Name: Un virus de la gripe Reportero fluorescente de Luciferase para imágenes en vivo y cuantificación de la infección viral (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-08-14T14:45:00.000+00:00
Duration: 5 min 21 s
Description: Aprende a utilizar el virus BIRFLU con doble reportero para rastrear infecciones por influenza A en ratones mediante imágenes bioluminiscentes y fluorescentes in vivo. Este método permite evaluar eficacia de antivirales.

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La investigación sobre el virus de la gripe en el laboratorio LM-S está parcialmente financiada por el Centro de Excelencia en La Gripe de Nueva York (NYICE) (NIH 272201400005C), miembro del contrato No de los Centros de Excelencia para la Investigación y Vigilancia de la Gripe (CEIRS) de NIAID. HHSN272201400005C (NYICE) y por el Programa de Investigación Médica Revisada por Pares (PRMRP) del Departamento de Defensa (DoD) otorgan W81XWH-18-1-0460.

Los autores no tienen nada que revelar.

Los investigadores han confiado en los virus recombinantes que expresan a los periodistas como herramientas moleculares vitales para comprender y ampliar la comprensión actual de la replicación viral y la patogénesis26,27,28, 29 , 30 , 31 , 32 , 33 , 34 , 35 , 36 , 37 , 38 , 39 , 40 , 41 , 54. Los genes de reportero más comúnmente favorecidos son las luciferas y las proteínas fluorescentes, principalmente debido a los avances tecnológicos en su identificación, desarrollo de variantes mejoradas y detección por tecnologías de imagen43 , 44 , 45 , 46 , 47 , 48. Los virus de reporteros recombinantes se utilizan a menudo para acelerar los ensayos virológicos, estudiar la dinámica de los virus in vitro e in vivo, y para probar la eficacia de las vacunas y enfoques terapéuticos actualmente aprobados o nuevos26, 27,28,29,30,31,32,33,34,35, 36,37,38,39,40,41,54. Desafortunadamente, en el caso de IAV, estudios anteriores se limitaron a la expresión de un gen de un solo reportero, lo que dificulta el tipo de estudio que se podía llevar a cabo 26,27,28,29 , 30 , 31 , 32 , 33 , 34 , 35 , 36 , 37 , 38 , 39 , 40 , 41 , 54. Para evitar esta limitación, hemos generado un IAV bi-reportero competente para la replicación que expresa una Nluc luciferasa y una proteína fluorescente Venus (BIRFLU).
En este informe, describimos la caracterización in vitro de BIRFLU y los enfoques experimentales para utilizar BIRFLU para realizar un seguimiento de la infección viral in vivo utilizando un modelo de ratón de infección por IAV. Expresión BIRFLU Nluc y Venus correlacionada con tituladores virales. Además, BIRFLU se mantuvo estable y continuó expresando ambos genes de reportero después de ser recuperados de los pulmones de ratones infectados. Este enfoque ofrece a los investigadores una excelente oportunidad para estudiar el IAV en células cultivadas y en modelos animales, incluyendo la identificación y desarrollo de nuevas alternativas terapéuticas para el tratamiento de infecciones por IAV.
Aunque BIRFLU se ha generado utilizando la columna vertebral de PR8, se podrían generar otros IAV recombinantes utilizando diferentes tipos, subtipos o cepas de tensión viral utilizando el mismo enfoque experimental. Asimismo, en este informe describimos los procedimientos experimentales para el uso de BIRFLU en un modelo de ratón de IAV. Sin embargo, BIRFLU podría ser una tecnología valiosa para evaluar la infección por IAV en otros modelos animales.

El virus de la gripe A (IAV) es un virus de ARN segmentado de sentido negativo de una sola cadena envuelto de la familia Orthomyxoviridae 1,2,3. La Organización Mundial de la Salud (OMS) estima entre 3 y 5 millones de casos anuales de gripe y más de 250.000 muertes por gripe en todo el mundo4,5,6. Los grupos que son particularmente vulnerables a la gripe incluyen ancianos, personas inmunodeprimidas y niñosde 7,8,9,10,11. Aunque las vacunas están disponibles y representan la intervención más común y eficaz contra la infección viral, iAV es capaz de evolucionar rápidamente y escapar de la inmunidad preexistente3,12,13, 14 , 15. La reaparición de una cepa pandémica H1N1 en 2009 y la aparición de IAV patógena reiteran la amenaza constante para la salud pública humana en todo el mundo4,16.
Durante una epidemia o pandemia, es crucial determinar rápidamente la patogenicidad y la transmisibilidad de los virus recién aislados. Las técnicas actualmente disponibles para detectar el virus consumen mucho tiempo y a veces requieren el uso de enfoques laboriosos, lo que puede retrasar la realización de estos análisis17,18,19,20. Además, los ensayos virales actuales son difíciles de ampliar, lo que podría ser necesario durante el caso de un brote. Por último, el uso de modelos animales validados de infección, como ratones, conejillos de indias y hurones, se utiliza de forma rutinaria y son vitales para estudiar las infecciones por gripe, las respuestas inmunitarias y la eficacia de nuevas vacunas y/o antivirales. Sin embargo, estos modelos son restrictivos debido a la incapacidad de observar la dinámica viral en tiempo real; esto limita los estudios a la toma de imágenes estáticas de infecciones virales21,22,23,24,25. Los animales utilizados en estos ensayos también son eutanasiados con el fin de determinar la carga viral, aumentando así el número de animales necesarios para completar estos estudios26. Para eludir todas estas limitaciones, muchos investigadores confían en el uso de IAV sordosas y con opiniones que expresan periodistas, que son capaces de acelerar los ensayos virológicos y detectar la carga viral y la diseminación in vivo en tiempo real26 ,27,28,29,30,31,32,33,34,35 ,36,37,38,39,40,41. Es importante destacar que estos IAV que expresan a los periodistas son capaces de replicarse de forma similar a los IAV de tipo salvaje (WT) en el cultivo celular y en modelos animales de infección33,42.
Las proteínas fluorescentes y bioluminiscentes son dos sistemas de reportero comúnmente utilizados por los investigadores debido a su sensibilidad, estabilidad y facilidad de uso. Además, hay un enorme apoyo y avance en las tecnologías de detección de proteínas fluorescentes y bioluminiscentes43,44,45,46,47,48 . Las proteínas fluorescentes y la luciferasa tienen diferentes propiedades que les permiten brillar, diferenciando específicamente en cómo se generan los estados excitados y cómo se detecta la emisión43,44,45, 46,47,48. Las proteínas fluorescentes se excitan primero absorbiendo la energía, que posteriormente se libera como luz en una longitud de onda diferente a medida que las moléculas disminuyen a un estado de energía más bajo43. Por otro lado, la bioluminiscencia se deriva de una reacción exotérmica química que implica un sustrato, oxígeno, y a veces ATP con el fin de producir la luz45. Debido a las diversas propiedades de estos dos tipos de proteínas de reportero, uno tal vez más ventajoso que el otro dependiendo del estudio de interés. Mientras que las proteínas fluorescentes se utilizan ampliamente para observar la localización celular28,41, sus señales in vivo tienen una intensidad inadecuada y a menudo se oscurecen por la autofluorescencia en los tejidos vivos49. Por lo tanto, los investigadores confían en las luciferasas para evaluar la dinámica viral en organismos vivos, aunque las proteínas fluorescentes pueden ser preferidas para estudios ex vivo50,51,52,53. A diferencia de las proteínas fluorescentes, las luciferases son más convenientes para estudios in vivo y más aplicables en enfoques no invasivos26,27,28,29,30 , 31 , 32 , 33 , 34 , 35 , 36 , 37 , 38 , 39 , 40 , 41 , 54. En última instancia, en función del tipo de estudio, los investigadores deben elegir entre el uso de una proteína fluorescente o una proteína de reportero de luciferasa como su lectura, que somete su estudio a un equilibrio de funcionalidades y sensibilidades, y severamente restringe la utilidad de los virus de reportero recombinante. Además, existen preocupaciones con respecto a la correlación entre la expresión de diferentes genes reporteros utilizando sistemas de fluorescencia o luciferasa y replicación o diseminación viral, lo que podría poner en peligro la interpretación de los datos obtenidos con iAVs que expresan a un reportero.
Hemos superado esta limitación generando un IAV bi-reportero competente para replicación recombinante (BIRFLU) que codifica tanto para un fluorescente como para una proteína luciferasa en el mismo genoma viral55 (Figura1). Aquí, NanoLuc luciferase (Nluc), una pequeña y brillante proteína bioluminiscente48,se insertó aguas arriba de la secuencia de hemaglutinina (HA) en el segmento viral HA de la gripe A/Puerto Rico/08/1934 H1N1 (PR8)24,33, 40,55,56,57. Además, Venus, una proteína fluorescente monomérica de uso frecuente, se insertó en el segmento viral no estructural (NS)32,33,36,41,55. Dado que BIRFLU codifica los genes de reportero fluorescentes y luciferasa, la señal de proteína del reportero se puede utilizar como lectura para determinar la replicación viral y la diseminación in vitro o in vivo55. Puede encontrar información adicional sobre la generación y la caracterización in vitro o in vivo de BIRFLU en nuestra reciente publicación55. BIRFLU se puede utilizar para probar la eficacia de los medicamentos antivirales o anticuerpos neutralizantes a través de un nuevo ensayo de microneutralización basado en fluorescentes y bioluminiscentes55. Por otra parte, BIRFLU también se puede utilizar para evaluar la dinámica viral en un modelo de ratón de infección55. En este manuscrito, describimos los procedimientos para caracterizar BIRFLU55 in vitro y cómo estudiar la infección BIRFLU en ratones utilizando sistemas de imágenes de luminiscencia in vivo para la detección de Nluc in vivo o de Venus ex vivo.
La combinación de técnicas de vanguardia en biología molecular, investigación animal y tecnologías de imagen, ofrece a los investigadores la oportunidad única de utilizar BIRFLU para la investigación de IAV, incluyendo el estudio de interacciones virus-huésped, dinámica de la infección viral; el desarrollo de nuevos enfoques vacunales para el tratamiento terapéutico de las infecciones por IAV o el posible uso de la IAV como vector de vacunapara el tratamiento de otras infecciones patógenas.

<table><tbody><tr><td>Placa de cultivo celular de 12 pocillos</td><td>Greiner Bio-one</td><td>665102</td><td></td></tr><tr><td>placa de cultivo celular de 24 pocillos</td><td>Greiner Bio-one</td><td>662160</td><td></td></tr><tr><td>Placa de cultivo celular de 6 pocillos</td><td>Greiner Bio-one</td><td>657160</td><td></td></tr><tr><td>Placa de cultivo celular de 96 pocillos</td><td>Greiner Bio-one</td><td>655-180</td><td></td></tr><tr><td>Adobe Photoshop CS4</td><td>Adobe</td><td></td><td>Este software se utiliza en 3.1.10 y 4.4.7</td></tr><tr><td>Solución de albúmina Bovin (BA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7409</td><td>Store a 4 & deg; C</td></tr><tr><td>Bovin Albúmina sérica (BSA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9647</td><td>Tienda en 4 &deg; </td></tr><tr><td>C Placas de cultivo de células 100mm</td><td>Greiner Bio-one</td><td>664-160</td><td></td></tr><tr><td>ChemiDoc MP Imaging System</td><td>BioRad</td><td></td><td>Este instrumento se utiliza en 4.4.7</td></tr><tr><td>Crystal Violet</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>C581-100</td><td>Almacenar a temperatura ambiente</td></tr><tr><td>Dounce Tissue Grinders</td><td>Thomas Scientific</td><td>7722-7</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco' Águila modificada' s medio (DMEM)</td><td>Corning Cellgro</td><td>15-013-CV</td><td>Tienda a 4 &deg; C</td></tr><tr><td>Suero Fetal Bovino (FBS)</td><td>Seradigm</td><td>1500-050</td><td>Tienda en -20 &deg; C</td></tr><tr><td>Ratones BALB/c hembra de 5 a 7 semanas de edad</td><td>Instituto Nacional del Cáncer (NCI)</td><td>555</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurano</td><td>Baxter</td><td>1001936040</td><td>Almacenar a temperatura ambiente</td></tr><tr><td>IVIS Spectrum</td><td>PerkinElmer</td><td>124262</td><td>Este instrumento se utiliza para la obtención de imágenes in vivo (4.2 y 4.3)</td></tr><tr><td>IX81 Microscopio invertido motorizado</td><td>Olympus</td><td>Olympus IX81</td><td></td></tr><tr><td>Living Image 4.7.2 software</td><td>PerkinElmer</td><td></td><td>Este instrumento se utiliza para la obtención de imágenes in vivo (4.2 y 4.3)</td></tr><tr><td>Lumicount</td><td>Packard</td><td></td><td>Este instrumento se utiliza para cuantificar la actividad de la luciferasa (3.2.6)</td></tr><tr><td>Células epiteliales del riñón canino Madin-Darby (MDCK)</td><td>ATCC</td><td>CCL-34</td><td></td></tr><tr><td>Anticuerpo monoclonal anti-NP Virus de la influenza A HB-65</td><td>ATCC</td><td>H16-L10-4R5</td><td>Almacene en -20 &deg; C</td></tr><tr><td>Reactivo de ensayo de luciferasa nano-Glo</td><td>Promega</td><td>N1110</td><td>Este reactivo se utiliza para medir la actividad de Nluc. Almacenar a -20 &deg; C</td></tr><tr><td>Formalina tamponada neutra 10%</td><td>EMD</td><td>65346-85</td><td>Almacene en RT</td></tr><tr><td>Nunc MicroWell MicroPlate de 96 pocillos</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>269620</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina/Estreptomicina (PS) 100x</td><td>Corning</td><td>30-00-CI</td><td>Almacene a -20 & grados; C</td></tr><tr><td>Penicilina/Estreptomicina/L-Glutamina (PSG) 100x</td><td>Corning</td><td>30-009-CI</td><td>Tienda en -20 &deg; C</td></tr><tr><td>Retiga 20000R Fast1394 Cámara</td><td>Qimaging</td><td>Retiga 2000R</td><td></td></tr><tr><td>Scanner</td><td>HP</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Texas Anticuerpos secundarios anti-conejo conjugados</td> en rojo <td>Jackson</td><td>715-075-150</td><td>Almacene en -20 &deg; C</td></tr><tr><td>Tosilsulfonil fenilalanil clorometilcetona tratada (TPCK) con tripsina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8802</td><td>Almacene en -20 & grados; C</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>J.T.Baker</td><td>X198-07</td><td>Tienda en RT</td></tr><tr><td>Vmax Lector de placas cinéticas</td><td>Molecular Devices</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

un virus de la gripe reportero fluorescente de luciferase para imágenes en vivo y cuantificación de la infección viral

A Luciferase-fluorescent Reporter Influenza Virus for Live Imaging and Quantification of Viral Infection

Los virus de la gripe A causan enfermedades respiratorias humanas que se asocian con consecuencias económicas y sanitarias significativas. Al igual que con otros virus, el estudio de la AIF requiere el uso de enfoques secundarios laboriosos para detectar la presencia del virus en células infectadas y/o en modelos animales de infección. Esta limitación se ha eludido recientemente con la generación de IAVs recombinantes que expresan proteínas de reportero fluorescentes o bioluminiscentes (luciferasa) fácilmente trazables. Sin embargo, los investigadores se han visto obligados a seleccionar genes de reportero fluorescentes o luciferasa debido a la capacidad restringida del genoma de IAV para incluir secuencias extranjeras. Para superar esta limitación, hemos generado un IAV bi-reportero (BIRFLU) de replicación recombinante que expresa fácilmente un gen fluorescente y un gen de reportero de luciferasa para rastrear fácilmente las infecciones por IAV in vitro e in vivo. Con este fin, se modificaron los segmentos virales no estructurales (NS) y hemaglutininas (HA) de la gripe A/Puerto Rico/8/34 H1N1 (PR8) para codificar la Venus fluorescente y las proteínas bioluminiscentes Nanoluc luciferasa, respectivamente. Aquí, describimos el uso de BIRFLU en un modelo de ratón de infección por IAV y la detección de ambos genes reporteros utilizando un sistema de imágenes in vivo. En particular, hemos observado una buena correlación entre las expresiones de los reporteros y la replicación viral. La combinación de técnicas de vanguardia en biología molecular, investigación animal y tecnologías de imagen, proporciona a los investigadores la oportunidad única de utilizar esta herramienta para la investigación de la gripe, incluyendo el estudio de las interacciones virus-huésped y la dinámica de infecciones virales. Es importante destacar que la viabilidad de alterar genéticamente el genoma viral para expresar dos genes extraños de diferentes segmentos virales abre oportunidades para utilizar este enfoque para: (i) el desarrollo de nuevas vacunas IAV, (ii) la generación de IAVs recombinantes que pueden utilizarse como vectores de vacunas para el tratamiento de otras infecciones por patógenos humanos.

Generación y caracterización de BIRFLU in vitro (Figura 1 y Figura 2)
Se construyó un IAV de replicación recombinante que expresaba dos genes de reportero diferentes (BIRFLU) utilizando técnicas de biología molecular y genética inversa basadas en plásmidos de última generación (Figura1). Aquí, elegimos utilizar Nluc debido a varias ventajas sobre otras luciferasas, incluyendo su pequeño tamaño, independencia ATP, mayor intensidad, y sustrato optimizado48,60. Nluc fue clonado en el segmento HA de IAV PR8 seguido del teschovirus porcino (PTV) 2A sitio de escisión (2A) delante del marco de lectura abierto (ORF) de HA (Figura 1). El ORF de HA incluía mutaciones silenciosas para eliminar las señales de embalaje originales y evitar cualquier posible recombinación. La señal de embalaje HA completa se añadió delante de Nluc para permitir la incorporación adecuada del segmento HA modificado en la expresión virión y Nluc y HA del mismo segmento de ARN viral (Figura1). Además, la proteína fluorescente Venus fue clonada en un segmento modificado IAV PR8 NS que codifica las dos proteínas virales NS1 y NEP de una sola transcripción32,36,41,54, 57. Con ese fin, Venus se fusionó con el Terminal C de NS1 y todo el ORF NEP fue clonado aguas abajo del sitio deescisión PTV 2A que se colocó entre las secuencias NS1-Venus y NEP (Figura 1). En última instancia, estas dos construcciones modificadas de plásmido viral HA y NS se utilizaron en combinación con el resto de los plásmidos de genética inversa IAV PR8 para generar BIRFLU (Figura1). La caracterización in vitro e in vivo de BIRFLU se ha descrito previamente55.
En la Figura2, caracterizamos birFLU in vitro determinando los niveles de expresión de Venus, Nluc y NP utilizando enfoques de fluorescencia e inmunofluorescencia indirecta (Figura 2A,B). Las monocapas confluentes de células MDCK fueron infectadas o infectadas por simulacros (MOI 0.1) con virus WT o BIRFLU PR8 y, a las 18 h después de la infección, la expresión de Venus se evaluó directamente mediante microscopía de fluorescencia (Figura2A,B). La expresión Nluc (Figura2A)y NP (Figura2B)se visualizó mediante inmunofluorescencia indirecta utilizando anticuerpos específicos para cada proteína. Como se preveía, la expresión de Venus y Nluc se detectó sólo en células infectadas por BIRFLU y no en células infectadas por el virus WT PR8. Además, la microscopía de inmunofluorescencia indirecta reveló la expresión NP en células infectadas por WT y BIRFLU PR8. No se detectó ninguna expresión de Venus, Nluc o NP, como se esperaba, en células infectadas simuladas (FiguraA,B).
Para evaluar los niveles de expresión de Nluc in vitro, las células MDCK se infectaron (MOI 0.001) con virus WT o BIRFLU PR8 y se evaluó la actividad de Nluc en los sobrenatos de cultivo tisular a 24, 48, 72 y 96 h después de la infección (Figura2C). Sólo se detectó actividad nluc en supernatantes de cultivo de tejido de células MDCK infectadas con BIRFLU (Figura2C). La actividad de Nluc en los sobrenatantes del cultivo tisular se detectó tan pronto como 24 h después de la infección con niveles más altos de expresión a 96 h después de la infección, probablemente porque el efecto citopático (CPE) inducido durante la infección viral libera la proteína Nluc retenida en la celda. Para evaluar la idoneidad de BIRFLU en células cultivadas, también se evaluó la cinética de crecimiento de los virus WT y BIRFLU PR8 (Figura 2D) y la presencia de virus infecciosos en los sobrenatos de cultivo de tejidos se determinó mediante un ensayo de enfoque inmune (Figura2D) ). En particular, la cinética de replicación de BIRFLU fue comparable a la del virus WT PR8, aunque la replicación de BIRFLU se retrasó ligeramente y no alcanzó los mismos lanzadores virales que EL WT PR8. Sin embargo, BIRFLU fue capaz de alcanzar lanzadores de 5 x 107 PFU/ml (Figura2D),lo que indica que la expresión de dos genes reporteros en el genoma viral no interfiere significativamente con la replicación de BIRFLU en células MDCK.
Seguimiento de la infección por BIRFLU en ratones(Figura3 y Figura 4)
La Figura 3 es un diagrama de flujo esquemático para la evaluación de la dinámica BIRFLU en un modelo de ratón de infección por IAV. Los ratones BALB/C de cinco a siete semanas de edad se infectaron simulados con 1 pbS o se infectaron con 1 x 106 PFU de BIRFLU por vía intranasal. A los 3 días después de la infección, los ratones fueron anestesiados con isoflurano y luego inyectados con sustrato de Nluc retro-orbitalmente. Todos los ratones se colocaron inmediatamente en el instrumento IVIS y la señal Nluc se evaluó in vivo utilizando el IVIS. A continuación, los ratones fueron eutanasiados y los pulmones fueron cosechados. Los pulmones extirpados fueron analizados ex vivo utilizando el imager in vivo para determinar la intensidad de la fluorescencia a través de la expresión de Venus. Por último, los pulmones de los ratones fueron homogeneizados, y los lanzadores virales y la estabilidad se determinaron mediante el ensayo de placa. Las placas fueron evaluadas por la fluorescencia directa de Venus, mediante inmunomancha utilizando anticuerpos específicos para Nluc y por tinción violeta cristalina.
Las iAV de expresión de reporteros competentes para la replicación anteriormente expresan un solo gen de reportero, con mayor frecuencia ya sea una proteína fluorescente o bioluminiscente, como sustituto de la infección viral y la replicación. Sin embargo, BIRFLU, es capaz de expresar ambos tipos de genes de reportero sobre la infección viral. Para evaluar la correlación entre la bioluminiscencia (imágenes in vivo) y la fluorescencia (imágenes ex vivo) después de la infección por BIRFLU, los ratones BALB/c hembras de cinco a siete semanas de edad se infectaron simuladas con 1 x PBS o se inocularon con BIRFLU (106 PFU) intranasalmente . La actividad de Nluc (Figura4A)se evaluó mediante la administración del sustrato de Nluc inyectado retroorbitalmente a los 3 días posteriores a la infección utilizando un instrumento de imagen in vivo. Elegimos evaluar la bioluminiscencia en el día 3 porque estudios anteriores indicaron que la replicación de IAV, incluyendo PR8, alcanza los picos entre los días 2 y 4 después de la infección24,54. Se monitorizó la bioluminiscencia (Figura4A,parte superior) y se utilizó para calcular el flujo total promedio (Flujo (log10 p/s) (Figura4A,inferior). Como se predijo, los ratones inoculados con BIRFLU mostraron una alta actividad de bioluminiscencia, pero no se detectó ninguna señal en ratones infectados por simulacros. A partir de entonces, se cosecharon los pulmones de los ratones infectados y se evaluó la expresión de Venus mediante imágenes ex vivo (Figura4B,superior). Además, se calculó la eficiencia radiante media de fluorescencia (Figura4B,inferior). Los pulmones de los ratones extirpados también se homogeneizaron paradeterminar los lanzadores virales y la estabilidad genética de BIRFLU in vivo (Figura 4C,D). La estabilidad genética de BIRFLU se analizó mediante el ensayo de placa utilizando los virus aislados de los pulmones de ratones y la microscopía fluorescente (Venus, superior), la inmunomancha (Nluc, medio) y la tinción violeta cristalina (abajo). BIRFLU recuperado de ratones pulmones fueron capaces de formar placas y expresa establemente ambos genes reportero (Figura4C). En particular, observamos una buena correlación entre la bioluminiscencia y las señales de fluorescencia con la replicación viral.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59890/59890fig1.jpg"> Figura 1: Representación esquemática de la estructura y los segmentos del genoma de la estructura y el genoma del IAV PR8 WT y BIRFLU. El IAV está rodeado por una bicapa lipídica que contiene las dos principales glicoproteínas virales hemagglutinina (HA; negro) y neuraminidasa (NA; azul). IAV contiene ocho segmentos de ARN de una sola cadena, sentido negativo(PB2, PB1, PA, HA, NP, NA, M y NS). Cada segmento viral contiene regiones no codificante (NCR) en los extremos de 3' y 5' (cajas negras). Además, en el extremo de 3' y 5' de los virales (v)RNA se encuentran las señales de embalaje, responsables de la encapidción eficiente de los ARNN en viriones nacientes (cajas blancas). Los segmentos y productos virales IAV PR8 HA y NS están indicados en negro. Las secuencias de Nluc, Venus y PTV 2A se indican en cajas rojas, verdes y rayadas, respectivamente. También se indica la representación esquemática de los segmentos HA y NS modificados que expresan Nluc y Venus, respectivamente, en BIRFLU. Esta figura ha sido adaptada de Nogales et al.55. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59890/59890fig1large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59890/59890fig2.jpg"> Figura 2: Caracterización in vitro de BIRFLU. (A, B) Análisis de la expresión proteica por fluorescencia directa e inmunofluorescencia. Las células MDCK se infectaron o infectaron (MOI 0.1) con virus PR8 WT o BIRFLU. Las células infectadas se fijaron a 18 h después de la infección para visualizar directamente la expresión de Venus mediante microscopía fluorescente directa y para visualizar la expresión Nluc (A) y VIRAL NP (B) utilizando anticuerpos específicos e inmunofluorescencia indirecta. Los núcleos se mancharon con DAPI. Se muestran imágenes representativas (aumento de 20x). Barras de escala a 100 m. (C, D) Cinética de crecimiento de PR8 WT y BIRFLU. La actividad Nluc (C) y los valoradores virales (D) en los sobrenatantes de cultivo de tejido de células MDCK infectadas (MOI 0.001) con los virus WT y BIRFLU PR8 se evaluaron en los momentos indicados después de la infección. Los datos representan los medios : SD de los triplicados. Los lanzadores virales fueron determinados por el ensayo de enfoque inmune (FFU/ml). La línea de puntos indica el límite de detección (200 FFU/ml). Esta figura ha sido adaptada de Nogales et al.55. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59890/59890fig2large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59890/59890fig3.jpg"> Figura 3: Representación esquemática para el estudio de BIRFLU en ratones. La expresión de los genes reporteros de Nluc y Venus se evaluó en ratones infectados con 1 x 106 PFU de BIRFLU utilizando imágenes in vivo o ex vivo. Brevemente, el día 1, 5 a 7 semanas de edad, los ratones hembra según las ratones BALB/c fueron infectados por simulacros (1x PBS) o inoculados con 1 x 106 PFU de BIRFLU por vía intranasal. En el día 3 después de la infección, los ratones fueron anestesiados levemente usando isoflurano y el sustrato de Nluc se inyectó retro-orbitalmente. La señal Nluc se evaluó directamente utilizando imágenes in vivo. Inmediatamente después de la toma de imágenes, los ratones fueron eutanasiados y la expresión de Venus en pulmones enteros extirpado fue analizada utilizando imágenes ex vivo. Los pulmones de ratones recuperados fueron homogeneizados para evaluar la replicación viral y la estabilidad mediante el ensayo de placa. Las flechas indican correlación entre fluorescencia (Venus), inmunomancha (Nluc) y tinción violeta cristalina. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59890/59890fig3large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59890/59890fig4.jpg"> Figura 4: Expresión de bioluminiscencia y fluorescencia in vivo. Los peratones hembras de BALB/c de cinco a siete semanas de edad fueron ininfectados (1x PBS) o inoculados con 1 x 106 PFU de BIRFLU por vía intranasal. En el día 3 después de la infección, se determinó la actividad de Nluc (A) en todo el ratón. Imágenes representativas de un solo ratón que muestra la escala de resplandor (p/seg/cm2/sr). Se cuantificaron los valores de resplandor de bioluminiscencia y se muestra el flujo total medio (Flujo (Log10 p/s). Después de la toma de imágenes de Nluc, se cosecharon los pulmones para obtener imágenes ex vivo (B). Se muestran imágenes representativas de pulmones enteros. Para cuantificar la expresión de Venus, se normalizaron los valores medios de las regiones de interés (ROI) a la autofluorescencia pulmonar de ratones infectados por burlas y se calcularon los cambios de pliegue. Para analizar la estabilidad genética de BIRFLU in vivo, los virus recuperados de los pulmones de ratones fueron analizados mediante ensayo de placa utilizando microscopía fluorescente (Venus, superior), inmunomanchado (Nluc, medio) y tinción violeta cristalina (abajo) (C). Se muestran imágenes representativas de un ratón. Para evaluar la replicación del virus, los pulmones enteros se homogeneizaron después de la toma de imágenes y se utilizaron para infectar las células MDCK y determinar los valoradores virales mediante el ensayo de placa (PFU/ml) (D). Las flechas indican correlación entre fluorescencia (Venus), inmunomancha (Nluc) y tinción violeta cristalina. Las barras representan la media de las tetas de los virus pulmonares. Esta figura ha sido adaptada de Logales et al.55. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59890/59890fig4large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Medios y soluciones de cultivo de tejidos</td>
			<td>Composición</td>
			<td>Almacenamiento</td>
			<td>Uso</td>
		</tr>
<tr>
<td>
Medios de cultivo de tejidos: El medio de eagle modificado de Dulbecco (DMEM), el suero de la vid fetal (FBS) del 10 % y el 1% de la penicilina-estreptomicina-L-glutamina (PSG)(DMEM 10 % FBS 1% PSG).</td>
			<td>445 ml DMEM, 50 mL de FBS y 5 mL de 100x PSG.</td>
			<td>4 oC</td>
			<td>Mantenimiento de células MDCK</td>
		</tr>
<tr>
<td>
Medios de posinfección: DMEM 0,3% albúmina bovina (BA), 1% PSG (DMEM 0,3 % BA 1% PSG).</td>
			<td>491 ml DMEM, 4,2 ml de 35 % BA y 5 ml de 100x PSG</td>
			<td>4 oC</td>
			<td>Mantenimiento de las células MDCK después de una infección viral</td>
		</tr>
<tr>
<td>10x Solución salina tamponada de fosfato (PBS)</td>
			<td>80 g de NaCl, 2 g de KCl, 11,5 g de Na2HPO4.7H2O, 2 g de KH2PO4. Añadir ddH2O hasta 1 L. Ajustar el pH a 7.3</td>
			<td>Temperatura ambiente</td>
			<td>Para preparar 1x PBS</td>
		</tr>
<tr>
<td>1x PBS</td>
			<td>Diluir 10pbS con ddH2O</td>
			<td>Temperatura ambiente</td>
			<td>Lavar las células</td>
		</tr>
<tr>
<td>
Medios de infección: 1x PBS, 0.3% BA, 1% Penicilina-Streptomicina (PS) (PBS/BA/PS).</td>
			<td>487 mL 1x PBS estéril, 4,2 ml de 35% BA y 5 ml de 100x 1% PS (100 U/mL)</td>
			<td>4 oC</td>
			<td>Infecciones virales</td>
		</tr>
<tr>
<td>
Solución de fijación/permeabilización: 4% formaldehído, 0,5% tritón X-100 diluido en 1pbS.</td>
			<td>400 ml de formalina tamponada neutra 10%, 5 ml de Triton X-100 y 595 mL de 1x PBS</td>
			<td>Temperatura ambiente</td>
			<td>Corrección y permeabilización de células MDCK.</td>
		</tr>
<tr>
<td>
Solución de bloqueo: 2.5% albúmina de suero bovino (BSA) en 1x PBS.</td>
			<td>2,5 g de BSA en 97,5 ml de 1pbS</td>
			<td>4 oC</td>
			<td>Solución de bloqueo para inmunofluorescencia y ensayos de placa.</td>
		</tr>
<tr>
<td>Solución de dilución de anticuerpos (1% BSA en 1x PBS)</td>
			<td>1 g de BSA en 99 mL de 1x PBS</td>
			<td>4 oC</td>
			<td>Dilución de anticuerpos primarios y secundarios.</td>
		</tr>
<tr>
<td>0.1% solución violeta cristalina</td>
			<td>1 g de cristal violeta en 400 ml de metanol. Añadir 600 ml de ddH2O</td>
			<td>Temperatura ambiente</td>
			<td>Manchado de células MDCK en ensayos de placa.</td>
		</tr>
<tr>
<td>Tosylsulfonyl phenylalanyl chloromethyl ketone (TPCK) -trató de trippsina</td>
			<td>Preparar una solución de stock de 1.000x a 1 mg/ml en ddH2O</td>
			<td>-20 oC</td>
			<td>Para infecciones virales.</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabla 1: Medios y soluciones de cultivo de tejidos.

Los virus de la gripe A son patógenos respiratorios contagiosos que causan epidemias anuales y pandemias ocasionales. Aquí, describimos un protocolo para rastrear infecciones virales in vivo usando una nueva luciferasa recombinante y bi-reportero expreso de fluorescencia IAV (BIRFLU). Este enfoque proporciona a los investigadores una excelente herramienta para estudiar IAV in vivo.

Un virus de la gripe Reportero fluorescente de Luciferase para imágenes en vivo y cuantificación de la infección viral

Influenza A viruses (IAVs) cause human respiratory disease that is associated with significant health and economic consequences. As with other viruses, ...

Los investigadores han generado previamente virus de la gripe recombinante que expresan reporteros de proteínas fluorescentes o bioluminiscentes. Parte de nuestra única expresión de genes reporteros en el virus de la gripe limita severamente su uso en experimentos. Nuestro protocolo describe el uso del virus de la gripe bireporterer que expresa genes de reporteros fluoresntes y bioluminiscentes, y por lo tanto supera su limitación.La principal ventaja de esta técnica es el uso de un único virus de la gripe recombinante para estudios in vitro e in vivo. Al realizar esta técnica, es importante la inyección rápida de sustrato de luciferasa y la planificación adecuada del manejo de ratones, ya que el sustrato se metaboliza rápidamente. Además, se recomienda el afeitado de ratones para mejorar la detección de señal bioluminiscente.Para infectar a los ratones, comience preparando el BIRFLU en 1X PBS. Mantener el virus sobre hielo hasta la inoculación. Compruebe la ausencia del reflejo de pellizcar del dedo del dedo para asegurarse de que el ratón está anestesiado, e inocularlo por vía intranasal con la dilución BIRFLU preparada.Asegúrese de que todos los ratones estén respirando correctamente antes de devolverlos a sus jaulas. Abra el software de imágenes y pulse Inicializar y, a continuación, establezca los parámetros que se utilizarán para la creación de imágenes. Para monitorear a los ratones infectados con BIRFLU, afeite su pecho para mejorar la detección de la señal bioluminiscente.Una vez que los ratones son anestesiados, utilice una aguja de calibre 22 para administrar retro-orbitalmente 100 microlitros de sustrato de Nluc luciferasa, diluidos de uno a 10 en PBS. Inmediatamente después de la inyección, coloque los animales en la cámara de aislamiento con el pecho hacia arriba. A continuación, coloque la cámara de aislamiento en el instrumento de imagen, cierre la puerta y adquiera imágenes.Después de la toma de imágenes, devuelva los ratones a sus jaulas y monitoríelos hasta que se hayan recuperado por completo. Utilice la herramienta de ROI del software de imágenes para analizar los datos de bioluminiscencia adquiridos designando una región de interés y haciendo clic en la medida. Para realizar imágenes ex vivo de los pulmones del ratón, recoja los pulmones de acuerdo con las instrucciones del manuscrito, inicie el software de adquisición de imágenes y establezca los parámetros para la toma de imágenes.Una vez inicializada la máquina, coloque los pulmones en una bandeja de fondo negra y asegúrese de que los tejidos estén separados entre sí. Introduzca la bandeja en el imager, cierre la puerta y adquiera imágenes. Después de la toma de imágenes, retire los tejidos inmediatamente y guárdelos en hielo a cuatro grados centígrados si las muestras se procesarán el mismo día.Si se procesan más tarde, congélalos rápidamente en un tubo sobre hielo seco y guárdelos a 80 grados centígrados. Para procesar las imágenes, seleccione la herramienta ROI, dibuje regiones de interés alrededor de cada uno de los pulmones individuales y haga clic en medir. BIRFLU se ha caracterizado in vitro por determinar los niveles de expresión de Venus, Nluc y NP en las células infectadas.La expresión Venus y Nluc sólo se detectan en células infectadas por BIRFLU, mientras que NP se expresa en células infectadas por PR8 de tipo salvaje y infectadas por BIRFLU. No se observa ninguna expresión en las células infectadas por simulacros. Además, la actividad de Nluc se ha medido en sobrenadantes de cultivo de tejidos a las 24, 48, 72 y 96 horas después de la infección.Se detecta tan pronto como 24 horas después de la infección, y los niveles de expresión aumentan a las 96 horas. También se puede demostrar que la cinética de replicación de BIRFLU es comparable al virus PR8 de tipo salvaje. BIRFLU tiene la capacidad de expresar genes de reporteros fluorescentes y bioluminiscentes, y la correlación entre los dos se puede evaluar utilizando imágenes in vivo y ex vivo de un pulmón de ratón.Los pulmones de ratones infectados con BIRFLU mostraron alta bioluminiscencia in vivo y fluorescencia ex vivo. También se han determinado los títulos virales y la estabilidad genética de BIRFLU in vivo. Los ensayos de placa en los virus de los pulmones de ratón mostraron que el virus puede formar placas y expresar ambos genes de los reporteros.BIRFLU también podría utilizarse para evaluar la eficacia de los anticuerpos antivirales y neutralizantes contra la gripe. La salida de estos ensayos se correlacionaron entre sí y son rápidas y fáciles de hacer.

a-luciferase-fluorescent-reporter-influenza-virus-for-live-imaging

Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Métodos para obtener imágenes de bioluminiscencia de las infecciones bacterianas en los animales vivos se describen. Los patógenos son modificadas para expresar luciferasa permitiendo imágenes ópticas de todo el cuerpo de las infecciones en los animales vivos. Los modelos animales pueden ser infectados con agentes patógenos que expresan luciferasa y el curso de la enfermedad como resultado visualizado en tiempo real de imágenes de bioluminiscencia.

Luciferasa utilizando a las infecciones bacterianas de la imagen en ratones

Este método describe el uso de infrarrojos sistema colorante formación de imágenes basada para la detección de H1N1 en bronquioalveolar lavado (BAL) de líquidos de los ratones infectados en una alta sensibilidad. Esta metodología se puede realizar en un 96 - o 384-así placa, requiere &lt;10 l de volumen material de prueba y tiene el potencial para el cribado simultáneo de múltiples patógenos.

De alto rendimiento Método de detección de virus de la influenza

Utilizando luciferasa y los sistemas de formación de imágenes in vivo (IVIS) como un nuevo medio para identificar las variables de enfermedad antes de los desarrollos clínicos ocurrir. IVIS nos ha permitido visualizar en tiempo real la invasión de los virus de encefalitis durante varios días, ofreciendo un modelo de enfermedad más preciso para el estudio futuro. También ha permitido identificar las características potenciales de protección de antivirales y vacunas más rápido que los modelos...

En Vivo Imaging Systems (IVIS) La detección de un virus invasor Neuro-encefálico

Source: Chang, X., et al. Preparation of Pseudo-Typed H5 Avian Influenza Viruses with Calcium Phosphate Transfection Method and Measurement of Antibody Neutralizing Activity. J. Vis. Exp. (2021).This video demonstrates a luciferase-based assay to quantify pseudovirus infection in epithelial cells. The pseudovirus encodes the luciferase gene, which is expressed in infected cells. After washing, and cells are incubated with lysis buffer at an ultra-low temperature, and then thawed to induce lysis.

Assessing Pseudovirus Infection Using Luciferase Reporter Assay

Fuente: Garcia, V., et al. Titulación de alto rendimiento de virus recombinantes que expresan luciferasa. J. Vis. Exp. (91), e51890, doi:10.3791/51890 (2014).Este video demuestra la preparación de muestras de cultivo celular para evaluar la carga viral utilizando un ensayo basado en luciferasa. Se describe el proceso de infectar células epiteliales con un virus modificado genéticamente, transferir sobrenadantes virales y estándares a los pocillos del ensayo, y favorecer la entrada viral...

Preparación de muestras para la cuantificación viral basada en luciferasa

Este video muestra un método para rastrear infecciones virales en modelos de ratón utilizando un virus de influenza A bi-reportero que expresa luciferasa y proteínas de fluorescencia. Este método permite realizar estudios tanto in vivo como ex vivo, lo que permite a los investigadores obtener información sobre la dinámica viral y los efectos de las intervenciones.

Un virus de la influenza indicador fluorescente de luciferasa para rastrear infecciones virales

Se describe el uso de un virus vaccinia reportero fluorescente que permite la medición en tiempo real de la infectividad viral y la expresión génica a través de la expresión de etapa específica de fluoróforos espectralmente distintos reportero. Nos detalle un método basado en la placa para identificar con precisión la etapa en la que la replicación del virus se ve afectada en respuesta a la inhibición pequeña molécula.

Vaccinia Virus Reporter para cuantificar la función viral en todas las etapas de la Expresión Génica

Este artículo presenta un método basado en la expresión de luciferasa de alto rendimiento para valorar varios virus de ARN y ADN utilizando manipuladores de líquidos automatizados y manuales.

De Alto Rendimiento La titulación de luciferasa que expresan virus recombinantes

Aquí se presenta un protocolo para un enfoque de imágenes de fluorescencia, multiplex immunofluorescent cell-based detection of DNA, RNA y protein (MICDDRP), un método capaz de la visualización simultánea de fluorescencia unicelular de proteínas virales y ácidos nucleicos de diferente tipo y varamiento. Este enfoque se puede aplicar a una amplia gama de sistemas.

Imágenes de fluorescencia multiplexada de una sola célula para visualizar ácidos nucleicos y proteínas virales y monitorear el VIH, el HTLV, el VHB, el VHC, el virus del Zika y la infección por influenza

Este protocolo describe la dinámica de las infecciones virales utilizando luciferasa y fluorescencia recombinante (r)SARS-CoV-2 y un sistema de imágenes in vivo (IVIS) en ratones transgénicos K18 hACE2 para superar la necesidad de enfoques secundarios necesarios para estudiar las infecciones por SARS-CoV-2 in vivo.

Imágenes en vivo y cuantificación de la infección viral en ratones transgénicos K18 hACE2 utilizando SARS-CoV-2 recombinante que expresa el reportero

Aprende a utilizar el virus BIRFLU con doble reportero para rastrear infecciones por influenza A en ratones mediante imágenes bioluminiscentes y fluorescentes in vivo. Este método permite evaluar eficacia de antivirales.

Un virus de la gripe Reportero fluorescente de Luciferase para imágenes en vivo y cuantificación de la infección viral

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