidrogel de nanocelulosa impresos en 3D donde tenemos una estructura de poro degradado y propiedades mecánicas para imitar las estructuras naturales como cartílago. Las dos principales ventajas de utilizar técnicas de impresión 3D son la personalización y la libertad de diseño. Eso abre una oportunidad ilimitada de fabricar nuevos e inexplorados diseños geométricos.Este protocolo es fácil de usar, y los recién llegados pueden reproducir fácilmente los resultados. La elección del software de corte y el movimiento de la boquilla tienen un impacto significativo en el producto final. Para empezar, preparar 40 mililitros de tinta de hidrogel mezclando 11% en peso CNC, 6% en peso alginato de sodio, y 12% en gelatina de peso en un recipiente.Calienta la mezcla a 40 grados Centígrados, y mezcla con una espátula hasta obtener una pasta suave. Transfiera la mezcla a una jeringa de 60 mililitros. A continuación, con la ayuda de una abrazadera mecánica, pasar la mezcla a través de una serie de boquillas con diferentes diámetros en otra jeringa de 60 mililitros.Repita el proceso hasta obtener filamentos extruidos suavemente de tinta de hidrogel. Centrifugar suavemente la jeringa llena de tinta de hidrogel a 4.000 g para eliminar el aire atrapado. En la tarjeta SD, seleccione los archivos guardados para los andamios de porosidad uniformes y degradados y comience a imprimir.Si es necesario, ajuste la velocidad y el caudal en consecuencia. Para cruzar el andamio después de completar la impresión 3D, agregue suavemente gotas de solución de cloruro de calcio del 3% en peso al andamio hasta que se moje por completo. Espera cinco minutos.Transfiera con mucho cuidado el andamio de la cama de la impresora a un recipiente de 50 mililitros lleno de una solución de cloruro de calcio de 3% en peso. Déjalo toda la noche. Lavar a fondo con agua destilada y transferir el andamio a un recipiente de 50 mililitros lleno de 3% en peso solución de glutaraldehído.Déjalo toda la noche. Lave bien y guarde el andamio impreso en 3D en agua destilada. Para las pruebas de compresión, llene el recipiente equipado con una placa base de compresión sumergible con dos litros de agua, e inicie el sistema de calefacción para alcanzar los 37 grados centígrados.Inicializar Bluehill Universal Software y configurar el método de prueba. Seleccione geometría de muestra rectangular y elija la opción para introducir cotas antes de probar cada muestra. Establezca la tasa de deformación en dos milímetros por minuto y el final del resultado como 80% de tensión compresiva junto con una fuerza de 90 newton.En la sección Medición, seleccione Fuerza, Desplazamiento, Tensión de compresión y Tensión compresiva. Elija la opción para exportar datos como archivos de texto para el trazado futuro. Establezca el punto de extensión cero utilizando los controles de jog para bajar la placa de cruceta lo más cerca posible de la placa base.Mida y registre las dimensiones de las muestras que se van a probar. Cuando la temperatura del agua alcance los 37 grados centígrados, coloque la muestra en la placa base. Asegure la muestra moviendo la placa de cruceta para que empiece a tocar la muestra.Mueva el baño de agua hacia arriba para que las placas con la muestra entre ellas se sumerjan en agua. Escriba el nombre y las dimensiones de la muestra e inicie la prueba. Una vez completada la prueba, primero mueva el baño de agua hacia abajo y, a continuación, levante la placa de cruceta.Retire la muestra y sus piezas, si las hay, limpie ambas placas y cargue una nueva muestra. Después de probar todas las muestras, exporte los datos sin procesar. Trazar la tensión de compresión frente a las curvas de tensión compresivas y determinar el módulo de tangente compresivo en valores de deformación unitaria de uno a 5% y de 25 a 30%tinta de hidrogel nanocompuesto basada en CNC muestra un fuerte comportamiento de adelgazamiento de cizallamiento no newtoniano con un cinco orden de magnitud de la viscosidad aparente.La tinta de hidrogel exhibe un comportamiento sólido viscoelástico, ya que el módulo de almacenamiento es un orden de magnitud mayor que el módulo de pérdida en baja tensión de cizallamiento. A bajas tasas de deformación unitaria del uno al 5%, el módulo de compresión es similar para todos los tipos de andamios porosos en comparación con el andamio de referencia sin porosidad, lo que demuestra que la naturaleza elástica de la tinta de hidrogel se conserva incluso en presencia de los macroporos. Sin embargo, a altas tasas de deformación unitaria de 25 a 30%, se obtiene el módulo más alto para el andamio de referencia sin porosidad.Tan pronto como el tamaño de los poros aumenta, el módulo disminuye debido a la disminución de la densidad, lo que indica la relación esperada entre la porosidad de los andamios y las propiedades mecánicas correspondientes. Además, el módulo compresivo de los andamios de hidrogel 3D aumenta a medida que aumenta la tasa de compresión, exhibiendo e imitando la viscoelasticidad de los tejidos naturales del cartílago. El flujo homogéneo y continuo de la tinta durante la impresión 3D son las cosas más importantes.Este método será utilizado por los investigadores para expandirse a otras áreas de aplicación mediante el uso de hidrogel de nanocelulosa como una plataforma imprimible 3D. Por ejemplo, ya hemos desarrollado híbridos a base de nanocelulosa para la liberación controlada de fármacos siguiendo el mismo procedimiento.

3d-printed-porous-cellulose-nanocomposite-hydrogel-scaffolds

Research

Investigación

JoVE Journal

Bioengineering

Bioingeniería

Un bioprinter se utilizó para crear hidrogeles modelado basado en un molde de sacrificio. El molde poloxámero se rellenó con un segundo hidrogel y luego se eluyó, dejando huecos que estaban llenos de una tercera hidrogel. Este método utiliza elución rápida y buena capacidad de impresión de poloxámero para generar arquitecturas complejas a partir de biopolímeros.

Impresión Moldes inversa termosensible para la Creación de modelado hidrogeles de dos componentes para el 3D de cultivo celular

Una bioimpresora cartesiana fue diseñada y fabricada para permitir la deposición de múltiples materiales en geometrías precisas y reproducibles, al tiempo que permite el control de factores ambientales. Utilizando la bioimpresora tridimensional, se pueden imprimir y reproducir fácilmente construcciones complejas y viables.

Viabilidad de Bioprinted celulares Construye El uso de un Tres Impresora cartesiana dispensador

Describimos la fabricación de láminas de hidrogel microestampadas utilizando un proceso simple, que se puede ensamblar y manipular de forma independiente. Utilizando estas láminas modulares de hidrogel, se puede generar un sencillo sistema de cultivo celular en 3D a macroescala con un microambiente celular controlado.

Construcción de Hojas modular de hidrogel para la arquitectura celular 3D a escala macro micropatterned

Este manuscrito presenta un protocolo detallado para la fabricación de una plataforma de cultivo de hepatocitos tridimensional emergente, el andamio de cristal coloidal invertido, y las técnicas concomitantes para evaluar el comportamiento de los hepatocitos. Los poros de tamaño controlable, la interconectividad y la capacidad de conjugar proteínas de la matriz extracelular con el andamio de poli(etilenglicol) (PEG) mejoran el rendimiento de las células Huh-7.5.

La fabricación de cristal invertida coloidal poli (etilenglicol) Andamios: Una célula Plataforma de cultivo tridimensional para ingeniería de tejidos de hígado

Aquí se presenta una configuración de bioimpresión tridimensional, núcleo/cáscara, fácil de usar, para la fabricación en un solo paso de andamios huecos, adecuado para la ingeniería de tejidos de estructuras vasculares y otras estructuras tubulares.

Andamios de impresión de núcleo/concha para la ingeniería de tejidos de estructuras tubulares

Este protocolo destaca un método para evaluar rápidamente la biocompatibilidad de una tinta de biomaterial de hidrogel compuesto de nanocelulosa cristalina (CNC)/agarosa con mastocitos derivados de la médula ósea de ratón en términos de viabilidad celular y expresión fenotípica de los receptores de la superficie celular, Kit (CD117) y receptor IgE de alta afinidad (FcεRI).

Fabricación de una tinta de biomaterial de agarosa incrustada en nanocelulosa cristalina para el cultivo de mastocitos derivados de la médula ósea

Las varillas de microgel con grupos reactivos complementarios se producen a través de microfluídica con la capacidad de interconectarse en solución acuosa. Los microgeles anisómetros se atascan y se entrelazan en construcciones estables con poros más grandes en comparación con los sistemas de base esférica. Los microgeles modificados con GRGDS-PC forman construcciones 3D macroporosas que se pueden utilizar para el cultivo celular.

Andamios 3D macroporosos interconectados de varillas de microgel

Este artículo describe los protocolos para la fabricación de microgel de metacriloilo de gelatina de alto rendimiento utilizando dispositivos microfluídicos, la conversión de microgeles en polvo resuspendible (micro-aerogeles), el ensamblaje químico de microgeles para formar andamios de hidrogel granular y el desarrollo de biotintas de hidrogel granular con microporosidad preservada para bioimpresión 3D.

Andamios de hidrogel granular de metacriloilo de gelatina: fabricación de microgel de alto rendimiento, liofilización, ensamblaje químico y bioimpresión 3D

Este trabajo describe un protocolo para la impresión 3D incrustada de forma libre de células madre neurales dentro de compuestos de matriz extracelular de partículas recibles autocurables. El protocolo permite el patrón programable de construcciones de tejido neural humano interconectadas con alta fidelidad.

Soporte compuesto de matriz extracelular de microgel para la impresión 3D integrada de construcciones neuronales humanas

Este estudio presenta un nuevo baño de suspensión de submicrogel de κ-carragenina, que muestra notables propiedades de transición reversibles de atasco-desatasco. Estos atributos contribuyen a la construcción de tejidos y órganos biomiméticos en bioimpresión 3D integrada. La impresión exitosa de tejidos similares al corazón y al esófago con alta resolución y crecimiento celular demuestra aplicaciones de bioimpresión e ingeniería de tejidos de alta calidad.

Bioimpresión integrada de estructuras similares a tejidos utilizando medio sub-microgel de κ-carragenina

Aprende a imprimir en 3D andamios de hidrogel nanocompuesto de celulosa con estructuras de poro gradiente que imitan las propiedades mecánicas del cartílago natural para ingeniería de tejidos.

3D impreso celulosa poroso nanocompuesto hidrogel andamios

Explorar más videos