8 de julio de 2020
Los microARN están implicados en la patogénesis de la nefropatía por IgA. Hemos desarrollado un método fiable para detectar los niveles de expresión de microARN en los riñones de un modelo de ratón con nefropatía IgA (ratones HIGA). Este nuevo método facilitará la comprobación de la participación de los miRNAs en la nefropatía por IgA.
Este método se puede utilizar para verificar fácilmente el cambio de microARN en la nefropatía por IGA utilizando un modelo animal pequeño, lo que permite estudiar la nefropatía por IGA sin una biopsia de riñón humano. El protocolo puede proporcionar nuevos conocimientos sobre la genética de la nefropatía por IGA, lo que potencialmente puede ayudar en el descubrimiento de nuevos métodos diagnósticos y terapéuticos para la enfermedad renal. Después de asegurarse de que el ratón esté correctamente anestesiado, use tijeras quirúrgicas y fórceps para hacer una incisión de tres a cuatro centímetros en la línea media del ratón e identificar ambos lados del riñón.
Haga una incisión en las costillas y el diafragma para exponer el corazón. Después de incidir la aurícula derecha, inyecte PBS en el ventrículo izquierdo hasta que el color del riñón cambie a amarillo pálido, lo que indica que todo el cuerpo del ratón está perfundido con PBS. Cortar la arteria renal, la vena renal y el uréter, y luego extirpar el riñón.
Homogeneizar las muestras de riñón de 30 miligramos utilizando un homogeneizador de silicio y 700 microlitros de reactivo de lisis a base de fenol guanidina a temperatura ambiente. Transfiera el lisado a la columna de centrifugación de biopolímero y centrifugue a 15.000 g durante dos minutos a temperatura ambiente. Continúe con la purificación de RBNA siguiendo las instrucciones del manuscrito.
Después del lavado final, agregue 30 microlitros de agua libre de nucleasas a la columna de centrifugación basada en membrana de sílice y centrifugue a 8.000 G durante un minuto para eluir el ARN. Para la síntesis de ADNc, prepare una mezcla maestra con dos microlitros de mezcla de ácido nucleico, dos microlitros de mezcla de transcriptasa inversa y cuatro microlitros de tampón en un total de ocho microlitros por muestra. Agregue ocho microlitros de la mezcla maestra a cada pocillo de una tira de tubo de ocho pocillos.
Diluir el ARN total en agua libre de nucleasas. Luego, agregue 12 microlitros de la solución de ARN total a cada pocillo de la tira. Coloque las muestras en el termociclador e incube a 37 grados centígrados durante 60 minutos, luego a 95 grados centígrados durante cinco minutos.
Para realizar una PCR cuantitativa en tiempo real, prepare la mezcla maestra de acuerdo con las instrucciones del manuscrito y, a continuación, añada 22,5 microlitros de la mezcla maestra a cada pocillo de una placa de reacción de 96 pocillos. Agregue 2,5 microlitros del ADNc preparado a cada pocillo. Coloque la placa de reacción en el instrumento de PCR en tiempo real.
Luego, prográmelo para una activación inicial a 95 grados Celsius durante 15 minutos, seguido de 40 ciclos de desnaturalización a 94 grados Celsius durante 15 segundos, recocido a 55 grados Celsius durante 30 segundos y extensión a 70 grados Celsius durante 30 segundos. Cuantificar la expresión génica mediante el método de TC delta-delta. Este protocolo se utilizó para investigar los niveles de expresión de microRNAs en los riñones de ratones HIGA utilizando los riñones de ratones Balb/c como control.
Se midieron los niveles de expresión de tres microRNAs asociados a la nefropatía por IGA. Los niveles relativos de expresión de microARN de los dos grupos se compararon mediante una prueba T, siendo un P inferior a 0,05 estadísticamente significativo. miR-155-5p se expresó a niveles 3,3 veces más altos en el grupo HIGA en comparación con el grupo de control, y miR-21-5p se expresó a niveles 1,58 veces más altos.
La expresión de miR-1461-5p no difirió significativamente entre los dos grupos. Al intentar este protocolo, es importante usar una mascarilla, guantes y gorra y mantener limpias la mesa y las herramientas del laboratorio para evitar que la nucleasa en el medio ambiente afecte el experimento. Este método experimental se utiliza actualmente en la práctica en nuestro laboratorio.
Su objetivo es establecer nuevos métodos diagnósticos y terapéuticos para la nefropatía por IGA.
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Este estudio presenta un método confiable para detectar los niveles de expresión de microARN en los riñones de un modelo murino de nefropatía por IgA. El método permite investigar la participación de los microARN en la nefropatía por IgA sin necesidad de biopsias renales humanas.
Este protocolo permite a los equipos de I+D de biofármacos analizar la expresión de microARN en un modelo murino validado de nefropatía por IgA, apoyando la validación de dianas y la reducción del riesgo mecanicista en programas para enfermedades renales. Al proporcionar un método reproducible para detectar niveles alterados de microARN sin necesidad de biopsias humanas, facilita el descubrimiento temprano de biomarcadores y dianas terapéuticas con una mayor confianza predictiva. El enfoque se alinea con los esfuerzos en fase de descubrimiento para investigar los mecanismos de la enfermedad y priorizar candidatos para el desarrollo preclínico.
El método se integra en la fase inicial del descubrimiento, apoyando la comprobación de hipótesis en la validación de dianas y generando resultados cuantitativos para flujos de trabajo de cribado y análisis que orientan las decisiones de identificación de compuestos prometedores.