6 de agosto de 2020
Este protocolo presenta el ensayo de brotación coroides, un modelo ex vivo de proliferación microvascular. Este ensayo se puede utilizar para evaluar las vías implicadas en la proliferación de micro vasos corooidales y evaluar los tratamientos farmacológicos utilizando tejido de ratón de tipo salvaje y modificado genéticamente.
Este ensayo de coroides es altamente reproducible y pertinente para la investigación de la angiogénesis coroidea y la degeneración macular relacionada con la edad, DMAE, y puede complementar los estudios in vivo del comportamiento microvascular. Este ensayo se puede utilizar para seleccionar compuestos como posibles tratamientos para la DMAE neovascular o para evaluar las vías implicadas en la neovascularización coroidea utilizando tejido de ratón de tipo salvaje y modificado genéticamente. Para comenzar, agregue cinco mililitros de penicilina, estreptomicina y 10 y cinco mililitros de suplementos disponibles comercialmente hasta 500 mililitros de medio clásico completo con suero, luego alícuotas 50 mililitros del medio, descongele el extracto de membrana basal o BME durante la noche en un refrigerador a dos a ocho grados centígrados.
Ponga una alícuota de medio clásico completo sobre hielo. Limpie el microscopio de disección, las pinzas y las tijeras con etanol al 70%. Preparar placas de cultivo celular y colocar una en el microscopio de disección y la otra en hielo.
A continuación, añade 10 mililitros de medium clásico completo a cada plato. Mantenga los ojos en medio clásico completo en hielo antes de la disección. Retire el tejido conectivo y el nervio óptico y luego use una microtijera para cortar circunferencialmente 0,5 milímetros detrás del limbo corneal.
Retirar la córnea del complejo iris, vítreo y hasta el cristalino. Hacer una incisión de un milímetro perpendicular al borde cortado hacia el nervio óptico y cortar una banda circunferencial de un milímetro de ancho, luego separar las regiones central y periférica del complejo. Use fórceps para pelar la retina del complejo esclerótico coroideo del EPR.
Mantenga la banda periférica de la coroides en un medio clásico completo sobre hielo. Aísla el otro ojo y repite el proceso para cortar una segunda banda. Corta la banda circular en cinco o seis piezas cuadradas aproximadamente iguales.
Agregue 30 microlitros de BME descongelado en el centro de cada pocillo de una placa de cultivo de tejido de 24 pocillos. Asegúrese de que la gota de BME forme una cúpula convexa en la parte inferior de la placa sin tocar los bordes. Coloque el pañuelo en el centro del BME.
No aplanar la planta de coroides X. Deje que el tejido se expanda dentro del BME. Incuba la placa a 37 grados centígrados durante 10 minutos para que el gel se solidifique, luego agrega 500 microlitros de medio clásico completo en cada pocillo.
Cambia el medio clásico cada dos días. La brotación de la coroides se puede observar después de tres días con un microscopio. Abra la imagen de brote de coroides con la imagen J y verifique la imagen, el tipo y ocho bits con escala de grises.
A continuación, optimice el contraste seleccionando la imagen, ajuste, el contraste de brillo y ajustándolo. Utilice la función de varita mágica para delinear y eliminar el tejido coroideo que está presente en el centro de los brotes. Elimina el fondo de la imagen con las herramientas de selección gratuitas.
A continuación, vaya a la imagen, ajuste el umbral y use la función de umbral para definir los brotes microvasculares en el fondo en la periferia. Haga clic en F2 y aparecerá un resumen. Haga clic en Guardar para guardar una imagen del área seleccionada en la misma carpeta que la imagen original para futuras referencias.
Después de medir un grupo de muestras, copie los datos registrados para su análisis. Este protocolo se utilizó para examinar y cuantificar la brotación de la coroides en ratones C 57, seis J negros desde el día tres hasta el día seis. En un caso representativo, el área de brotación coroidea fue de 0,38, 1,47, 5,62 y 10,09 milímetros cuadrados a los días tres, cuatro, cinco y seis, respectivamente.
Los efectos de la pérdida de FFAR4 sobre la brotación vascular coroidea se evaluaron utilizando el ensayo de brotación coroidea en ratones FFAR4 cuatro knockout y FFAR4 de tipo salvaje. El área de germinación en los ratones knockout de FFAR4 aumentó el crecimiento vascular coroideo en comparación con el tipo salvaje de FFAR4 al sexto día. Además, el tratamiento con un agonista micromolar de FFAR4 redujo el área de brotación coroidea en comparación con los ratones no tratados al sexto día.
Este ensayo permite evaluar de forma reproducible el potencial antiangiogénico de los compuestos farmacológicos y la variación del papel de una vía específica en la neovascularización coroidea utilizando tejido de ratón modificado genéticamente.
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Este protocolo presenta un ensayo de brotamiento coroideo como un modelo ex vivo para estudiar la proliferación microvascular, específicamente en relación con la angiogénesis coroidea y la degeneración macular relacionada con la edad de tipo neovascular (DMAE). El ensayo permite la evaluación de las vías implicadas en la proliferación de microvasos coroideos y la valoración de tratamientos farmacológicos utilizando tejidos de ratón tanto de tipo silvestre como modificados genéticamente.
El ensayo de brotamiento coroideo *ex vivo* proporciona un modelo reproducible para evaluar la proliferación microvascular coroidea, directamente relevante para el descubrimiento de fármacos contra la degeneración macular asociada a la edad de tipo neovascular (DMAE). Permite la desvinculación mecanicista de las vías angiogénicas mediante tejidos de ratón silvestres y modificados genéticamente, apoyando la validación de dianas y la identificación de compuestos prometedores en las líneas de investigación oftalmológica. El ensayo conecta la biología del descubrimiento con la evaluación preclínica al cuantificar la dinámica de brotamiento en un sistema de explante tisular fisiológicamente relevante.
El ensayo se integra en la continuidad del descubrimiento en oftalmología, desde la validación del blanco hasta la optimización del fármaco líder y las pruebas preclínicas de eficacia, especialmente para estrategias antiangiogénicas en la DMAE.