Name: Protocolos de Bioimpresión 3D de Bioinks basados en Gelatin Methacryloyl Hydrogel (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-12-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 25 s
Description: Aprende estrategias de bioimpresión 3D con hidrogeles de GelMA para aplicaciones biomédicas. Este método mejora la imprimibilidad y permite crear estructuras complejas para ingeniería tisular y terapia de daños orgánicos.

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Este trabajo fue patrocinado por el Programa Nacional De Investigación y Desarrollo Clave de China (2018YFA0703000), la National Nature Science Foundation of China (No.U1609207, 81827804), el Science Fund for Creative Research Groups of the National Natural Science Fundación China (No 51821093).

1. Cultivo celular
<ol><li>Preparar el medio de águila modificado de Dulbecco (DMEM), complementado con 10% suero bovino fetal (FBS) y 1% penicilina/estreptomicina, utilizado para cultivar líneas de células de cáncer de mama humana (MDA-MB-231) y líneas de células endoteliales de vena umbilical humana (HUVEC).</li>
	<li>Preparar DMEM con L-glutamina (DMEM/F-12), complementado con 10% FBS y 1% penicilina/estreptomicina, utilizado para cultivar líneas de células madre mesenquimales de médula ósea (BMSC).</li>
	<li>Establezca el entorno de cultivo en 37 oC y 5% de CO2. Cultivo MDA-MB-231, HUVEC y BMSC, y pasaje las celdas en una proporción de 1:2 cuando se alcanza la confluencia del 90%.</li>
</ol>2. Fabricación de microesferas GelMA
<ol><li>Imprima el accesorio como Figura 1A con ácido poliláctico (PLA) en una impresora de modelado de deposición fusionada (FDM). Coloque dos electrodos de anillo metálico en el accesorio.</li>
	<li>Conecte los dos electrodos de anillo metálico con polos de tierra y positivos, respectivamente. Coloque la placa de metal conectada con el alto voltaje por debajo del electrodo de anillo y coloque una placa Petri con aceite de silicio en la placa de metal como receptor de gotas.</li>
	<li>Disolver GelMA liofilizado (5% p/v) y litio fenilo-2,4,6-trimetilbenzoilfosfinato (LAP, 0,5% p/v) en la solución salina tamponada de fosfato de Dulbecco (DPBS) como biotinta (10 ml). Filtrar el biotinta a través de un filtro de 0,22 m para la esterilidad y calentarlo en un baño de agua de 37 oC durante 15 minutos.</li>
	<li>Separe las células MDA-MB-231 con 3 ml de solución EDTA de trippsina al 0,25% al 0,02% durante 3 min a 37 oC. Células centrífugas en un tubo centrífugo de 15 ml a 100 x g durante 5 min para obtener un pellet celular.</li>
	<li>Retire el sobrenadante. Mezclar el pellet celular con 1 ml de biotinta preparada pipetándolo lentamente para evitar la producción de burbujas.</li>
	<li>Coloque 1 ml de biotinta (MDA-MB-231) en una jeringa estéril de 3 ml. Alimentar el bioink por la fuerza del aire comprimido (0,5 kPa). Coloque la jeringa en el aparato. NOTA: El entorno de impresión debe controlarse estrictamente a una temperatura de 30 oC y una humedad del 50%.</li>
	<li>Encienda la potencia de alta tensión y ajuste la tensión como 0 x 4 kV. Simultáneamente, encienda la luz de longitud de onda de 405 nm para retiquejar las gotas GelMA en 5 ml de aceite de silicio.</li>
	<li>Vierta la mayor parte del aceite de silicio decantar el plato Petri. Transfiera el aceite de silicio restante y las microesferas GelMA en un tubo centrífugo de 15 ml usando una cuchara.</li>
	<li>Añadir 5 ml de DPBS y agitar la mezcla uniformemente. Centrifugar el tubo a 100 x g durante 5 min y retirar el líquido sobrenadante.</li>
	<li>Repita el paso 2.9 3x.</li>
	<li>Saca las microesferas GelMA con una cuchara y enmócelas en DMEM en un plato de Petri a 37oC y 5% co2 durante 3 días.</li>
	<li>Deseche el medio y lave las microesferas con DPBS. Arreglo con 2 ml de 4% de paraformaldehído (PFA) durante 30 min a temperatura ambiente (RT).</li>
	<li>Deseche el PFA y lave las microesferas con DPBS. Permeabilizar con 2 ml de tensioactivo no iónico 0,5% (es decir, Tritón X-100) durante 5 min a RT.</li>
	<li>Deseche el tensioactivo no iónico y lave las microesferas con DPBS. Mancharlos con 2 ml de tetrametilrhodamina (TRITC) faloideibida durante 30 minutos en oscuridad en RT.</li>
	<li>Deseche el TRITC y lave las microesferas con DPBS. Estañégalos con 2 ml de 4–,6-diamidino-2-fenilindolo (DAPI) durante 10 minutos en oscuridad en RT.</li>
	<li>Deseche la DAPI y lave las microesferas con DPBS. Capture la morfología con un microscopio de fluorescencia confocal.</li>
</ol>3. Fabricación de fibras GelMA
<ol><li>Prepare una boquilla coaxial como se muestra en la Figura 2A. Fijar una boquilla interna (25 G, OD a 510 m, ID a 250 m) y una boquilla exterior (18 G, OD a 1200 m, ID a 900 m) con soldadura. Conecte un tubo de vidrio (longitud de 50 mm, diámetro interior a 1,2 mm) al extremo de la boquilla coaxial.</li>
	<li>Disolver el polvo de alginato de sodio (Na-Alg) esterilizado bajo luz ultravioleta (UV) durante 30 minutos en agua desionizada al 2% (p/v).</li>
	<li>Prepare una solución de biotinta estéril siguiendo el paso 2.3. Calentar el bioink GelMA y la solución Na-Alg en un baño de agua de 37oC durante 15 min.</li>
	<li>Separe las células BMSC s con 3 ml de 0.25% de solución EDTA de trippsina-0.02% durante 3 min a 37 oC. Células centrífugas en un tubo centrífugo de 15 ml a 100 x g durante 5 min para obtener un pellet celular.</li>
	<li>Retire el líquido sobrenadante. Mezclar el pellet celular con 2 ml de biotinta GelMA preparada pipetándolo lentamente para evitar la producción de burbujas.</li>
	<li>Coloque 2 ml de biotinta (Bmc) en una jeringa de 10 ml. Coloque 2 ml de solución de Na-Alg en otra jeringa (10 ml). Alimentarlos con dos bombas de jeringa, respectivamente (aquí, biotinta a 50 m/min y solución de Na-Alg a 350 m/min). NOTA: El entorno de impresión debe controlarse estrictamente a una temperatura de 30 oC y una humedad del 50%.</li>
	<li>Encienda la luz de longitud de onda de 405 nm para irradiar el tubo transparente para retifichar las fibras GelMA. Utilice un plato de Petri con DPBS para recibir las fibras.</li>
	<li>Saque las fibras GelMA con una cuchara de DPBS y escenifique durante 3 días en el DMEM/F-12 preparado a 37oC y 5% CO2.</li>
	<li>Siga los pasos 2.12-2.16 para preparar las fibras GelMA para la observación morfológica con un microscopio de fluorescencia confocal.</li>
</ol>4. Fabricación de estructuras complejas 3D GelMA
NOTA: La Figura 3A muestra el boceto de fabricación de las complejas estructuras 3D GelMA.
<ol><li>Limpie la bioimpresora DLP(Figura 3E)con 75% de alcohol y expongala a la irradiación UV durante 30 minutos para la esterilidad.</li>
	<li>Disolver el GelMA liofilizado (10% p/v) y el REVESTIMIENTO (0,5% p/v) en DPBS. Añadir pigmento comestible magenta en la solución (3% v/v) para mejorar la precisión de impresión.</li>
	<li>Filtrar la solución a través de un filtro de 0,22 m para la esterilidad y calentarla en un baño de agua de 37 oC durante 15 minutos.</li>
	<li>Construya los modelos 3D con el software de diseño asistido por ordenador (CAD). Importe los documentos del modelo al software superior (EFL) de la bioimpresora DLP aplicada.</li>
	<li>Añadir 10 ml de biotinta preparada en la vaguada de la bioimpresora DLP.</li>
	<li>Establezca los parámetros de impresión en el software superior de la siguiente manera: intensidad de la luz: 12 mW/cm2, duración de la irradiación a 30 s y altura de la rebanada a 100 m. Comience a imprimir.</li>
	<li>Retire la estructura impresa de la bioimpresora y sumerjala en DPBS en una placa Petri.</li>
	<li>Separe las células MDA-MB-231s con 3 ml de solución EDTA de trippsina al 0,25% al 0,02% durante 3 min a 37 oC. Células centrífugas a 100 x g durante 5 min en un tubo de 15 ml para obtener un pellet celular.</li>
	<li>Retire el líquido sobrenadante y mezcle el pellet celular con 2 ml de DMEM.</li>
	<li>Añadir 100 l de suspensión celular en las estructuras impresas. Cultivarlos durante 3 días en el DMEM preparado a 37oC y 5% CO2.</li>
	<li>Siga los pasos 2.12-2.16 para preparar las complejas estructuras 3D para la observación morfológica con un microscopio de fluorescencia confocal.</li>
</ol>5. Fabricación de chips microfluídicos basados en GelMA
NOTA: La Figura 4A muestra el boceto de fabricación del chip microfluídico basado en GelMA.
<ol><li>Disolver el GelMA liofilizado 10% (p/v) y la LAP (0,5% p/v) en DPBS. Filtrar la solución gelMA a través de un filtro de 0,22 m para la esterilidad.</li>
	<li>Esterilice el polvo de gelatina bajo luz UV durante 30 min y agréguelo a la solución GelMA-LAP preparada en el paso 5.1 a una concentración final de gelatina del 5% (p/v). Calentar la mezcla en un baño de agua de 37oC durante 15 min.</li>
	<li>Diseñe un grupo de moldes(Figura 4B,C)con software CAD y fíjelos con resina de fotopolímero en una impresora DLP.</li>
	<li>Llene completamente los moldes con el biotinta preparado.</li>
	<li>Poner los moldes en un refrigerador de 4 oC para recruzar la gelatina durante 30 minutos.</li>
	<li>Retire los moldes y desmoldcon una cuchilla de las láminas de hidrogel reticuladas parcialmente (físicamente) de los moldes.</li>
	<li>Combine las dos láminas de hidrogel desmoldeadas y atérelas con la ayuda de GelMA irradiando a 405 nm durante 1 min.</li>
	<li>Separe las células HUVECs con 3 ml de solución EDTA de trippsina al 0,25% de trippsina-0,02% durante 3 min a 37 oC. Células centrífugas en un tubo centrífugo de 15 ml para obtener un pellet celular a 100 x g durante 5 min.</li>
	<li>Retire el líquido sobrenadante y mezcle el pellet celular con 2 ml de DMEM.</li>
	<li>Llene completamente el microcanal inyectando la suspensión celular con una boquilla y una jeringa.</li>
	<li>Voltee el chip al revés cada 15 minutos durante las siguientes 3 h para lograr una sembración de celda uniforme y completa. Cultivo de las patatas fritas en el plato Petri durante 3 días en el DMEM preparado a 37oC y 5% CO2.</li>
	<li>Siga los pasos 2.12-2.16 para preparar los chips microfluídicos para la observación morfológica con un microscopio de fluorescencia confocal.</li>
</ol>

<ol><li>Ahmed, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydrogel%3A+Preparation%2C+characterization%2C+and+applications%3A+A+review%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Advanced+Research%22%5BJournal%5D)">Hydrogel: Preparation, characterization, and applications: A review.</a> Journal of Advanced Research. 6 (2), 105-121 (2015).</li>
<li>Ashton, R. S., Banerjee, A., Punyani, S., Schaffer, D. V., Kane, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scaffolds+based+on+degradable+alginate+hydrogels+and+poly%28lactide-co-glycolide%29+microspheres+for+stem+cell+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Scaffolds based on degradable alginate hydrogels and poly(lactide-co-glycolide) microspheres for stem cell culture.</a> Biomaterials. 28 (36), 5518-5525 (2007).</li>
<li>Billiet, T., Vandenhaute, M., Schelfhout, J., Van Vlierberghe, S., Dubruel, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+review+of+trends+and+limitations+in+hydrogel-rapid+prototyping+for+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">A review of trends and limitations in hydrogel-rapid prototyping for tissue engineering.</a> Biomaterials. 33 (26), 6020-6041 (2012).</li>
<li>Saroia, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+review+on+biocompatibility+nature+of+hydrogels+with+3D+printing+techniques%2C+tissue+engineering+application+and+its+future+prospective%5BTitle%5D)+AND+%22Bio-Design+and+Manufacturing%22%5BJournal%5D)">A review on biocompatibility nature of hydrogels with 3D printing techniques, tissue engineering application and its future prospective.</a> Bio-Design and Manufacturing. 1 (4), 265-279 (2018).</li>
<li>Van Den Bulcke, A. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+and+Rheological+Properties+of+Methacrylamide+Modified+Gelatin+Hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Structural and Rheological Properties of Methacrylamide Modified Gelatin Hydrogels.</a> Biomacromolecules. 1 (1), 31-38 (2000).</li>
<li>Sun, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+and+Properties+of+Gelatin+Methacryloyl+%28GelMA%29+Hydrogels+and+Their+Recent+Applications+in+Load-Bearing+Tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Polymers%22%5BJournal%5D)">Synthesis and Properties of Gelatin Methacryloyl (GelMA) Hydrogels and Their Recent Applications in Load-Bearing Tissue.</a> Polymers. 10 (11), 1290(2018).</li>
<li>Gao, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+printing+of+complex+GelMA-based+scaffolds+with+nanoclay%5BTitle%5D)+AND+%22Biofabrication%22%5BJournal%5D)">3D printing of complex GelMA-based scaffolds with nanoclay.</a> Biofabrication. 11 (3), 035006(2019).</li>
<li>Hassanzadeh, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrastrong+and+flexible+hybrid+hydrogels+based+on+solution+self-assembly+of+chitin+nanofibers+in+gelatin+methacryloyl+%28GelMA%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Materials+Chemistry+B%22%5BJournal%5D)">Ultrastrong and flexible hybrid hydrogels based on solution self-assembly of chitin nanofibers in gelatin methacryloyl (GelMA).</a> Journal of Materials Chemistry B. 4 (15), 2539-2543 (2016).</li>
<li>McBeth, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+bioprinting+of+GelMA+scaffolds+triggers+mineral+deposition+by+primary+human+osteoblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Biofabrication%22%5BJournal%5D)">3D bioprinting of GelMA scaffolds triggers mineral deposition by primary human osteoblasts.</a> Biofabrication. 9 (1), 015009(2017).</li>
<li>Nie, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vessel-on-a-chip+with+Hydrogel-based+Microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22Small%22%5BJournal%5D)">Vessel-on-a-chip with Hydrogel-based Microfluidics.</a> Small. 14 (45), 1802368(2018).</li>
<li>Shao, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioprinting+of+Cell-Laden+Microfiber%3A+Can+It+Become+a+Standard+Product%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Healthcare+Materials%22%5BJournal%5D)">Bioprinting of Cell-Laden Microfiber: Can It Become a Standard Product.</a> Advanced Healthcare Materials. 8 (9), 1900014(2019).</li>
<li>Shao, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fiber-Based+Mini+Tissue+with+Morphology-Controllable+GelMA+Microfibers%5BTitle%5D)+AND+%22Small%22%5BJournal%5D)">Fiber-Based Mini Tissue with Morphology-Controllable GelMA Microfibers.</a> Small. 14 (44), 1802187(2018).</li>
<li>Xie, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electro-Assisted+Bioprinting+of+Low-Concentration+GelMA+Microdroplets%5BTitle%5D)+AND+%22Small%22%5BJournal%5D)">Electro-Assisted Bioprinting of Low-Concentration GelMA Microdroplets.</a> Small. 15 (4), 1804216(2019).</li>
<li>Yue, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis%2C+properties%2C+and+biomedical+applications+of+gelatin+methacryloyl+%28GelMA%29+hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Synthesis, properties, and biomedical applications of gelatin methacryloyl (GelMA) hydrogels.</a> Biomaterials. 73, 254-271 (2015).</li>
<li>Schuurman, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gelatin-Methacrylamide+Hydrogels+as+Potential+Biomaterials+for+Fabrication+of+Tissue-Engineered+Cartilage+Constructs%5BTitle%5D)+AND+%22Macromolecular+Bioscience%22%5BJournal%5D)">Gelatin-Methacrylamide Hydrogels as Potential Biomaterials for Fabrication of Tissue-Engineered Cartilage Constructs.</a> Macromolecular Bioscience. 13 (5), 551-561 (2013).</li>
<li>Barbot, A., Decanini, D., Hwang, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On-chip+Microfluidic+Multimodal+Swimmer+toward+3D+Navigation%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">On-chip Microfluidic Multimodal Swimmer toward 3D Navigation.</a> Scientific Reports. 6, 19041(2016).</li>
<li>Esmaeilsabzali, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+integrated+microfluidic+chip+for+immunomagnetic+detection+and+isolation+of+rare+prostate+cancer+cells+from+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Biomedical+Microdevices%22%5BJournal%5D)">An integrated microfluidic chip for immunomagnetic detection and isolation of rare prostate cancer cells from blood.</a> Biomedical Microdevices. 18 (1), 22(2016).</li>
<li>Lee, J. M., Zhang, M., Yeong, W. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+and+evaluation+of+3D+printed+microfluidic+chip+for+cell+processing%5BTitle%5D)+AND+%22Microfluidics+and+Nanofluidics%22%5BJournal%5D)">Characterization and evaluation of 3D printed microfluidic chip for cell processing.</a> Microfluidics and Nanofluidics. 20 (1), 5(2016).</li>
<li>Picot, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+biomimetic+microfluidic+chip+to+study+the+circulation+and+mechanical+retention+of+red+blood+cells+in+the+spleen%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Hematology%22%5BJournal%5D)">A biomimetic microfluidic chip to study the circulation and mechanical retention of red blood cells in the spleen.</a> American Journal of Hematology. 90 (4), 339-345 (2015).</li>
<li>Ren, K., Zhou, J., Wu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Materials+for+Microfluidic+Chip+Fabrication%5BTitle%5D)+AND+%22Accounts+of+Chemical+Research%22%5BJournal%5D)">Materials for Microfluidic Chip Fabrication.</a> Accounts of Chemical Research. 46 (11), 2396-2406 (2013).</li>
<li>Chen, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Covalently+antibacterial+alginate-chitosan+hydrogel+dressing+integrated+gelatin+microspheres+containing+tetracycline+hydrochloride+for+wound+healing%5BTitle%5D)+AND+%22Materials+Science+and+Engineering%3A+C%22%5BJournal%5D)">Covalently antibacterial alginate-chitosan hydrogel dressing integrated gelatin microspheres containing tetracycline hydrochloride for wound healing.</a> Materials Science and Engineering: C. 70, 287-295 (2017).</li>
<li>Fan, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Covalent+and+injectable+chitosan-chondroitin+sulfate+hydrogels+embedded+with+chitosan+microspheres+for+drug+delivery+and+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Materials+Science+and+Engineering%3A+C%22%5BJournal%5D)">Covalent and injectable chitosan-chondroitin sulfate hydrogels embedded with chitosan microspheres for drug delivery and tissue engineering.</a> Materials Science and Engineering: C. 71, 67-74 (2017).</li>
<li>Feng, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+black-pearl+reduced+graphene+oxide-sodium+alginate+hydrogel+microspheres+for+adsorbing+organic+pollutants%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Colloid+and+Interface+Science%22%5BJournal%5D)">Preparation of black-pearl reduced graphene oxide-sodium alginate hydrogel microspheres for adsorbing organic pollutants.</a> Journal of Colloid and Interface Science. 508, 387-395 (2017).</li>
<li>Park, K. S., Kim, C., Nam, J. O., Kang, S. M., Lee, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+and+characterization+of+thermosensitive+gelatin+hydrogel+microspheres+in+a+microfluidic+system%5BTitle%5D)+AND+%22Macromolecular+Research%22%5BJournal%5D)">Synthesis and characterization of thermosensitive gelatin hydrogel microspheres in a microfluidic system.</a> Macromolecular Research. 24 (6), 529-536 (2016).</li>
<li>Zheng, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Injectable+Hydrogel-Microsphere+Construct+with+Sequential+Degradation+for+Locally+Synergistic+Chemotherapy%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Applied+Materials%2C+Interfaces%22%5BJournal%5D)">Injectable Hydrogel-Microsphere Construct with Sequential Degradation for Locally Synergistic Chemotherapy.</a> ACS Applied Materials, Interfaces. 9 (4), 3487-3496 (2017).</li>
<li>Fernández de la Mora, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Fluid+Dynamics+of+Taylor+Cones%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Fluid+Mechanics%22%5BJournal%5D)">The Fluid Dynamics of Taylor Cones.</a> Annual Review of Fluid Mechanics. 39 (1), 217-243 (2006).</li>
<li>Hsiao, A. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Smooth+muscle-like+tissue+constructs+with+circumferentially+oriented+cells+formed+by+the+cell+fiber+technology%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Smooth muscle-like tissue constructs with circumferentially oriented cells formed by the cell fiber technology.</a> PLoS ONE. 10, 0119010(2015).</li>
<li>Meng, Z. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+generation+of+hollow+Ca-alginate+microfibers%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Microfluidic generation of hollow Ca-alginate microfibers.</a> Lab on a Chip. 16 (14), 2673-2681 (2016).</li>
<li>Peng, L., Liu, Y., Gong, J., Zhang, K., Ma, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continuous+fabrication+of+multi-stimuli+responsive+graphene+oxide+composite+hydrogel+fibres+by+microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22RSC+Advances%22%5BJournal%5D)">Continuous fabrication of multi-stimuli responsive graphene oxide composite hydrogel fibres by microfluidics.</a> RSC Advances. 7 (31), 19243-19249 (2017).</li>
<li>Sugimoto, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropassage-embedding+composite+hydrogel+fibers+enable+quantitative+evaluation+of+cancer+cell+invasion+under+3D+coculture+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Micropassage-embedding composite hydrogel fibers enable quantitative evaluation of cancer cell invasion under 3D coculture conditions.</a> Lab on a Chip. 18 (9), 1378-1387 (2018).</li>
<li>Yamada, M., Sugaya, S., Naganuma, Y., Seki, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+synthesis+of+chemically+and+physically+anisotropic+hydrogel+microfibers+for+guided+cell+growth+and+networking%5BTitle%5D)+AND+%22Soft+Matter%22%5BJournal%5D)">Microfluidic synthesis of chemically and physically anisotropic hydrogel microfibers for guided cell growth and networking.</a> Soft Matter. 8 (11), 3122-3130 (2012).</li>
<li>Gao, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+engineered+bio-blood-vessels+constructed+using+a+tissue-specific+bioink+and+3D+coaxial+cell+printing+technique%3A+a+novel+therapy+for+ischemic+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Functional+Materials%22%5BJournal%5D)">Tissue engineered bio-blood-vessels constructed using a tissue-specific bioink and 3D coaxial cell printing technique: a novel therapy for ischemic disease.</a> Advanced Functional Materials. 27 (33), 1700798(2017).</li>
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Los autores no tienen nada que revelar.

Este artículo describe varias estrategias para fabricar estructuras GelMA 3D, a saber, microesferas GelMA, fibras GelMA, estructuras complejas GelMA y chips microfluídicos basados en GelMA. GelMA tiene una capacidad de biocompatibilidad y formación prometedora y es ampliamente utilizado en el campo de la biofabricación. Las estructuras de la microesfera son adecuadas para la liberación controlada de fármacos, el cultivo de tejidos y la inyección en organismos para la terapia posterior21,</sup...

Se cree que los hidrogeles son un material adecuado en el campo de la biofabricación1,2,3,4. Entre ellos, la gelatina de metacriloyl (GelMA) se ha convertido en uno de los biomateriales más versátiles, propuesto inicialmente en 2000 por Van Den Bulcke et al.5. GelMA se sintetiza por la reacción directa de gelatina con anhídrido metacrílico (MA). La gelatina, hidrolizada por el colágeno mamífero, se compone de motivos diana de la matriz metaloproteinasa (MMP). Por lo tanto, los modelos de tejido tridimensional in vitro (3D) establecidos por GelMA pueden imitar idealmente las interacciones entre las células y la matriz extracelular (ECM) in vivo. Además, secuencias de ácido arginina-glicina-aspártico (RGD), que están ausentes en algunos otros hidrogeles como alginatos, permanecen en las cadenas moleculares de GelMA. Esto hace posible la fijación de células encapsuladas dentro de las redes de hidrogel6. Además, la capacidad de formación de GelMA es prometedora. Los grupos de metacrilamida en las cadenas moleculares GelMA reaccionan con el fotoiniciador en condiciones de reacción leves y forman enlaces covalentes al exponerse a la irradiación de luz. Por lo tanto, las estructuras impresas se pueden recruzar rápidamente para mantener las formas diseñadas de una manera sencilla.
Sobre la base de estas propiedades, una serie de campos utilizan GelMA para llevar a cabo diversas aplicaciones, tales como ingeniería de tejidos, análisis de citología básica, detección de drogas, y el bioensing. En consecuencia, también se han demostrado varias estrategias de fabricación7,8,9,10,11,12,13,14. Sin embargo, sigue siendo difícil llevar a cabo la bioimpresión 3D basada en GelMA, que se debe a sus propiedades fundamentales. GelMA es un material sensible a la temperatura. Durante el proceso de impresión, la temperatura de la atmósfera de impresión debe ser estrictamente controlada para mantener el estado físico del biotinta. Además, la viscosidad de GelMA es generalmente menor que otros hidrogeles comunes (es decir, alginato, quitosano, ácido hialurónico, etc.). Sin embargo, otros obstáculos se enfrentan al construir arquitecturas 3D con este material15.
Este artículo resume varios enfoques para la bioimpresión 3D de GelMA propuestos por nuestro laboratorio y describe las muestras impresas (es decir, la síntesis de microesferas GelMA, fibras GelMA, estructuras complejas de GelMA y chips microfluídicos basados en GelMA). Cada método tiene funciones especializadas y se puede adoptar en diferentes situaciones con diferentes requisitos. Las microesferas GelMA son generadas por un módulo electroasistido, que forma una fuerza eléctrica externa adicional para reducir el tamaño de las gotas. En términos de fibras GelMA, son extruidas por una boquilla de bioimpresión coaxial con la ayuda de alginato de sodio viscoso. Además, el establecimiento de estructuras 3D complejas se logra con una bioimpresora de procesamiento de luz digital (DLP). Por último, se propone una estrategia de reticulación dos veces para construir chips microfluídicos basados en GelMA, combinando hidrogel GelMA y chips microfluídicos tradicionales. Se cree que este protocolo es un resumen significativo de las estrategias de bioimpresión GelMA utilizadas en nuestro laboratorio y puede inspirar a otros investigadores en campos relativos.

<table><tbody><tr><td>0,22 y mu; membrana de filtro m</td><td>Millipore</td><td></td><td></td></tr><tr><td>2-(4-amidinofenil)-6-indolcarbamidina diclorhidrato (DAPI)</td><td>Yeasen Biological Technology Co., Ltd., Shanghái, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bioimpresora 3D</td><td>Instituto de Investigación de Fabricación Inteligente de SuZhou, SuZhou, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Luz de longitud de onda de 405 nm</td><td>Instituto de Investigación de Fabricación Inteligente de SuZhou, SuZhou, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>boquilla coaxial</td><td>SuZhou Instituto de Investigación de Fabricación Inteligente, SuZhou, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>microscopio de fluorescencia confocal</td><td>OLYMPUS FV3000</td><td></td><td></td></tr><tr><td>bioimpresora de procesamiento digital de luz (DLP)</td><td>SuZhou Instituto de Investigación de Fabricación Inteligente, SuZhou, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Impresora DLP</td><td>SuZhou Instituto de Investigación de Fabricación Inteligente, SuZhou, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Solución salina tamponada con fosfato de Dulbecco (DPBS)</td><td>Tangpu Biological Technology Co., Ltd., Hangzhou, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Medio de águila modificado de Dulbecco (DMEM)</td><td>Tangpu Biological Technology Co., Ltd., Hangzhou, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Medio de águila modificado de Dulbecco con L-glutamina (DMEM/F-12)</td><td>Tangpu Biological Technology Co., Ltd., Hangzhou, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>EFL Software</td><td>SuZhou Instituto de Investigación de Fabricación Inteligente, SuZhou, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>suero fetal bovino (FBS)</td><td>Tangpu Biological Technology Co., Ltd., Hangzhou, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>gelatina</td><td>Sigma-Aldrich, Shanghai, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>gelatina metacriloyl (GelMA)</td><td>SuZhou Instituto de Investigación de Fabricación Inteligente, SuZhou, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>energía de alto voltaje</td><td>Instituto de Investigación de Fabricación Inteligente de SuZhou, SuZhou, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>litio fenil-2, 4, 6-trimetilbenzoilfosfinato (LAP)Instituto de</td> <td>Investigación de Fabricación Inteligente de SuZhou, SuZhou, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>paraformaldehído Tangpu</td><td>Biological Technology Co., Ltd., Hangzhou, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>penicilina/estreptomicina</td><td>Tangpu Biological Technology Co., Ltd., Hangzhou, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>alginato de sodio (Na-Alg)</td><td>Sigma-Aldrich, Shanghai, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>TRITC phalloidin</td><td>Yeasen Biological Technology Co., Ltd., Shanghai, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Solarbio Co., Ltd., Shanghai, China</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

protocolos de bioimpresión 3d de bioinks basados en gelatin methacryloyl hydrogel

Protocols of 3D Bioprinting of Gelatin Methacryloyl Hydrogel Based Bioinks

Gelatin methacryloyl (GelMA) se ha convertido en un biomaterial popular en el campo de la bioimpresión. La derivación de este material es gelatina, que se hidroliza a partir de colágeno de mamíferos. Por lo tanto, las secuencias de ácido arginina-glicina-aspártico (RGD) y los motivos diana de la matriz metaloproteinasa (MMP) permanecen en las cadenas moleculares, que ayudan a lograr la unión celular y la degradación. Además, las propiedades de formación de GelMA son versátiles. Los grupos de metacrilamida permiten que un material se retrete rápidamente bajo la irradiación de luz en presencia de un fotoiniciador. Por lo tanto, tiene mucho sentido establecer métodos adecuados para sintetizar estructuras tridimensionales (3D) con este material prometedor. Sin embargo, su baja viscosidad restringe la imprimibilidad de GelMA. Aquí se presentan métodos para llevar a cabo la bioimpresión 3D de hidrogeles GelMA, a saber, la fabricación de microesferas GelMA, fibras GelMA, estructuras complejas GelMA y chips microfluídicos basados en GelMA. Se discuten las estructuras resultantes y la biocompatibilidad de los materiales, así como los métodos de impresión. Se cree que este protocolo puede servir de puente entre los biomateriales aplicados previamente y GelMA, así como contribuir al establecimiento de arquitecturas 3D basadas en GelMA para aplicaciones biomédicas.

Durante la fabricación de microesferas GelMA, las gotas GelMA fueron separadas por la fuerza de campo eléctrico externa. Cuando las gotas cayeron en el aceite de silicio receptor, permanecieron en forma de esferoides estándar sin colas. Esto se debe a que las gotas GelMA estaban en una fase acuosa, mientras que el aceite de silicio estaba en una fase de aceite. La tensión superficial que se formó entre las dos fases hizo que las gotas GelMA mantuvieran una forma esferoide estándar. En cuanto a las microesferas cargadas d...

Aquí se presenta un método para la bioimpresión 3D de gelatina metacriloyl.

Protocolos de Bioimpresión 3D de Bioinks basados en Gelatin Methacryloyl Hydrogel

Gelatin methacryloyl (GelMA) has become a popular biomaterial in the field of bioprinting. The derivation of this material is gelatin, which is hydrolyzed ...

La biónica a base de hidrogel GelMA se vuelve muy popular en la bioimpresión 3D. Sin embargo, la baja viscosidad restringe su imprenta. Aquí compartimos estrategias para imprimir GelMA en nuestro laboratorio con otros investigadores.En este vídeo utilizamos plenamente las propiedades especiales de este biomaterial y proponemos varios métodos de impresión para diferentes estructuras 3D que podrían contribuir a otras aplicaciones biomédicas. Para tomar daño a los órganos, por ejemplo, las implicaciones son potenciales para ser utilizados en la terapia correspondiente mediante la inserción o el rastreo de las estructuras impresas gelMA. No sería fácil disolver totalmente el GelMA liofilado en poco tiempo.Para acelerar el proceso de disolución se podría utilizar un mezclador de vórtice. Cada biomaterial utilizará propiedades especiales íntimas de GelMA. Sugerí que una nueva farmacia debería dar un paseo por lo que está condicionado crítico al imprimir.Los detalles de la operación determinan el éxito de los procedimientos de impresión. Es por eso que elegimos una demostración visual para compartir con otros investigadores. Para fabricar microesferas comiencen conectando los dos electrodos de anillo metálico con polos de tierra y positivos.Coloque la placa metálica conectada con el alto voltaje debajo del electrodo de anillo y una placa Petri con aceite de silicio en la placa de metal como receptor de gotas. Prepare la bio-tinta disolviendo GelMA y LAP liofilados y DPBS filtre a través de un filtro de 0,22 micrómetros para la esterilidad y luego calientela en un baño de agua de 37 grados Celsius durante 15 minutos. Separe las células MDA-MB-231 con tres mililitros de 0.25 por ciento de trippsina y 0.02 por ciento solución EDTA durante tres minutos a 37 grados Celsius.Transfiera las células a un tubo de 15 mililitros y centrifugarlas a 100 veces G durante cinco minutos. Retire el sobrenadante y mezcle las células con un mililitro de tinta biológica preparada pipeteando lentamente hacia arriba y hacia abajo asegurándose de evitar las burbujas de aire. Aspirar un mililitro de la bio-tinta y la mezcla celular en una jeringa estéril de tres mililitros.Alimente la bio-tinta por la fuerza del aire comprimido y coloque la jeringa en el aparato. Encienda la potencia de alta tensión y ajuste la tensión como cero a cuatro kilovoltas. Encienda simultáneamente la luz de longitud de onda de 405 nanómetros para cruzar las gotas GelMA en cinco mililitros de aceite de silicio.Decantar el plato Petri para deshacerse de la mayor parte del aceite de silicio y utilizar una cuchara para transferir el aceite restante y microesferas en un tubo centrífugo de 15 mililitros. Añadir cinco mililitros de DPBS y agitar la mezcla centrifugar el tubo a 100 veces G y quitar el sobrenadante. Transfiera las microesferas a un plato Petri con DMEM y escúbralas a 37 grados centígrados y cinco por ciento de dióxido de carbono durante tres días.Después de tres días desechar el medio y lavar las microesferas con DPBS. Fijarlos con dos mililitros de cuatro por ciento PFA durante 30 minutos a temperatura ambiente y luego desechar el PFA y repetir el lavado. Permeabilizar las células con dos mililitros de 0.5 por ciento tensioactivo no iónico durante cinco minutos a temperatura ambiente desechar el surfactante y lavar las microesferas con DPBS.A continuación, manchar las células con TRITC-faloideína durante 30 minutos y luego DAPI durante 10 minutos en la oscuridad descartando los tintes y lavando las esferas con DPBS después de cada tinción. Imagen de las microesferas con un microscopio de fluorescencia confocal. Disuelva el polvo de alginato de sodio esterilizado en agua desionizada a una relación de peso a volumen del dos por ciento.Preparar la solución de bio-tinta estéril como se describió anteriormente y luego calentar la bio-tinta y el alginato de sodio en un baño de agua de 37 grados Celsius durante 15 minutos. Trypsinize y centrifugar bMSC de acuerdo con el procedimiento descrito anteriormente para las células MDA-MB 231 y luego eliminar el líquido sobrenadante y resuspender el pellet celular con 2 mililitros de la bio-tinta GelMA. Aspirar dos mililitros de la mezcla de células de bio tinta en una jeringa de 10 mililitros y dos mililitros de la mezcla de alginato de sodio en otra jeringa.Alimente las soluciones con dos bombas de jeringa bio tinta a 50 micrómetros por minuto y alginato de sodio a 350 micrómetros por minuto. Encienda la luz de longitud de onda de 405 nanómetros para irradiar el tubo transparente y reentraer las fibras GelMA. Usa un plato de Petri para recibir las fibras y recogerlas con una cuchara.Transfiera las fibras a un plato con DMEM/F12 y escúbralas durante tres días a 37 grados centígrados y cinco por ciento de dióxido de carbono. Después de cultivar las células siguen las instrucciones previamente descritas para observar las fibras bajo un microscopio de fluorescencia confocal. Disuelva GelMA y LAP y DPBS liofilados y añada pigmento comestible magenta en la solución para mejorar la precisión de impresión.Filtrar la solución a través de un filtro de 0,22 micrómetros para la esterilidad y calentarla en un baño de agua Celsius de 37 grados durante 15 minutos. Cree los modelos 3D con el software CAD e importe los documentos del modelo al software superior de la bioimpresora DLP aplicada. Añadir diez mililitros de la bio-tinta preparada a la vaguada de la bioimpresora.Establezca los parámetros de impresión de acuerdo con las instrucciones del manuscrito y, a continuación, comience a imprimir. Cuando esté completo, retire la estructura impresa de la bioimpresora y sumerjala en DPBS en un plato Petri. Separe y pelete las células MDA-MB 231 como se describió anteriormente.Resuspenderlos con dos mililitros de DMEM y añadir la suspensión a la estructura impresa. Cultivo de las células a 37 grados Celsius y cinco por ciento de dióxido de carbono durante tres días y luego preparar las estructuras para la observación con un microscopio de fluorescencia confocal como se describió anteriormente. Prepare un peso del 10 por ciento para volar GelMA y una solución laP de 0.5 por ciento de peso a volumen y luego filtre a través de un filtro de 0,22 micrómetros.Esterilice el polvo de gelatina bajo la luz UV durante 30 minutos y agréguelo a la solución laP de GelMA a una relación peso-volumen del cinco por ciento. Calienta la mezcla en un baño de agua de 37 grados centígrados durante 15 minutos. Llene los moldes con la tinta biológica preparada y colóquelos en un refrigerador de cuatro grados Centígrados durante 30 minutos.Utilice una cuchilla para retirar las láminas de hidrogel parcialmente reticuladas de los moldes. Combine láminas de hidrogel moldeada en 2D y vinú las con GelMA irradiando a 405 nanómetros durante un minuto. Separar y peletizar los HUVEC mezclan las células con dos mililitros de DMEM e inyectan la suspensión en el microcanal con la boquilla y la jeringa.Durante las siguientes tres horas, voltee el chip al revés cada 15 minutos para lograr asientos de celda uniformes y completos. Cultivar las virutas en un plato de Petri durante tres días en DMEM a 37 grados Celsius y cinco por ciento de dióxido de carbono y luego prepararlos para la observación morfológica. Cuando las gotas De GelMA cayeron en el aceite de silicona receptora mantuvieron una forma de esferoide estándar sin colas.Las células encapsuladas que experimentaban la fuerza de campo eléctrico de alto voltaje mantuvieron su capacidad de propagación que verificó la biocompatibilidad del método de fabricación electro-asistida. Una bio impresora DLP fue elegida para fabricar estructuras GelMA con formas más complejas como la oreja nasal y la cámara múltiple. HUVECs de semillas unidos a los materiales GelMA y esparcidos en la superficie de las estructuras GelMA reticuladas demostrando que esta aplicación tiene potencial para la ingeniería de tejidos.Se utilizó una estrategia de reticulación dos veces para fabricar chips microfluídicos basados en GelMA. Los chips con varios microcanales fueron construidos mediante el diseño de diferentes moldes bajo demanda y los HUVEC fueron sembrados en los canales y unidos a la pared del canal formando la forma macroscópica del recipiente. La fuente de alto voltaje se aplica al fabricar microesferas.Los investigadores deben examinar el circuito antes y no tocar los milibares expuestos protegiendo a los operadores o hace que las células de un daño por cortocircuito. La base de agua ultrasónica podría ser otra opción para acelerar la velocidad de merecido. Definitivamente esta contribución resumió los métodos de bioimpresión 3D de GelMA en nuestro laboratorio.Los investigadores podrían referirse al vídeo y mejorar o ampliar las estrategias de impresión para satisfacer los requisitos biomédicos adicionales.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Bioengineering

Bioingeniería

El video muestra el proceso de creación de una construcción bioimpresa en 3D utilizando astrocitos suspendidos en una solución de biotinta. La construcción bioimpresa, después de la reticulación, facilita la adhesión de los astrocitos y su propagación, formando tejido similar a un neural.

Un método para la bioimpresión 3D de astrocitos corticales murinos

Se describe un conjunto de protocolos que en conjunto proporcionan un bioink hidrogel imitando tejido con el que construcciones de tejido 3-D funcionales y viables se pueden bioprinted para su uso en aplicaciones de cribado in vitro.

Bioprinting Cellularized Construye El uso de un Tejidos específicos de hidrogel Bioink

Hemos desarrollado un modelo de cáncer de mama heterogéneos consistiendo en las células fibroblastos y tumor inmortalizadas encajadas un bioink de alginato/gelatina de bioprintable. El modelo recoge el microambiente tumoral de en vivo y facilita la formación de esferoides multicelulares tumor, dando la penetración en los mecanismos de conducción tumorigenesis.

Hidrogel Bioprintable alginato/gelatina 3D In Vitro modelo sistemas inducen formación de glóbulo esferoide

Aquí, desarrollamos una novedosa estrategia modificada multicapa para bioenergitis similares a líquidos (gelatina con baja viscosidad) para evitar la sedimentación de células encapsuladas.

Uso de Bioink de hidrogel multicapa en bioimpresión tridimensional para distribución celular homogénea

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Geles fluidos de agarosa formados por procesamiento de cizallamiento durante la gelificación para bioimpresión 3D suspendida

Este artículo describe los protocolos para la fabricación de microgel de metacriloilo de gelatina de alto rendimiento utilizando dispositivos microfluídicos, la conversión de microgeles en polvo resuspendible (micro-aerogeles), el ensamblaje químico de microgeles para formar andamios de hidrogel granular y el desarrollo de biotintas de hidrogel granular con microporosidad preservada para bioimpresión 3D.

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Bioimpresión 3D de hidrogeles fotoajustables para estudiar la activación de fibroblastos

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Bioimpresión integrada de estructuras similares a tejidos utilizando medio sub-microgel de κ-carragenina

Aprende estrategias de bioimpresión 3D con hidrogeles de GelMA para aplicaciones biomédicas. Este método mejora la imprimibilidad y permite crear estructuras complejas para ingeniería tisular y terapia de daños orgánicos.

Protocolos de Bioimpresión 3D de Bioinks basados en Gelatin Methacryloyl Hydrogel

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