10 de julio de 2020
Aquí, describimos un protocolo detallado para un método de secuenciación basado en LC-MS que se puede utilizar como método directo para secuenciar ARN corto (<35 nt por ejecución) sin un intermedio de ADNc, y como método general para secuenciar diferentes modificaciones de nucleótidos en un solo estudio con precisión de una sola base.
Este protocolo cubre todos los pasos esenciales necesarios cuando se utiliza el nuevo método desarrollado para secuenciar directamente el ARN, independientemente de si la muestra de ARN es monocatenaria, mixta o modificada. El método no se ve afectado por el error enzimático o la complementariedad de bases. Proporciona un flujo de trabajo directo y una solución general que permite secuenciar diferentes modificaciones de ARN simultáneamente en lugar de una modificación específica a la vez.
Esta tecnología puede convertirse en una herramienta de diagnóstico para determinar segmentos de ARN característicos para relacionarlos con enfermedades humanas y una herramienta precisa para estudiar las modificaciones del ARN a nivel epitranscriptómico. El método no se basa en ningún método de secuenciación anterior. En cambio, es un enfoque completamente nuevo, y nuestro objetivo es convertirlo en el método de referencia para secuenciar cualquier ARN modificado.
Algunas partes de este protocolo contienen aspectos críticos que se pueden transmitir con mayor precisión mediante una demostración visual, como el etiquetado del extremo 3' de la adquisición de datos de RNA LC-MS y el análisis de datos mediante el software MassHunter. Demostraré este procedimiento y configuraré el LC-MS y mediré nuestras muestras de ARN. Para realizar una reacción de etiquetado en un solo paso, combine 2 microlitros de 150 micromolares de AppCp-biotina, 3 microlitros de tampón de reacción de ligasa 10x, 1,5 microlitros de muestra de ARN de 100 micromolares, 3 microlitros de DMSO anhidro, 10 unidades de ARN ligasa T4 y 19,5 microlitros de agua tratada con DEPC para un volumen total de 30 microlitros.
Incubar la reacción durante la noche a 16 grados centígrados, luego realizar la purificación en columna de acuerdo con las instrucciones del manuscrito. Después de dividir el ARN en tres alícuotas y agregar un volumen igual de ácido fórmico, incube las reacciones a 40 grados centígrados. Una vez finalizada cada reacción, congele inmediatamente la muestra en hielo seco para apagar la degradación del ácido.
Utilice un concentrador de vacío centrífugo para secar la muestra durante aproximadamente 30 minutos. Vuelva a suspender las muestras secas en 20 microlitros de agua tratada con DEPC y combínelas. Almacene las muestras a 20 grados centígrados hasta la medición de LC-MS.
Transfiera la muestra de ARN al vial de muestra LC-MS después de preparar las fases móviles. Cada inyección debe contener de 100 a 400 picomoles de ARN y 20 microlitros. Después de adquirir los datos, utilice el flujo de trabajo de extracción de características moleculares para extraer información de compuestos, incluida la masa, el tiempo de retención, el volumen y la puntuación de calidad.
Utilice el formato de datos de centroide en configuraciones de moléculas pequeñas. Establezca la altura del pico en al menos 100, pero menos de 1.000, y la puntuación de calidad en al menos 50. Finalmente, exporte los datos como un archivo de Excel.
La separación de la escalera 3' de la escalera 5' y otros fragmentos no deseados se muestra aquí en un gráfico de tiempo de retención de masa en 2D. También es posible secuenciar muestras mezcladas que contienen dos cadenas de ARN de diferentes longitudes con una etiqueta de biotina 5'en cada ARN. Para diferenciar la uridina de una pseudouridina, el ARN se trató con CMC, que convierte una pseudouridina en un aducto de CMC-pseudouridina.
El aducto tiene una masa diferente en una uridina y se puede diferenciar en el 2D-HELS MS Seq. El perfil de HPLC del producto bruto de la reacción que convierte la pseudouridina en su aducto CMC se utilizó para calcular el porcentaje de conversión, que fue del 42%Una mezcla de cinco hebras de ARN diferentes se secuenció mediante el enfoque 2D-HELS MS Seq con marcaje de 3'end y se normalizó para una mejor visualización de múltiples secuencias de ARN. Sin la normalización, los códigos de letras para las secuencias de los cinco ARN se amontonarían.
Al intentar este procedimiento, configure la reacción de etiquetado con cuidado para obtener un alto rendimiento de muestras de ARN marcadas. Además, controle cuidadosamente el tiempo de degradación para crear escaleras de masa confiables y recoja la cantidad máxima de muestras secas con 20 microlitros de agua. Una pregunta que se puede hacer después de realizar este protocolo es cómo aumentar el ancho, la longitud y el rendimiento del método de secuenciación.
Un mejor algoritmo y un instrumento más avanzado con mayor resolución y sensibilidad pueden ayudar. Después del desarrollo de este protocolo, fue posible secuenciar directamente una gama más amplia de muestras de ARN que contenían nucleótidos canónicos y modificados sin ningún error relacionado con la secuenciación de ARN basada en CDA.
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Este artículo presenta un novedoso método de secuenciación basado en LC-MS para ARN corto que elimina la necesidad de un intermediario de ADNc. El protocolo permite la secuenciación simultánea de diversas modificaciones del ARN con precisión de una sola base.
Este método de secuenciación de ARN basado en LC-MS permite la secuenciación directa y de novo de mezclas de ARN modificadas sin síntesis de ADNc, abordando un cuello de botella clave en la validación de dianas epitranscriptómicas. Al proporcionar datos cuantitativos de secuenciación con resolución de modificaciones, apoya el descubrimiento temprano de biomarcadores basados en ARN y la reducción mecanicista de riesgos de oligonucleótidos terapéuticos. El enfoque mejora la confianza predictiva en la identificación de compuestos líderes al ofrecer resultados específicos de modificaciones y confirmados por secuencia, directamente aplicables a los flujos de trabajo de cribado y desarrollo de ensayos.
El método se integra en los flujos de trabajo de descubrimiento temprano como una herramienta de secuenciación inicial para el análisis de ARN guiado por hipótesis, contribuyendo a la identificación de candidatos al confirmar la secuencia y el estado de modificación de los ARN sintéticos o endógenos antes del cribado funcional.