Name: Modelo de oclusión traqueal fetal transuterina en ratones (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-02-05T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 31 s
Description: Aprende la técnica de oclusión traqueal fetal transuterina en ratones para estudiar la hernia diafragmática congénita y el desarrollo pulmonar. Este modelo reversible reduce la mortalidad animal y permite investigaciones genéticas avanzadas.

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Esta investigación no recibió ninguna subvención específica de las agencias de financiación en los sectores público, comercial o sin fines de lucro. Todos los autores han hecho contribuciones sustanciales a la concepción y el diseño del estudio, adquisición, análisis e interpretación de datos, redactando el artículo y revisándolo para obtener contenido intelectual importante y la aprobación final de la versión que se presentará. Los autores agradecen a Can Sabuncuoğlu por sus amables esfuerzos en la producción de la obra de arte de la técnica quirúrgica.

Todos los experimentos han cumplido con la Guía de Los Institutos Nacionales de Salud para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio (Nih Publications No. 80023, revisado en 1978). El procedimiento fue aprobado con el protocolo de la UICN #2016-0068 por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Fundación de Investigación Infantil de Cincinnati.
1. Preparación
<ol><li>Para aparearse con ratones tipo salvaje (WT) C57BL/6 emparejados a la edad, colóquelos en la misma jaula a las 6:00 p.m. y sepáralos a las 9:00 a.m. del día siguiente.</li>
	<li>Para determinar el día embrionario 0 (E0), mira el tapón vaginal, que tiene una zona exterior homogénea unida a la pared vaginal y una zona interna que es fibrosa e incluye algunos espermatozoides que forman masas enredadas mezcladas con las fibras del material del enchufe.</li>
	<li>Registre el peso de los ratones en el momento del apareamiento.</li>
	<li>Vuelva a pesar a los ratones en E10 para garantizar el embarazo continuo.</li>
	<li>Realice la cirugía en E16.5 (etapa canalicular temprana).</li>
	<li>Esterilizar los instrumentos que se van a utilizar durante la cirugía: tijeras, soporte de aguja, fórceps, abrazaderas y cuchillos y asas quirúrgicas.</li>
	<li>Pre-calentar la plataforma de cirugía a 24 °C y preparar solución salina caliente (24 °C) antes de la cirugía.</li>
	<li>Crea un ambiente cálido para la recuperación y deja comida húmeda dentro de la jaula para la alimentación temprana.</li>
	<li>Quédese con los animales operados hasta que puedan alimentarse.</li>
	<li>Mantenga a los ratones operados solos en sus jaulas individuales después de la cirugía.</li>
</ol>2. Anestesia
<ol><li>Aplicar subcutánea 0,1 mg/kg de buprenorfina a las presas embarazadas 1 h antes del procedimiento.</li>
	<li>Utilice inhalado 5 mL/h de isoflurano para inducción y 2 mL/h continuamente durante el procedimiento de anestesia.</li>
	<li>Monitoree los movimientos de las barbillas de los ratones embarazadas.</li>
</ol>3. Laparotomía
<ol><li>Limpie la superficie abdominal con alcohol y povidone-yodo. Mantenga condiciones estériles durante toda la operación.</li>
	<li>Realice una incisión vertical para la laparotomía de las presas embarazadas. Corte todas las capas por separado.</li>
	<li>Identifique los cuernos uterinos a cada lado.</li>
	<li>Determine los fetos candidatos para la cirugía. NOTA: No opere en los fetos más cercanos a la vagina.</li>
	<li>Operar en dos fetos en cada cuerno uterino si hay un número par de fetos a cada lado (4 la mayoría de las veces), y en 1 feto en cada cuerno uterino si hay un número impar del útero(3 la mayor parte del tiempo).</li>
</ol>4. Oclusión traqueal
<ol><li>Utilice gafas de ampliación de 2,5x para la visualización.</li>
	<li>Coloque el cuerno uterino de forma transversal.</li>
	<li>Tome los cachorros, mirando hacia arriba, entre dos dedos usando los ojos de los cachorros y la cola como guía para colocar el feto.</li>
	<li>Aplique presión suave en la cabeza del cachorro para permitir la extensión de la cabeza y, por lo tanto, la visualización del cuello.</li>
	<li>Utilice una sutura de polipropileno 6.0 con una aguja atraumática para realizar TO (Figura 1). Mantenga la placenta en el lado y lejos de los puntos de entrada y salida de la aguja.</li>
	<li>Inserte la aguja transversalmente a través del lado del útero lejos de la placenta a través de la parte anterior de 1/3rd del cuello.</li>
	<li>Mueva suavemente la aguja hasta la línea media del cuello y diríjala a la parte anterior, luego salga del cuello entre la tráquea y frente a la vaina carótida y el útero.</li>
	<li>Anudar la sutura, teniendo cuidado de mantener la integridad de las membranas y la pared uterina, y mantener el cordón umbilical seguro durante el anudamiento.</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61772/61772fig01.jpg"> Figura 1: Oclusión traqueal. (A) La sutura transuterina que pasa a través del cuello. (B) Representación esquemática de las estructuras después de que la sutura pase a través y antes del nudo. Abreviaturas: C = Arteria carótida; J = Vena yugular; T =Trachea; E = Esófago; V = Vértebra. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61772/61772fig01large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
5. Cierre de pared abdominal
<ol><li>Reemplace el cuerno uterino en el abdomen.</li>
	<li>Inyecte 2 ml de solución salina estéril caliente en la cavidad peritoneal antes del cierre.</li>
	<li>Ponga una sutura de poliglactina 5/0 para cerrar la pared abdominal y cierre la piel con una sutura de seda que no funcione.</li>
	<li>Aplicar 0,1 mg/kg de buprenorfina por vía intraperitoneally para la analgesia, y permitir la recuperación de la presa en una incubadora caliente.</li>
</ol>6. Cosecha
<ol><li>Aplique anestesia en la presa embarazada y coseche todos los fetos en E18.5 por cesárea.</li>
	<li>Compruebe la viabilidad de los fetos observando los movimientos de los fetos.</li>
	<li>Utilice al menos dos técnicas diferentes para la eutanasia: insuficiencia de dióxido de carbono y dislocación cervical.</li>
	<li>Retire los cuerpos según la regulación del laboratorio veterinario.</li>
	<li>Pesar todos los fetos.</li>
	<li>Realice una incisión vertical en el tórax para la toracotomía para extirpar los pulmones.</li>
	<li>Disecciona los pulmones de los embriones y sopesa para calcular la relación peso total pulmón-cuerpo (LBWR = (peso pulmonar izquierdo + peso pulmonar derecho)/peso corporal x100).</li>
</ol>7. Histología
<ol><li>Congele los tejidos en nitrógeno líquido, compuesto de temperatura de corte óptimo y hielo seco.</li>
	<li>Corte las muestras en secciones de 10 μm usando un criostato y colóqueslas en diapositivas recubiertas de poli-lisina.</li>
	<li>Hornee los toboganes a 60 °C durante la noche, y manche las diapositivas horneadas con hematoxilina y eosina antes de montarlas para la adquisición de imágenes a una ampliación de 10-20x usando un microscopio de campo ancho.</li>
</ol>8. Procesamiento de tejidos para análisis de proteínas y ADN
<ol><li>Congelar los pulmones fetales diseccionados y homogeneizarlos en 300 μL de amortiguador de ensayo de radioinmunoprecipitación. Centrífuga a 4 °C durante 5 min a 18.000 × g.</li>
	<li>Extraer y cuantificar proteínas, ADN y ARN10,12.</li>
</ol>

<ol><li>Wright, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+PaedSurg+Research+Collaboration.+Management+and+outcomes+of+gastrointestinal+congenital+anomalies+in+low%2C+middle+and+high+income+countries%3A+protocol+for+a+multicentre%2C+international%2C+prospective+cohort+study%5BTitle%5D)+AND+%22BMJ+Open%22%5BJournal%5D)">Global PaedSurg Research Collaboration. Management and outcomes of gastrointestinal congenital anomalies in low, middle and high income countries: protocol for a multicentre, international, prospective cohort study.</a> BMJ Open. 9, 030452(2019).</li>
<li>Aydin, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+approach+for+prenatally+diagnosed+congenital+anomalies+that+requires+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Turkish+Clinics+Journal+of+Gynecology+and+Obstetrics%22%5BJournal%5D)">Current approach for prenatally diagnosed congenital anomalies that requires surgery.</a> Turkish Clinics Journal of Gynecology and Obstetrics. 27, 193-199 (2016).</li>
<li>Nolan, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemorrhage+after+on-ECMO+repair+of+CDH+is+equivalent+for+muscle+flap+and+prosthetic+patch%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pediatric+Surgery%22%5BJournal%5D)">Hemorrhage after on-ECMO repair of CDH is equivalent for muscle flap and prosthetic patch.</a> Journal of Pediatric Surgery. 54 (10), 2044-2047 (2019).</li>
<li>Aydin, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Congenital+diaphragmatic+hernia%3A+the+good%2C+the+bad%2C+and+the+tough%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Surgery+International%22%5BJournal%5D)">Congenital diaphragmatic hernia: the good, the bad, and the tough.</a> Pediatric Surgery International. 35 (3), 303-313 (2019).</li>
<li>Aydın, E., Özler, O., Burns, P., Lim, F. Y., Peiró, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Left+congenital+diaphragmatic+hernia-associated+musculoskeletal+deformities%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Surgery+International%22%5BJournal%5D)">Left congenital diaphragmatic hernia-associated musculoskeletal deformities.</a> Pediatric Surgery International. 35 (11), 1265-1270 (2019).</li>
<li>Aydın, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((When+primary+repair+is+not+enough%3A+a+comparison+of+synthetic+patch+and+muscle+flap+closure+in+congenital+diaphragmatic+hernia%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Surgery+International%22%5BJournal%5D)">When primary repair is not enough: a comparison of synthetic patch and muscle flap closure in congenital diaphragmatic hernia.</a> Pediatric Surgery International. 36 (4), 485-491 (2020).</li>
<li>Wilson, M., Difiore, J. W., Peters, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+fetal+tracheal+ligation+prevents+the+pulmonary+hypoplasia+associated+with+fetal+nephrectomy%3A+Possible+application+for+congenital+diaphragmatic+hernia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pediatric+Surgery%22%5BJournal%5D)">Experimental fetal tracheal ligation prevents the pulmonary hypoplasia associated with fetal nephrectomy: Possible application for congenital diaphragmatic hernia.</a> Journal of Pediatric Surgery. 28 (11), 1433-1440 (1993).</li>
<li>Mudri, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+tracheal+occlusion+on+Wnt+signaling+in+a+rabbit+model+of+congenital+diaphragmatic+hernia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pediatric+Surgery%22%5BJournal%5D)">The effects of tracheal occlusion on Wnt signaling in a rabbit model of congenital diaphragmatic hernia.</a> Journal of Pediatric Surgery. 54 (5), 937-944 (2019).</li>
<li>Khan, P. A., Cloutier, M., Piedboeuf, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracheal+occlusion%3A+a+review+of+obstructing+fetal+lungs+to+make+them+grow+and+mature%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Medical+Genetics.+Part+C%2C+Seminars+in+Medical+Genetics%22%5BJournal%5D)">Tracheal occlusion: a review of obstructing fetal lungs to make them grow and mature.</a> American Journal of Medical Genetics. Part C, Seminars in Medical Genetics. 145 (2), 125-138 (2007).</li>
<li>Chomczynski, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+reagent+for+the+single-step+simultaneous+isolation+of+RNA%2C+DNA+and+proteins+from+cell+and+tissue+samples%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">A reagent for the single-step simultaneous isolation of RNA, DNA and proteins from cell and tissue samples.</a> Biotechniques. 15 (3), 532-537 (1993).</li>
<li>Beurskens, N., Klaassens, M., Rottier, R., De Klein, A., Tibboel, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Linking+animal+models+to+human+congenital+diaphragmatic+hernia%5BTitle%5D)+AND+%22Birth+Defects+Research+Part+A%3A+Clinical+and+Molecular+Teratology%22%5BJournal%5D)">Linking animal models to human congenital diaphragmatic hernia.</a> Birth Defects Research Part A: Clinical and Molecular Teratology. 79 (8), 565-572 (2007).</li>
<li>Varisco, B. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Excessive+reversal+of+epidermal+growth+factor+receptor+and+ephrin+signaling+following+tracheal+occlusion+in+rabbit+model+of+congenital+diaphragmatic+hernia%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Medicine%22%5BJournal%5D)">Excessive reversal of epidermal growth factor receptor and ephrin signaling following tracheal occlusion in rabbit model of congenital diaphragmatic hernia.</a> Molecular Medicine. 22, 398-411 (2016).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Este método describe un procedimiento quirúrgico de oclusión traqueal fetal en ratones y su impacto en el desarrollo pulmonar. Hay algunos pasos críticos en el protocolo que deben realizarse cuidadosamente para lograr un to correctamente. El calor de la plataforma en la que se lleva a cabo la cirugía y la solución salina introducida en la cavidad peritoneal es crucial para la progresión del embarazo. Además, se debe aplicar una ligera presión en la cabeza de los cachorros para garantizar la exposición del cuello.
<p ...

La hernia diafragmática congénita (CDH) ocurre en 1:2500 embarazos y da como resultado hipoplasia pulmonar e hipertensión pulmonar neonatal1,2,3,4,5,6. La oclusión traqueal fetal (TO) es una terapia prenatal establecida en pacientes graves con CDH que involucran fetoscopia en la semanagestacional 26-30 en la que se coloca un globo justo por encima de la carina y luego se retira en la semanagestacional 32. Este TEMPORAL PARA INducir el crecimiento pulmonar fetal y mejora la supervivencia. El síndrome congénito de obstrucción de las vías respiratorias altas es una condición letal asociada con la hiperplasia pulmonar, que inspiró a los cirujanos a realizar la oclusión artificial de la tráquea para promover la retención del líquido epitelial secreto. Esta oclusión aumentó la presión luminal y indujo el crecimiento pulmonar7. Sin embargo, la oclusión debe revertirse para permitir la maduración de células epiteliales.
Varios modelos animales de CDH y TO - ovino, conejo, rata y ratón - han sido desarrollados para entender la fisiopatología de CDH y TO. Todos tienen sus propias ventajas y desventajas como la dificultad de la técnica, el tamaño del animal, el costo, las altas tasas de mortalidad y la disponibilidad de herramientas genéticas. Aunque la técnica quirúrgica utilizada para el modelo ovino es muy similar a la utilizada en los seres humanos y podría revertirse, los principales inconvenientes de este modelo son el gasto del animal, el largo período gestacional y el número limitado de cirugías posibles. El modelo de conejo tiene un período gestacional más corto y es menos costoso que el modelo de oveja. Sin embargo, el modelo de conejo es irreversible8,9. El modelo murino tiene el costo más bajo, el mayor número de fetos por embarazo, el genoma mejor caracterizado y herramientas ampliamente disponibles para análisis celulares y moleculares. Sin embargo, un inconveniente clave es la falta de reversibilidad de la TO, evitando la comprensión completa del impacto de TO. En este documento, se presenta un método que combina todas las ventajas de los modelos anteriormente mencionados y crea un modelo TO de roedor fácil, potencialmente reversible y mínimamente invasivo.

<table><tbody><tr><td>Buprenorfina&nbsp;</td><td>Par Pharmaceutical</td><td>NDC 42023-179-05</td><td>Para anestesia regional</td></tr><tr><td>Isoflurano&nbsp;</td><td>&nbsp; Halocarbon Life Sciences</td><td>NDC 66794-017-25</td><td>Para anestesia general</td></tr><tr><td>Gafas de aumento EE</td><td>. UU. Médico-quirúrgico</td><td>SLR-250LBLK</td><td>Al menos 2.5x</td></tr><tr><td>Microscopio Nikon 90i</td><td>Nikon</td><td>3417</td> Kit de tejido de nucleospina <td>de fluorescencia motorizada</td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>Macherey-Nagel, D&uuml; ren, Alemania</td><td>740952.5</td><td>Kit</td></tr> de <tr><td>ensayo de proteínas BCA Pierce para aislamiento de ADN&nbsp;</td><td>Thermo Fisher, IL, EE. UU.</td><td>23225</td><td>Cuantificación de proteínas</td></tr><tr><td>Sutura de poliglactina</td><td>Ethicon</td><td>VCP451H</td><td>4-0, 24 mm, portaobjetos de</td></tr><tr><td>polilisina de corte&nbsp;</td><td>VWR&nbsp;</td><td>48382-117</td><td>Portaobjetos de adherencia para microscopio Sutura de</td></tr><tr><td>polipropileno</td><td>Ethicon</td><td>Y432H</td><td>6-0, 13 mm 1/2c Tampón RIPA de punta cónica</td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich, Missouri, EE. UU</td>. <td>R0278-50ml</td><td>Aislamiento</td>de</tr><tr><td>proteínas Sutura de seda</td><td>Ethicon</td><td></td><td>VCP682G 4-0, 24 mm, corte</td></tr><tr><td>Trizol&nbsp;</td><td>Invitrogen&nbsp;</td><td>15596026</td><td>Aislamiento de ARN</td></tr></tbody></table>

modelo de oclusión traqueal fetal transuterina en ratones

Transuterine Fetal Tracheal Occlusion Model in Mice

La oclusión traqueal fetal (TO), una modalidad de tratamiento establecida, promueve el crecimiento pulmonar fetal y la supervivencia en hernia diafragmática congénita grave (CDH). Después de TO, la retención del líquido epitelial secreto aumenta la presión luminal e induce el crecimiento pulmonar. Se han definido varios modelos animales para entender la fisiopatología de CDH y TO. Todos tienen sus propias ventajas y desventajas como la dificultad de la técnica, el tamaño del animal, el costo, las altas tasas de mortalidad y la disponibilidad de herramientas genéticas. En este documento, se describe un nuevo modelo transuterino de TO fetal murino. Los ratones embarazadas fueron anestesiados y el útero expuesto a través de una laparotomía de línea media. La tráquea de fetos seleccionados se ligaron con una sola sutura transuterina colocada detrás de la tráquea, una arteria carótida y una vena yugular. La presa fue cerrada y se le permitió recuperarse. Los fetos fueron recogidos justo antes de la parto. La relación entre pulmón y peso corporal en los fetos TO fue mayor que la de los fetos de control. Este modelo proporciona a los investigadores una nueva herramienta para estudiar el impacto de to y aumento de la presión luminal en el desarrollo pulmonar.

Este estudio examinó 37 fetos: 20 (54,1%) como TO frente a 17 (45,9%) como control. Como la tráquea no podía ser ocluida en 4 fetos en el grupo TO, fueron excluidos del estudio. No hubo ninguna diferencia significativa en la mortalidad en ambos grupos: 4 fetos (25%) en el grupo TO y 2 fetos (12%) en el grupo de control (p=0,334, relación de cuotas (OR) 2,5, intervalo de confianza del 95% (CI) 0,39-16,05). El peso corporal medio, el peso pulmonar y la relación entre pulmón y peso corporal ...

Varios modelos animales de hernia diafragmática congénita y oclusión traqueal fetal presentan ventajas y desventajas con respecto a cuestiones éticas, costo, dificultad quirúrgica, tamaño, tasas de supervivencia y disponibilidad de herramientas genéticas. Este modelo proporciona una nueva herramienta para estudiar el impacto de la oclusión traqueal y el aumento de la presión luminal en el desarrollo pulmonar.

Modelo de oclusión traqueal fetal transuterina en ratones

Fetal tracheal occlusion (TO), an established treatment modality, promotes fetal lung growth and survival in severe congenital diaphragmatic hernia (CDH). ...

Las ventajas más importantes de esta técnica son la reversibilidad, la reducción del coste de los animales y el mantenimiento, y un período de embarazo más corto. Además, la mortalidad animal se reduce porque no hay necesidad de histerectomía. Y hay oportunidades más amplias para el trabajo genético.Esta técnica se puede utilizar para investigar la fisiopatología de la hernia diafragmática congénita. También se puede aplicar a la comprensión de otras enfermedades en el pulmón, como vacas e hipoplasia pulmonar. Comience permitiendo que los ratones se apareen en la misma jaula de 6:00 PM a 9:00 AM al día siguiente.Para determinar E0, observe el tapón vaginal que tiene una zona exterior homogénea unida a la pared vaginal y una zona interna que es fibrosa e incluya algunos espermatozoides que forman masas entrelazadas mezcladas con las fibras del material del enchufe. Registre el peso de los ratones en el momento del apareamiento y en E10 para asegurar el embarazo continuo y realizar la cirugía en E16.5. Esterilizar los instrumentos que se van a utilizar durante la cirugía.Precaliente la plataforma de cirugía a 24 grados Centígrados y prepare salina caliente antes de la cirugía. Crea un ambiente cálido para la recuperación y deja comida húmeda dentro de la jaula para la alimentación temprana. Limpie la superficie abdominal con alcohol y yodo povidona y mantenga condiciones estériles durante toda la operación.Realice una incisión vertical para la laparotomía de las presas embarazadas y corte todas las capas por separado. Identifique los cuernos uterinos de cada lado y determine los fetos candidatos para la cirugía. Operar en dos fetos en cada cuerno uterino si hay un número par de fetos a cada lado.Y en un feto en cada cuerno uterino si hay un número impar. Usando gafas de ampliación 2X para la visualización, coloque el cuerno uterino de una manera transversal. Coloque a los cachorros mirando hacia arriba entre dos dedos usando los ojos y la cola como guía.Aplique presión suave en la cabeza del cachorro para permitir la extensión de la cabeza y la visualización del cuello. Realizar oclusión traqueal o TO utilizando una aguja atraumática y una sutura de polipropileno de 6 por 0. Mantenga la placenta en el lado y lejos de los puntos de entrada y salida de la aguja.Inserte la aguja transversalmente a través del lado del útero, lejos de la placenta a través de la parte anterior de un tercio del cuello. A continuación, mueva la aguja suavemente a la línea media del cuello. Dirigirlo a la parte anterior.A continuación, salga del cuello entre la tráquea y frente a la esquela carótida y el útero. Anudar la sutura, teniendo cuidado de mantener la integridad de las membranas y la pared uterina. Reemplace el cuerno uterino en el abdomen e inyecte dos mililitros de solución salina estéril caliente en la cavidad peritoneal antes del cierre.Coloque una sutura de poliglactina de 5 por 0 para cerrar la pared abdominal. Y cierra la piel con una sutura de seda no running. Aplicar 0,1 microgramos por kilogramo de buprenorfina por vía intraperitoneally para la analgesia y permitir que la presa se recupere en una incubadora caliente.Observe que el animal operado puede alimentarse y mantenerlo solo en su jaula individual. Cosecha todos los fetos por E18.5 por cesárea y comprueba su viabilidad observando sus movimientos. Pesa todos los fetos.Realice una incisión vertical en el tórax para una toracotomía para diseccionar los pulmones. Y pesarlos para calcular la relación peso total pulmón-cuerpo. Enganche el tejido en nitrógeno líquido, compuesto de temperatura de corte óptimo y hielo seco.Corta las muestras en secciones de 10 micrómetros usando un criostato y colócalos en toboganes recubiertos de poli lisina. Hornea los toboganes durante la noche a 60 grados Centígrados y mancha los toboganes horneados con hematoxilina y eosina. Imagen de las diapositivas a una ampliación de 10 a 20X, utilizando un microscopio de campo ancho.Para análisis de proteínas y ADN, enganche el tejido y homogeneizarlo en 300 microlitros de amortiguador de ensayo de radioinmunoprecipitación. Centrífuga a 18.000 x g y 4 grados Celsius durante cinco minutos. A continuación, extraiga y cuantifique proteínas, ADN y ARN.El peso corporal medio, el peso pulmonar y el LBWR eran más altos en el grupo TO que en el grupo de control. Las cantidades de ADN pulmonar y la relación ADN/proteína fueron más altas en el grupo TO. No se observó ninguna diferencia en el ARN pulmonar, y las cantidades de proteínas fueron más bajas en el grupo TO que en el grupo de control.Los análisis histológicos de los pulmones de control E18.5 mostraron la etapa saccular tardía o temprana del desarrollo pulmonar con espacios aéreos en desarrollo e intersticios engrosado entre superficies epiteliales. Los pulmones del grupo TO habían dilatado los espacios aéreos centrales y distales con un número subjetivamente mayor de núcleos. Al intentar este protocolo, fijamos las suturas de una manera que los ojos del feto son visibles y el cuello se extiende para que la aguja no interrumpa las estructuras ajustadas.La eliminación de las estructuras al renacimiento del feto en el ventilador de nitrilo y los modelos knockout de CDH serán las futuras aplicaciones de esta técnica.

transuterine-fetal-tracheal-occlusion-model-in-mice

Research

Investigación

JoVE Journal

Developmental Biology

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Este video muestra el procedimiento de oclusión traqueal transuterina de un feto de ratón en una rata embarazada. Este modelo se puede utilizar para estudiar el impacto de la tráquea ocluida en el desarrollo pulmonar.

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Intubación endotraqueal en ratones<em&gt; Vía</em&gt; La laringoscopia directa utilizando un otoscopio

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El objetivo de este artículo es describir un método refinado de intubación del ratón de laboratorio. El método no es invasivo y, por lo tanto, ideal para estudios que requieren monitorización en serie de la función respiratoria y/o inscripción de tratamientos en el pulmón.

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Un modelo quirúrgico de ratón para crear una lesión por isquemia de reperfusión (RI) del pulmón izquierdo mientras se mantiene la ventilación y se evita la hipoxia.

Un modelo de ratón de intubación orotraqueal y cirugía de reperfusión de isquemia pulmonar ventilada

El modelo de trasplante traqueal intrapulmonar murino (IPTT, por sus siglas en inglés) es valioso para estudiar la enfermedad obliterante de las vías respiratorias (OAD, por sus siglas en inglés) después del trasplante de pulmón. Ofrece información sobre el comportamiento inmunológico y angiogénico específico del pulmón en la obliteración de las vías respiratorias después del alotrasplante con alta reproducibilidad. A continuación, describimos el procedimiento IPTT y sus resultados esperados.

Trasplante de tráquea intrapulmonar murina: un modelo para investigar la enfermedad obliterante de las vías respiratorias después de un trasplante de pulmón

Aprende la técnica de oclusión traqueal fetal transuterina en ratones para estudiar la hernia diafragmática congénita y el desarrollo pulmonar. Este modelo reversible reduce la mortalidad animal y permite investigaciones genéticas avanzadas.

Modelo de oclusión traqueal fetal transuterina en ratones

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