Name: Un ensayo basado en electroquimioluminiscencia para variantes de proteínames MeCP2 (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-05-22T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 44 s
Description: Aprende a cuantificar variantes de proteína MeCP2 mediante electroquimioluminiscencia en formato de 96 pocillos. Este ensayo ofrece mayor sensibilidad y reproducibilidad que métodos tradicionales como Western blot.

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Estamos muy agradecidos a la Dra. Brigitte Sturm por su apoyo con el instrumento ECLIA.

La aprobación para la adquisición de biopsias de piel con fines de investigación se obtuvo del Comité de ética de investigación humana del Hospital de Niños en Westmead, Australia. El consentimiento para experimentos con animales se obtuvo del Ministerio Federal de Ciencia, Investigación y Economía de Austria, que se realizaron de acuerdo con las regulaciones locales de bienestar animal (GZ: 66.009/0218-II/3b/2015).
NOTA: El principio del sistema ECLIA se muestra en la Figura 1.
1. Selección de anticuerpos
<ol><li>Evaluar la relación señal-ruido para una gama de varios anticuerpos MeCP2 e identificar la mejor intensidad de señal y la mayor especificidad dentro de la combinación de un anticuerpo monoclonal primario MeCP2 (clon Mec-168) y un anticuerpo de detección MeCP2 policlonal de conejo (hecho a medida). Para el anticuerpo secundario, utilice un anticuerpo específico del sistema(Tabla de materiales),que también se verificó experimentalmente. NOTA: La Tabla 1 ofrece una visión general de todos los anticuerpos verificados durante el desarrollo de MeCP2-ECLIA y sus rangos de dilución probados.</li>
</ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Función</td>
			<td>Nombre</td>
			<td>Clon</td>
			<td>Dilución</td>
		</tr>
<tr>
<td>Primaria</td>
			<td>Ratón, anti-MeCP2</td>
			<td>Mec-168</td>
			<td>1:500-1:10.000</td>
		</tr>
<tr>
<td>Primaria</td>
			<td>Ratón, anti-MeCP2</td>
			<td>4B6</td>
			<td>1:250-1:4,000</td>
		</tr>
<tr>
<td>Primaria</td>
			<td>Ratón, anti-MeCP2</td>
			<td>Hombres-8</td>
			<td>1:500-1:4.000</td>
		</tr>
<tr>
<td>Primaria</td>
			<td>Ratón, anti-MeCP2</td>
			<td>1B11</td>
			<td>1:500-1:4.000</td>
		</tr>
<tr>
<td>Primaria</td>
			<td>Conejo, anti-MeCP2</td>
			<td>D4F3</td>
			<td>1:500-1:4.000</td>
		</tr>
<tr>
<td>Secundaria</td>
			<td>Conejo, anti-MeCP2</td>
			<td>Policlonal</td>
			<td>1:2,000-1:20,000</td>
		</tr>
<tr>
<td>Secundaria</td>
			<td>Conejo, anti-MeCP2</td>
			<td>Policlonal</td>
			<td>1:2,000-1:20,000</td>
		</tr>
<tr>
<td>Detección</td>
			<td>SULFO-TAG etiquetado anticonejo</td>
			<td>Policlonal</td>
			<td>1:500-1:1,000</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabla 1: Lista de anticuerpos y diluciones de trabajo usadas.
<ol start="2"><li>Alternativamente, utilice cada par de anticuerpos MeCP2 que funcione bien con ELISA convencional.</li>
</ol>2. Tratamiento de HDF con proteína de fusión TAT-MeCP2
NOTA: TAT-MeCP2 se expresó de forma recombinante en Escherichia coli y se purificó utilizando técnicas cromatográficas estándar como se describió anteriormente8 y se almacenó a -80 oC.
<ol><li>Placa 1 x 106 células de fibroexplosdor humano (HDF) en platos de 100 mm y crecen las células durante la noche a 37 oC con 5% co2 hasta que alcanzan una confluencia de aproximadamente el 90%.</li>
	<li>Saque un vial de proteína de fusión TAT-MeCP2. Descongelar sobre hielo y mezclar suavemente.</li>
	<li>Diluir TAT-MeCP2 a una concentración final de 500 nM en 50 mL de medios de cultivo HDF.</li>
	<li>Retirar el medio de los platos de 100 mm e incubar las células con 500 nM TAT-MeCP2 a 37 oC durante varios periodos de incubación de hasta 24 h.</li>
	<li>Quite la solución TAT-MeCP2 de las células. Lave las células 2veces con la salina con fosfato (DPBS) precalentada de Dulbecco.</li>
	<li>Tratar las células con 2 ml de solución de trippsina-EDTA al 0,05% durante 5 min a 37 oC10.</li>
	<li>Añadir 6 ml de medios de cultivo HDF para desactivar la trippsina y recoger las células en tubos de 15 ml.</li>
	<li>Reventar las células por centrifugación a 500 x g durante 5 min a temperatura ambiente.</li>
	<li>Retire el sobrenadante y lave las células 2 veces con DPBS helado. Conservar el pellet en hielo y proceder con la preparación de la muestra.</li>
</ol>3. Preparación de la muestra
<ol><li>Lisatos HDF<ol>
<li>Determinar los niveles más altos de proteína de MeCP2 utilizando el método REAP para el fraccionamiento subcelular en los compartimentos subcelulares citoplasmáticos y nucleares según Suzuki et al.11. Limite el fraccionamiento a no más de seis muestras por experimento.</li>
	</ol>
</li>
	<li>El cerebro del ratón se lisa<ol>
<li>Prepare 100 ml de cada reactivo de lisis hipotónica y tampón de extracción.<ol>
<li>Para el reactivo de lisis hipotónica, mezcle bien 10 mM HEPES, 1,5 mM de cloruro de magnesio y cloruro de potasio de 10 mM.</li>
			<li>Para el tampón de extracción, mezcle bien 20 mM HEPES, cloruro de magnesio de 1,5 mM, cloruro de sodio 0,42 M, 0,2 mM de EDTA y 25% (v/v) glicerol.</li>
			<li>Ajuste el pH de ambos búferes a 7.9.</li>
			<li>Añadir 1 mM de ditiothreitol (TDT) y 1 cóctel inhibidor de la proteasa a ambos tampones recién. Enfríe en hielo antes de usar.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Suspenda 100 mg de cerebro total del ratón (strain: C57BL/6J, wildtype masculino y femenino y B6.129P2(C)-Mecp2tm1.1Bird/J, hemizygous male and heterozygous female; age: 4-8 weeks old) in 1 mL of ice-cold hypotonic lyagent.</li>
		<li>Homogeneizar el cerebro con un homogeneizador de tejido de vidrio Dounce pre-enfriado por 15 golpes de homogeneizador A (flojo, para un gran aclaramiento) y B (apretado, para un pequeño aclaramiento), respectivamente.</li>
		<li>Transfiera las células homogeneizadas a un tubo limpio y centrífuga a 10.000 x g durante 20 min a 4 oC. Deseche el sobrenadante (o guárdelo como fracción citoplasmapara su uso posterior).</li>
		<li>Resuspenda el pellet en 140 ml de tampón de extracción por cada 100 mg de material de partida. Colocar el tubo en un termobloque preenfriado y mezclar suavemente durante 30 minutos a 4 oC.</li>
		<li>Centrifugar el tubo a 16.000 g durante 10 min a 4oC. Transfiera el sobrenadante (es decir, la fracción nuclear) a un nuevo tubo preenfriado y guárdelo a -80 oC hasta su uso. NOTA: La concentración proteica de los licitares derivados del cerebro del ratón y los HDF puede ser evaluada por el ensayo de proteínaBCA.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. Protocolo MeCP2-ECLIA
<ol><li>Preparación de la solución de lavado, tampón de bloqueo y solución diluyente de ensayo (día 1)<ol>
<li>Añadir 500 éL de Tween 20 a 1 L de PBS para preparar un 0.05% Tween 20 en solución DE PBS, mezclar vigorosamente y etiquetar como "solución de lavado". NOTA: Asegúrese de que solo se utilice un tampón de lavado recién preparado.</li>
		<li>Preparar una solución de bloqueo del 3% del bloqueador A(Tabla de materiales)en solución salina con fosfato (PBS). Mezclar con agitación suave, filtrar el esterilizar y mantenerlos en la nevera hasta que lo usen durante un máximo de dos semanas.</li>
		<li>Añadir 5 ml de solución de bloqueo a 10 ml de PBS para preparar la solución diluyente de ensayo (1% bloqueador A en PBS).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Recubrimiento de placas de alta unión<ol>
<li>Saque una placa de unión de un solo punto de un solo punto de 96 polos de pozo. NOTA: Las placas de unión altas tienen una mayor capacidad de unión y, por lo tanto, un rango dinámico más grande que las placas estándar con superficies hidrofóbicas.</li>
		<li>Descongelar el anticuerpo anti-MeCP2 del ratón monoclonal sobre hielo y mezclar 0,67 l del anticuerpo con 4 ml de PBS (1:6.000 dilución de anticuerpos en PBS). Vortex la solución de anticuerpos para mezclar bien y etiquetar el tubo como "solución de recubrimiento".</li>
		<li>Dispense cuidadosamente 25 l de solución de recubrimiento en la esquina inferior de cada pozo utilizando un pipeteador multicanal; esto se denomina método de recubrimiento de solución. Toque suavemente la placa de 96 pocillos en cada lado para asegurarse de que la solución de recubrimiento cubra la parte inferior de cada pocal.</li>
		<li>Sellar la placa con una lámina adhesiva e incubar la placa en la nevera a 4oC durante la noche (12-16 h).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Bloqueo (día 2)<ol>
<li>Saque el plato de la nevera y retire el papel de aluminio.</li>
		<li>Retire la solución de recubrimiento de anticuerpos golpeándola en la cesta de residuos y toque la placa en una toalla de papel para eliminar toda la solución de recubrimiento de los pozos.</li>
		<li>Añadir 125 sl de solución de bloqueo por poca. Vuelva a sellar la placa y colóquela en un agitador de microplacas orbital.</li>
		<li>Incubar la placa durante 90 minutos a temperatura ambiente con agitación constante a 800 rpm.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Preparación de normas y muestras<ol>
<li>Durante el tiempo de incubación, preparar las normas de proteína MeCP2 y/o TAT-MeCP2 y varias muestras. NOTA: El tampón de lysis utilizado para la dilución estándar debe ser el mismo que el utilizado en las muestras analizadas.</li>
		<li>Sacar un vial de mePC2 y/o tAT-MeCP2 solución de material de proteína (250 g /ml), lisiamientos cerebrales de ratón y lysates HDF de -80 oC. Descongelarlos en hielo.</li>
		<li>Diluir la solución de stock estándar (MeCP2 y/o TAT-MeCP2) en tubos limpios según la Tabla 2.</li>
		<li>Diluir las muestras en el tampón de lisis de la siguiente manera: 1 a 20 g de lisato cerebral del ratón por 25 ml de tampón de lisis, y 0,25 a 1 g de lisato de HDF por 25 ml de tampón de lisis. Preparar el volumen suficiente de cada muestra para realizar análisis por triplicado.</li>
	</ol>
</li>
</ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Estándar</td>
			<td>Concentración</td>
			<td>Dilución</td>
		</tr>
<tr>
<td>Estándar 1</td>
			<td>1.800 ng/mL</td>
			<td>1,08 l Solución de stock estándar + tampón de lisis de 148,92 l</td>
		</tr>
<tr>
<td>Estándar 2</td>
			<td>600 ng/mL</td>
			<td>50 L Estándar 1 + 100 L Tampón de lisis</td>
		</tr>
<tr>
<td>Estándar 3</td>
			<td>200 ng/mL</td>
			<td>50 L Estándar 2 + 100 L Tampón de lisis</td>
		</tr>
<tr>
<td>Estándar 4</td>
			<td>66.67 ng/mL</td>
			<td>50 L Estándar 3 + 100 L Tampón de lisis</td>
		</tr>
<tr>
<td>Estándar 5</td>
			<td>22.22 ng/mL</td>
			<td>50 L Estándar 4 + 100 L Tampón de lisis</td>
		</tr>
<tr>
<td>Estándar 6</td>
			<td>7.41 ng/mL</td>
			<td>50 L Estándar 5 + 100 L Tampón de lisis</td>
		</tr>
<tr>
<td>Estándar 7</td>
			<td>2.47 ng/mL</td>
			<td>50 L Estándar 6 + 100 L Tampón de lisis</td>
		</tr>
<tr>
<td>Estándar 8</td>
			<td>0.82 ng/mL</td>
			<td>50 L Estándar 7 + 100 L Tampón de lisis</td>
		</tr>
<tr>
<td>Estándar 9</td>
			<td>0.27 ng/mL</td>
			<td>50 L Estándar 8 + 100 L Tampón de lisis</td>
		</tr>
<tr>
<td>Estándar 10</td>
			<td>0 ng/mL</td>
			<td>Tampón de lisis de 150 l</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabla 2: Serie estándar de 0 a 1.800 ng/mL.
<ol start="5"><li>Adición de muestras y soluciones estándar<ol>
<li>Retire la solución de bloqueo desvelándola a la cesta de residuos y toque la placa de una toalla de papel para eliminar toda la solución de bloqueo de los pozos.</li>
		<li>Lavar la placa 3x con 150 sl de solución de lavado añadiendo la solución de lavado y retirándola inmediatamente.</li>
		<li>Agregue 25 ul de estándares y muestras a la esquina inferior del pozo utilizando una pipeta de un solo canal.</li>
		<li>Sellar la placa e incubar la placa durante 4 horas a temperatura ambiente con agitación constante a 800 rpm.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Anticuerpo de detección sin etiquetar<ol>
<li>Descongelar el anticuerpo anti-MeCP2 del conejo policlonal sobre hielo. Diluir el anticuerpo 1:6,000 en la solución diluyente de ensayo.</li>
		<li>Retire las normas y las muestras desvelándolas a la cesta de residuos y toque el plato en una toalla de papel.</li>
		<li>Lavar la placa 3x con 150 sl de solución de lavado añadiendo la solución de lavado y retirándola inmediatamente.</li>
		<li>Añadir 25 l de anticuerpo de detección sin etiquetar a cada pocedés con el pipeteador multicanal. Sellar la placa e incubarla durante 1 h con agitación constante a 800 rpm a temperatura ambiente.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Anticuerpo conjugado específico<ol>
<li>Saque el anticuerpo secundario específico(Tabla de Materiales)de la nevera y colóquelo sobre hielo. Diluir el anticuerpo 1:666.67 en la solución diluyente del ensayo y mezclar suavemente.</li>
		<li>Retire el anticuerpo secundario libre sin etiquetar golpeándolo en la cesta de residuos y toque la placa en una toalla de papel.</li>
		<li>Lavar la placa 3x con 150 sl de solución de lavado añadiendo la solución de lavado y retirándola inmediatamente.</li>
		<li>Añadir 25 l de anticuerpo conjugado específico(Tabla de materiales)a cada pocto con el pipeteador multicanal. Sellar la placa e incubar durante 1 h con agitación constante a 800 rpm a temperatura ambiente.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Lectura de la placa<ol>
<li>Retire el anticuerpo conjugado libre(Tabla de materiales)desvelándolo a la cesta de residuos y toque el plato en una toalla de papel.</li>
		<li>Lavar la placa 3veces con 150 ml de solución de lavado.</li>
		<li>Añadir 150 l de 1 búfer de lectura de oro a base de Tris(Tabla de materiales)con surfactante que contiene triprotilamina como co-reactante para la generación de luz a la placa. Evite las burbujas de aire mediante técnicas de pipeteo inverso.</li>
		<li>Coloque la placa en la plataforma de detección de microplacas(Tabla de materiales)e inicie la medición inmediatamente. Utilice los ajustes para la adquisición de placas de 96 pocillos.</li>
		<li>Capturar las señales de electroquimioluminiscencia por una cámara CCD incorporada en un sistema de detección de electroquimioluminiscencia (Tabla de Materiales) y registrar los recuentos de señales, que corresponden a unidades de luz relativas (RLU) y son directamente proporcionales a la intensidad de la luz. NOTA: Tras la estimulación electroquímica, la etiqueta de rutenio unida al electrodo de carbono emite luz de luminiscencia a 620 nm. Analice los datos con el software acompañado por el instrumento(Tabla de materiales).</li>
	</ol>
</li>
</ol>

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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Para medir los niveles endógenos de MeCP2, MeCP2 y TAT-MeCP2, se desarrolló una placa de 96 pocillos ECLIA. Se ha demostrado que la pérdida de la función proteica MeCP2 conduce al síndrome de RTT6,para lo cual el tratamiento se limita actualmente al manejo de síntomas y terapia física. Una vía de tratamiento prometedora es la llamada terapia de reemplazo de proteínas, donde los niveles de MeCP2 se pueden valorar hasta su concentración necesaria12,,<sup class="xre...

El inmunoensayo de electroquimioluminiscencia (ECLIA) se basa en un proceso que utiliza etiquetas diseñadas para emitir luminiscencia cuando se estimula electroquímicamente. Es una técnica ampliamente aplicable para la detección cuantitativa de analitos biológicos en la industria básica y la investigación académica, la industria alimentaria, así como en el diagnóstico clínico1. Comúnmente, se utiliza una placa desechable de 96 pocillos con electrodos de tinta de carbono. Estos electrodos actúan como un portador de fase sólida para el inmunoensayo. Un anticuerpo secundario se conjuga con una etiqueta electroquimioluminiscente y cuando se aplica electricidad al sistema, se desencadena la emisión de luz de la etiqueta química. Un dispositivo acoplado a carga de ruido ultrabajo (CCD) registra la intensidad de la luz que es directamente proporcional al antígeno enlazado al anticuerpo de captura, lo que resulta en la cuantificación del analito objetivo de la muestra2. En comparación con el ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas (ELISA), ECLIA se considera ventajoso, ya que ofrece una mayor sensibilidad y reproducibilidad, así como una mejor automatización y consistencia3.
Aquí analizamos los niveles de proteína de unión metil-CpG 2 (MeCP2) en muestras de origen humano y murino, así como diferentes variantes de la proteína recombinante utilizando el sistema ECLIA recién desarrollado. MecP2 es una proteína de unión a ácido nucleico ligada al X que se sabe que interactúa con secuencias de ADN metiladas. Esta proteína ha estado implicada en la regulación de la expresión génica4,5. Las mutaciones de pérdida de función en el gen que codifica esta proteína son los principales culpables que causan el síndrome de Rett (RTT), un trastorno grave del neurodesarrollo6. Otro trastorno relacionado con MeCP2, el síndrome de duplicación MECP2, también conduce a síntomas neurológicos que pueden superponerse con los de RTT7. En particular, las hembras se ven afectadas principalmente por la RTT, mientras que los machos se ven afectados en su mayoría por el síndrome de duplicación MECP2 6,7.
Estos trastornos se asocian con niveles insuficientes o excesivos de MeCP2 respectivamente en el sistema nervioso central (SNC). Por lo tanto, las opciones de tratamiento para la RTT que implican el aumento de los niveles de MeCP2 en el SNC tendrían que evitar los efectos perjudiciales asociados con el exceso de MeCP27. Debido a este hecho, una cuantificación altamente sensible y precisa de los niveles de proteína MeCP2, según lo proporcionado por el sistema ECLIA, es crucial para el avance de la RTT, así como la investigación del síndrome de duplicación MECP2. Las mediciones precisas de los niveles endógenos y exógenos de MeCP2 a partir de líneas celulares humanas y muestras de tejido de ratón, así como una proteína recombinante que consiste en isoforma B mecp2 humana (también conocida como isoforma e1), y un dominio mínimo de transducción N-terminal VIH-TAT (TAT-MeCP2) que tiene el potencial de cruzar la barrera hemorrágucciona-cerebro8,9 se presentan en este trabajo.

<table><tbody><tr><td>1,4-ditiotreitol (DTT)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D9779</td><td>Reactivo de lisis hipotónica, tampón de extracción</td></tr><tr><td>Bio-Rad Ensayo de proteínas Concentrado de reactivo de colorante</td><td>Bio-Rad Laboratories Inc.</td><td>500-0006</td><td>Detección de preparación de muestras</td></tr><tr><td>AB SULFO-TAG etiquetado anti-conejo</td><td>Meso Scale Diagnostics</td><td>R32AB-1</td><td>Antibody</td></tr><tr><td>Discovery banco de trabajo 4.0</td><td>Meso Scale Discovery</td><td></td><td>Software</td></tr><tr><td>DMEM (1X)</td><td>gibco by Life Technologies</td><td>41966-029 Preparación de</td><td>muestras</td></tr><tr><td>Dulbecco' s PBS (estéril)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8537-500ML Preparación de</td><td>muestras, Solución de lavado, Solución de recubrimiento</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Tampón de extracción</td><td>EDS</td></tr><tr><td>Suero fetal bovino</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F9665</td><td>Preparación de muestras</td></tr><tr><td>Glicerol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G2025</td><td>Tampón de extracción</td></tr><tr><td>Gold Read Buffer T (1x) con tensioactivo</td><td>Meso Scale Diagnóstico</td><td>R92TG</td><td>MeCP2 Protocolo ECLIA</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3375</td><td>Reactivo de lisis hipotónica, tampón de extracción</td></tr><tr><td>Juego de trituradora de tejidos KIMBLE Dounce</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8938</td><td>Preparación de muestras Agitador</td>de</tr><tr><td>laboratorio, movimiento de balanceo (baja velocidad)</td><td>GFL</td><td>3014</td><td>MeCP2 Protocolo ECLIA</td></tr><tr><td>Cloruro de magnesio hexahidratado (MgCl*6H20)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M2670</td><td>Reactivo de lisis hipotónica, tampón de extracción</td></tr><tr><td>MeCP2 (humano) Proteína recombinante (P01)</td><td>Abnova Corporation</td><td>H00004204-P01</td><td>Tratamiento celular</td></tr><tr><td>Microseal B seal</td><td>Bio-Rad Laboratories Inc.</td><td>MSB1001</td><td>para el sellado de placas</td></tr><tr><td>Monoclonal Anti-MeCP2, producido en ratón, clon Mec-168, inmunoglobulina purificada</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M6818-100UL; RRID:AB_262075</td><td>Anticuerpo, solución de recubrimiento</td></tr><tr><td>Bloqueador MSD Diagnóstico</td><td>a escala Meso Bloqueador</td><td>R93BA-4</td><td>Generador</td>de</tr><tr><td>imágenes MSD SECTOR 2400</td><td>Diagnóstico a escala mesográfica</td><td>I30AA-0</td><td>MeCP2 Protocolo ECLIA</td></tr><tr><td>Placa multi-array de 96 pocillos</td><td>Diagnóstico a escala mesográfica</td><td>L15XB-3/L11BX-3</td><td>MeCP2 Protocolo ECLIA</td></tr><tr><td>Penicilina-Estreptomicina</td><td>gibco de Life Technologies</td><td>15140122</td><td>Preparación de muestras</td></tr><tr><td>Polyclonal Anti-MeCP2, producidas en conejo</td><td>Eurogentec S.A.</td><td></td><td>anticuerpo</td></tr> de <tr><td>diseño personalizado cloruro de potasio (KCl)</td><td>Merck KGaA</td><td>1049361000</td><td>Reactivo de lisis hipotónica</td></tr><tr><td>Primary AB Mouse, anti-MeCP2 (1B11)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>SAB1404063; RRID:AB_10737296</td><td>Anticuerpo</td></tr><tr><td>primario AB Ratón, anti-MeCP2 (4B6)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>WH0004204M1; RRID:AB_1842411</td><td>Anticuerpo</td></tr><tr><td>primario AB Ratón, anti-MeCP2 (Mec-168)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M6818; RRID:AB_262075</td><td>Anticuerpo</td></tr><tr><td>primario AB Ratón, anti-MeCP2 (Hombres-8)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M7443; RRID:AB_477235</td><td></td></tr><tr><td>Anticuerpo AB primario Conejo, anti-MeCP2 (D4F3)</td><td>Tecnología de señalización celular</td><td>3456S; RRID:AB_2143849</td><td></td></tr><tr><td>Cóctel de inhibidores de proteasas de anticuerpos (100X)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>8340</td><td>Reactivo de lisis hipotónica, Tampón de extracción</td></tr><tr><td>secundario AB, Conejo, anti-MeCP2</td><td>Eurogentec S.A.</td><td>personalizado</td><td>Anticuerpo</td></tr><tr><td>secundario AB, conejo, anti-MeCP2</td><td>Merck</td><td>07-013</td><td>Anticuerpo</td></tr><tr><td>Cloruro de sodio (NaCl)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S3014</td><td>Tampón de extracción</td></tr><tr><td>SULFO-TAG Marcado Anticuerpo anti-conejo (cabra)</td><td>Diagnóstico a escala meso Anticuerpo</td><td>W0015528S</td><td>Anticuerpo</td></tr><tr><td>TAT-MeCP2 proteína de fusión</td> producción <td>propia Tratamiento</td><td></td><td>celular</td></tr><tr><td>Tripsina EDTA 0.25% (1X)</td><td>gibco de Life Technologies</td><td>25200-056</td><td>Tratamiento celular</td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9416</td><td>Solución de lavado</td></tr></tbody></table>

un ensayo basado en electroquimioluminiscencia para variantes de proteínames mecp2

An Electrochemiluminescence-Based Assay for MeCP2 Protein Variants

El ECLIA es un método versátil que es capaz de cuantificar cantidades de proteínaendógenas y recombinantes en un formato de 96 pozos. Para demostrar la eficiencia de ECLIA, este ensayo se utilizó para analizar los niveles intrínsecos de MeCP2 en el tejido cerebral del ratón y la aceptación de TAT-MeCP2 en fibroblastos dérmales humanos. El MeCP2-ECLIA produce mediciones altamente precisas y reproducibles con un error bajo de intra e interensayo. En resumen, desarrollamos un método cuantitativo para la evaluación de variantes de proteínaMeCP2 que se puede utilizar en pantallas de alto rendimiento.

El principio del sistema ECLIA se describe en la Figura 1. Las curvas estándar para dos variantes de MeCP2 se muestran en la Figura 2. La cuantificación precisa fue posible en una amplia gama de concentraciones (1-1.800 ng/mL). En la Figura 3,se analizaron los niveles de meCP2 de lisados derivados del cerebro del ratón y los HDF. La expresión de MeCP2 en los licentos nucleares cerebrales de ratones heterocigotos, salvajes y noqueant...

El inmunoensayo de electroquimioluminiscencia (ECLIA) es un enfoque novedoso para la detección cuantitativa de variantes de proteína MeCP2 endógenas y aplicadas exógenamente, que produce mediciones reproducibles altamente cuantitativas, precisas y ibles con un error bajo de intra e interensayo en un amplio rango de trabajo. Aquí, se describe el protocolo para el MeCP2-ECLIA en un formato de 96 pozos.

Un ensayo basado en electroquimioluminiscencia para variantes de proteínames MeCP2

The ECLIA is a versatile method which is able to quantify endogenous and recombinant protein amounts in a 96-well format. To demonstrate ECLIA efficiency, ...

El ECLIA es un método simple pero eficiente para cuantificar los niveles celulares de MeCP2. El ECLIA es rápido, más sensible y más fácil de manejar en comparación con otros métodos de cuantificación como la mancha occidental y el ELISA. Para preparar la solución de lavado, que es 0.5%Tween 20 en PBS, añadir 500 microlitros de Tween 20 a un litro de PBS y mezclar vigorosamente.Prepare una solución de bloqueo de 3%Blocker A y PBS y revuelva suavemente. Esterilice la solución de bloqueo por filtración. Para preparar la solución diluyente del ensayo, 1%Blocker A y PBS, agregue cinco mililitros de solución de bloqueo a 10 mililitros de PBS.A continuación, descongele el anticuerpo anti-MeCP2 del ratón monoclonal sobre el hielo. Mezclar 0,67 microlitros del anticuerpo con cuatro mililitros de PBS, luego vórtice la solución. Para recubrir la solución de la placa de unión de 96 pozos de altura, dispensar cuidadosamente 25 microlitros de solución de recubrimiento en la esquina inferior de cada pozo, utilizando una pipeta multicanal.Coloque suavemente la placa de 96 pozos en cada lado para asegurarse de que la solución de recubrimiento cubra la parte inferior de cada pozo. Selle la placa con papel adhesivo e incubar durante la noche a cuatro grados centígrados. Recupere la placa de 96 pozos del refrigerador y retire la lámina.Retire la solución de recubrimiento de anticuerpos en los pozos arrojándola en un contenedor de residuos. A continuación, toque la placa en una toalla de papel para quitar cualquier solución restante. A continuación, agregue 125 microlitros de solución de bloqueo a cada pozo.A continuación, vuelva a sellar la placa con papel adhesivo. Coloque la placa en un agitador de microplacas orbital, fijado a 800 RPM, e incubarlo durante 90 minutos a temperatura ambiente. Descongelar sobre hielo un vial de solución de stock de proteína MeCP2 o Tat-MeCP2, lesates cerebrales de ratón y lesates HDF.Diluir la solución de proteína en tubos limpios como se describe en la tabla dos del manuscrito. A continuación, diluya las muestras de izado. Para las lesates cerebrales del ratón, utilice de uno a 20 microgramos por cada 25 microlitros de tampón de lelisis.Para el alate HDF, agregue 0.25 a un microgramo por cada 25 microlitros de tampón de lelisis. Después de que la placa de 96 pozos haya estado incubando durante 90 minutos, retire la solución de bloqueo de los pozos arrojándola en un contenedor de residuos. A continuación, toque la placa en una toalla de papel para quitar cualquier solución restante.A continuación, lave la placa tres veces con 150 microlitros de solución de lavado, añadiendo la solución de lavado y quitándola inmediatamente. Añadir 25 microlitros de estándares y muestras a los pozos de la placa de 96 pozos. Selle la placa e i incuba durante otras cuatro horas a temperatura ambiente con un agitado constante de 800 RPM.Descongelar el anticuerpo de detección sin etiquetar, conejo policlonal anti-MeCP2, sobre hielo. Utilizando la solución diluyente del ensayo, diluya el anticuerpo en una proporción de uno a 6.000. Cuando la placa de 96 pozos haya terminado de incubar la coctelera, retire las normas y las muestras moviendo la placa en un contenedor de residuos.A continuación, toque la placa en una toalla de papel para quitar cualquier solución restante. Lave la placa tres veces con 150 microlitros de solución de lavado añadiendo la solución de lavado y quitándola inmediatamente. Agregue 25 microlitros de solución de anticuerpos de detección sin etiquetar a cada pozo con el pipetter multicanal.Selle la placa e i incuba durante una hora a temperatura ambiente con agitación constante a 800 RPM. Obtenga el anticuerpo secundario específico del refrigerador y colóquelo un hielo. Diluir el cuerpo secundario en solución diluyente de ensayo y mezclar suavemente.Para extraer el anticuerpo de detección libre sin etiquetar de la placa de 96 pozos, deslice el dedo hacia el contenedor de residuos y, a continuación, puntee la placa en una toalla de papel. Después de lavar la placa tres veces más descrito, agregue 25 microlitros de anticuerpo secundario a cada pozo con el pipeteador multicanal. Selle la placa e i incuba durante una hora a temperatura ambiente con agitación constante a 800 RPM.Retire el anticuerpo secundario libre entrando en el contenedor de residuos y tocando la placa sobre una toalla de papel y luego lave la placa tres veces, como se describió anteriormente. A cada pozo de la placa, añada 150 microlitros de 1X Tris base Gold Read Buffer con tensioactivo, que contiene tripropilamina como coreactant para la generación de luz. Para evitar la producción de burbujas de aire, utilice técnicas de pipeteo inverso.Coloque la placa de 96 pocillos en la plataforma de la microplaca con el sistema de detección de electrochemilinoscencia. Con la cámara CCD integrada, comience inmediatamente a capturar datos. Recuentos de señales de registro que corresponden a unidades de luz relativas y son directamente proporcionales a la intensidad de la luz.Las curvas estándar MeCP2 se generaron a partir de MeCP2 humano en múltiples mediciones. El ECLIA puede cuantificar con precisión MeCP2 humano recombinante en un rango de un nanogrando por mililitro a 1800 nanogramos por mililitro. Utilizando ECLIA, los niveles de proteína MeCP2 se midieron en los licatos nucleares cerebrales a partir de ratones heterocigotos y hembras de tipo salvaje y de un ratón knockout MeCP2.ECLIA se llevó a cabo en lysates celulares desde un control saludable y desde la línea celular c. 806delG utilizada como modelo para el síndrome de Rett. No se detectó proteína MeCP2 en las líneas celulares mutadas por ECLIA o por inmunofluorescencia.ECLIA también se utilizó para investigar la captación de Tat-MeCP2 por la línea celular deficiente de MeCP2 horas extras. La precisión de ECLIA inter e intra ensayo se determinó durante tres días consecutivos. Para la futura terapia de reemplazo de proteínas, el parto con MeCP2 se puede optimizar repetidamente después de la evaluación del nivel de proteína por parte de ECLIA.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Biochemistry

Bioquímica

Un método de bajo costo, de alto rendimiento para la detección simultánea de hasta 43 blancos moleculares se describe. Las solicitudes de MPCR / RLB son la tipificación de microorganismos y la detección de múltiples patógenos de muestras clínicas.

Multiplex PCR y Blot Línea ensayo de hibridación reversa (MPCR / RLB)

En este video, demostramos el inmunoensayo de electroquimioluminiscencia para la cuantificación de los niveles de proteínas objetivo en diferentes muestras. Este ensayo se basa en la luminiscencia producida en la reacción electroquímica. La intensidad de la luz emitida es proporcional a la cantidad de la proteína objetivo en la muestra.

Ensayo de electroquimioluminiscencia para la cuantificación de los niveles de proteínas diana en el lisado cerebral

Este video describe la transferencia occidental basada en quimioluminiscencia de lisados inmunoprecipitados. La técnica ayuda a determinar el procesamiento y la activación de proteínas. La señal quimioluminiscente detectada es proporcional al nivel de procesamiento de proteínas durante su activación.

Ensayo de Western Blot quimioluminiscente para el procesamiento de proteínas

Biomarcadores de medición en muestras biológicas complejas es cada vez guían la toma de decisiones clínicas. Se describe un método altamente sensible para medir simultáneamente la miosina cardíaca proteína de unión-C, creatina quinasa MB, troponina I cardiaca y en muestras de suero de pacientes con infarto de miocardio y los sujetos de control sanos.

Un método de cuantificación sensible y específica para la determinación de suero miosina cardíaca proteína de unión-C por inmunoensayo electroquimioluminiscencia

Se describe un alto rendimiento, múltiplex, y el ensayo de líquido cefalorraquídeo proteómica dirigida (CSF) desarrollado con potencial para la traducción clínica. La prueba se puede cuantificar marcadores potenciales y factores de riesgo para la neurodegeneración, tales como las variantes de la apolipoproteína E (E2, E3 y E4), y medir su expresión alélica.

Un alto rendimiento, multiplexado y dirigida proteómico CSF ​​ensayo para cuantificar neurodegenerativas Biomarcadores y apolipoproteína E isoformas Estado

Divulgamos una pequeña horquilla RNA (shRNA) y el siguiente protocolo basado en la secuencia de generación para la identificación de reguladores de la inactivación del cromosoma x en una línea celular murina con luciferasa de luciérnaga y genes de resistencia a Higromicina fusionado a la metil CpG Unión proteína 2 ( MeCP2) gen en el cromosoma X inactivo.

ShRNAs combinados pantalla para reactivación de MeCP2 en el cromosoma de X inactivo

Aquí, presentamos un protocolo para una purificación eficiente solo paso del humano sin etiquetar activo desplazamiento de diez-once-2 (TET2) 5-METILCITOSINA dioxygenase utilizando cromatografía de intercambio iónico y su ensayo con una masa líquida de la cromatografía-tandem Espectrometría (LC-MS/MS)-enfoque basado en.

Eficiente purificación y desarrollo análisis LC-MS/MS-based para diez-once 2 desplazamiento 5-METILCITOSINA dioxigenasa

Aquí describimos un protocolo para generar un modelo murino femenino viable con inactivación cromosómica no aleatoria, es decir, el cromosoma X de herencia maternalmente está inactivo en el 100% de las células. También describimos un protocolo para probar la viabilidad, la tolerabilidad y la seguridad de la reactivación farmacológica del cromosoma X inactivo in vivo.

Un modelo de ratón no aleatorio para la reactivación farmacológica de Mecp2 en el cromosoma X inactivo

La ubicuidad CENP-A es un requisito importante para la deposición CENP-A en el centromere, heredada a través de la dimerización entre la división celular, e indispensable para la viabilidad celular. Aquí describimos el análisis de espectrometría de masas para identificar la ubiculación de la proteína CENP-A (EYFP-CENP-A) etiquetada por EYFP.

Análisis de espectrometría de masas para identificar la ubiquitylación de CENP-A con etiqueta EYFP (EYFP-CENP-A)

Las metiltransferasas de ADN son posibles objetivos farmacológicos contra el cáncer. Aquí, se presenta un protocolo para evaluar moléculas pequeñas para la inhibición de la metiltransferasa de ADN. Este ensayo utiliza una endonucleasa para acoplar la metilación del ADN a la generación de fluorescencia y permite monitorear la actividad enzimática en tiempo real.

Ensayo continuo de metilación del ADN acoplado a endonucleasa basado en fluorescencia para detectar inhibidores de la metiltransferasa de ADN

Aprende a cuantificar variantes de proteína MeCP2 mediante electroquimioluminiscencia en formato de 96 pocillos. Este ensayo ofrece mayor sensibilidad y reproducibilidad que métodos tradicionales como Western blot.

Un ensayo basado en electroquimioluminiscencia para variantes de proteínames MeCP2

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