Name: Orientación de ARN ubicuo y específico del tejido en Drosophila Melanogaster utilizando CRISPR / CasRx (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-02-05T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 37 s
Description: Aprende a dirigir ARN de forma ubicua y específica de tejido en Drosophila melanogaster utilizando el sistema CRISPR/CasRx. Este método permite la reducción programable de transcritos con evaluación fenotípica y molecular in vivo.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Este trabajo fue apoyado en parte por la financiación de una subvención del Programa de Genes Seguros de DARPA (HR0011-17-2-0047) y los premios de los NIH (R21RAI149161A, DP2AI152071) otorgados a O.S.A.

<ol><li>Adli, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+CRISPR+tool+kit+for+genome+editing+and+beyond%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Communications%22%5BJournal%5D)">The CRISPR tool kit for genome editing and beyond.</a> Nat Communications. 9, 1911(2018).</li>
<li>Abudayyeh, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((C2c2+is+a+single-component+programmable+RNA-guided+RNA-targeting+CRISPR+effector%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">C2c2 is a single-component programmable RNA-guided RNA-targeting CRISPR effector.</a> Science. 353 (6299), 5573(2016).</li>
<li>East-Seletsky, A., O'Connell, M., Burstein, D., Knott, G., Doudna, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+Targeting+by+Functionally+Orthogonal+Type+VI-A+CRISPR-Cas+Enzymes%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Cell%22%5BJournal%5D)">RNA Targeting by Functionally Orthogonal Type VI-A CRISPR-Cas Enzymes.</a> Molecular Cell. 66 (3), 373-383 (2017).</li>
<li>Konermann, S., Lotfy, P., Brideau, N., Oki, J., Shokhirev, M., Hsu, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptome+Engineering+with+RNA-Targeting+Type+VI-D+CRISPR+Effectors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Transcriptome Engineering with RNA-Targeting Type VI-D CRISPR Effectors.</a> Cell. 173 (3), 665-676 (2018).</li>
<li>Buchman, A., Brogan, D., Sun, R., Yang, T., Hsu, P., Akbari, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Programmable+RNA+Targeting+Using+CasRx+in+Flies%5BTitle%5D)+AND+%22The+CRISPR+Journal%22%5BJournal%5D)">Programmable RNA Targeting Using CasRx in Flies.</a> The CRISPR Journal. 3 (3), 164-176 (2020).</li>
<li>Kushawah, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CRISPR-Cas13d+Induces+Efficient+mRNA+Knockdown+in+Animal+Embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Cell%22%5BJournal%5D)">CRISPR-Cas13d Induces Efficient mRNA Knockdown in Animal Embryos.</a> Developmental Cell. 54 (6), 805-817 (2020).</li>
<li>Abudayyeh, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+targeting+with+CRISPR-Cas13%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">RNA targeting with CRISPR-Cas13.</a> Nature. 550, 280-284 (2017).</li>
<li>Perrimon, N., Ni, J., Perkins, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+RNAi%3A+today+and+tomorrow%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Perspectives+in+Biology%22%5BJournal%5D)">In vivo RNAi: today and tomorrow.</a> Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2, 003640(2010).</li>
<li>Dietzl, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+genome-wide+transgenic+RNAi+library+for+conditional+gene+inactivation+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A genome-wide transgenic RNAi library for conditional gene inactivation in Drosophila.</a> Nature. 448, 151-156 (2007).</li>
<li>Ni, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Drosophila+resource+of+transgenic+RNAi+lines+for+neurogenetics%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">A Drosophila resource of transgenic RNAi lines for neurogenetics.</a> Genetics. 182 (4), 1089-1100 (2009).</li>
<li>Ni, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+genome-scale+shRNA+resource+for+transgenic+RNAi+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">A genome-scale shRNA resource for transgenic RNAi in Drosophila.</a> Nature Methods. 8, 405-407 (2011).</li>
<li>Ni, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vector+and+parameters+for+targeted+transgenic+RNA+interference+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Vector and parameters for targeted transgenic RNA interference in Drosophila melanogaster.</a> Nature Methods. 5, 49-51 (2008).</li>
<li>Heigwer, F., Port, F., Boutros, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+Interference+%28RNAi%29+Screening+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">RNA Interference (RNAi) Screening in Drosophila.</a> Genetics. 208 (3), 853-874 (2018).</li>
<li>Kulkarni, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+of+off-target+effects+associated+with+long+dsRNAs+in+Drosophila+melanogaster+cell-based+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Evidence of off-target effects associated with long dsRNAs in Drosophila melanogaster cell-based assays.</a> Nature Methods. 3, 833-838 (2006).</li>
<li>Ma, Y., Creanga, A., Lum, L., Beachy, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prevalence+of+off-target+effects+in+Drosophila+RNA+interference+screens%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Prevalence of off-target effects in Drosophila RNA interference screens.</a> Nature. 443, 359-363 (2006).</li>
<li>Perrimon, N., Mathey-Prevot, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Matter+arising%3A+off-targets+and+genome-scale+RNAi+screens+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Fly%22%5BJournal%5D)">Matter arising: off-targets and genome-scale RNAi screens in Drosophila.</a> Fly. 1 (1), 1-5 (2007).</li>
<li>Markstein, M., Pitsouli, C., Villalta, C., Celniker, S., Perrimon, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exploiting+position+effects+and+the+gypsy+retrovirus+insulator+to+engineer+precisely+expressed+transgenes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Genetics%22%5BJournal%5D)">Exploiting position effects and the gypsy retrovirus insulator to engineer precisely expressed transgenes.</a> Nature Genetics. 40, 476-483 (2008).</li>
<li>Champer, J., Buchman, A., Akbari, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cheating+evolution%3A+engineering+gene+drives+to+manipulate+the+fate+of+wild+populations%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Review+Genetics%22%5BJournal%5D)">Cheating evolution: engineering gene drives to manipulate the fate of wild populations.</a> Nature Review Genetics. 17 (3), 146-159 (2016).</li>
<li>Buchman, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Broad+dengue+neutralization+in+mosquitoes+expressing+an+engineered+antibody%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathogens%22%5BJournal%5D)">Broad dengue neutralization in mosquitoes expressing an engineered antibody.</a> PLoS Pathogens. 16 (4), 1008103(2020).</li>
<li>Mathur, G., Sanchez-Vargas, I., Alvarez, D., Olson, K., Marinotti, O., James, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgene-mediated+suppression+of+dengue+viruses+in+the+salivary+glands+of+the+yellow+fever+mosquito%2C+Aedes+aegypti%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Transgene-mediated suppression of dengue viruses in the salivary glands of the yellow fever mosquito, Aedes aegypti.</a> Insect Molecular Biology. 19 (6), 753-763 (2011).</li>
<li>Franz, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+RNA+interference-based+resistance+to+dengue+virus+type+2+in+genetically+modified+Aedes+aegypti%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Engineering RNA interference-based resistance to dengue virus type 2 in genetically modified Aedes aegypti.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (11), 4198-4203 (2006).</li>
<li>Yen, P., James, A., Li, J., Chen, C., Failloux, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthetic+miRNAs+induce+dual+arboviral-resistance+phenotypes+in+the+vector+mosquito+Aedes+aegypti%5BTitle%5D)+AND+%22Communications+Biology%22%5BJournal%5D)">Synthetic miRNAs induce dual arboviral-resistance phenotypes in the vector mosquito Aedes aegypti.</a> Communications Biology. 1, 11(2018).</li>
<li>Buchman, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineered+resistance+to+Zika+virus+in+transgenic+Aedes+aegypti+expressing+a+polycistronic+cluster+of+synthetic+small+RNAs%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Engineered resistance to Zika virus in transgenic Aedes aegypti expressing a polycistronic cluster of synthetic small RNAs.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 116 (9), 3656-3661 (2019).</li>
<li>Addgene. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.addgene.org/protocols/restriction-digest/">https://www.addgene.org/protocols/restriction-digest/</a> (2020).</li>
<li>Gibson, D., Young, L., Chuang, R., Venter, J., Hutchison, C., Smith, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzymatic+assembly+of+DNA+molecules+up+to+several+hundred+kilobases%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases.</a> Nature Methods. 6 (5), 343-345 (2009).</li>
<li>Addgene. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.addgene.org/protocols/pcr/">https://www.addgene.org/protocols/pcr/</a> (2020).</li>
<li>Indiana University Bloomington. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://bdsc.indiana.edu/information/recipes/bloomfood.htmL">https://bdsc.indiana.edu/information/recipes/bloomfood.htmL</a> (2020).</li>
<li>Dobin, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((STAR%3Aultrafast+universal+RNA-seq+aligner%5BTitle%5D)+AND+%22Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">STAR:ultrafast universal RNA-seq aligner.</a> Bioinformatics. 29 (1), 15-21 (2013).</li>
<li>Jiang, W., Brueggeman, A., Horken, K., Plucinak, T., Weeks, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Successful+transient+expression+of+Cas9+and+single+guide+RNA+genes+in+Chlamydomonas+reinhardtii%5BTitle%5D)+AND+%22Eukaryotic+Cell%22%5BJournal%5D)">Successful transient expression of Cas9 and single guide RNA genes in Chlamydomonas reinhardtii.</a> Eukaryotic Cell. 13 (11), 1465-1469 (2014).</li>
<li>Poe, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Robust+CRISPR%2FCas9-Mediated+Tissue-Specific+mutagenesis+reveals+gene+redundancy+and+perdurance+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Robust CRISPR/Cas9-Mediated Tissue-Specific mutagenesis reveals gene redundancy and perdurance in Drosophila.</a> Genetics. 211 (2), 459-472 (2019).</li>
<li>Port, F., Chen, H., Lee, T., Bullock, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimized+CRISPR%2FCas+tools+for+efficient+ger+mLine+and+somatic+genome+engineering+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Optimized CRISPR/Cas tools for efficient ger mLine and somatic genome engineering in Drosophila.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (29), 2967-2976 (2014).</li>
<li>Yang, S., Li, S., Li, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shortening+the+Half-Life+of+Cas9+maintains+its+gene+editing+ability+and+reduces+neuronal+toxicity%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Shortening the Half-Life of Cas9 maintains its gene editing ability and reduces neuronal toxicity.</a> Cell Reports. 25 (10), 2653-2659 (2018).</li>
<li>Port, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+large-scale+resource+for+tissue-specific+CRISPR+mutagenesis+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">A large-scale resource for tissue-specific CRISPR mutagenesis in Drosophila.</a> eLife. 9, 53865(2020).</li>
<li>Zhang, X., Tee, L., Wang, X., Huang, Q., Yang, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Off-target+Effects+in+CRISPR%2FCas9-mediated+Genome+Engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Therapy+-+Nucleic+Acids%22%5BJournal%5D)">Off-target Effects in CRISPR/Cas9-mediated Genome Engineering.</a> Molecular Therapy - Nucleic Acids. 4 (17), 264(2015).</li>
<li>Huynh, N., Depner, N., Larson, R., King-Jones, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+versatile+toolkit+for+CRISPR-Cas13-based+RNA+manipulation+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biology%22%5BJournal%5D)">A versatile toolkit for CRISPR-Cas13-based RNA manipulation in Drosophila.</a> Genome Biology. 21, 279(2020).</li>
</ol>

O.S.A es fundador de Agragene, Inc., tiene una participación accionaria y forma parte del Consejo Asesor Científico de la compañía. Los términos de este acuerdo han sido revisados y aprobados por la Universidad de California, San Diego de acuerdo con sus políticas de conflicto de intereses. Todos los demás autores no declaran intereses contrapuestos.

Con tres diseños de aplicación diferentes del sistema CasRx, este trabajo demostró in vivo la orientación de ARN programable en moscas. Las diferentes estrategias satisfacen las diferentes necesidades del proyecto, como la orientación génica endógena versus exógena y la orientación ubicua versus específica del TEJIDO. Los efectos de la orientación del ARN incluyeron cambios fenotípicos específicos del gen objetivo, reducción de la transcripción del ARN objetivo y fenotipos de letalidad ocasionales asociados con la alta expresión de la proteína CasRx y la actividad colateral. En general, estos resultados mostraron que el sistema CasRx es capaz de apuntar a la reducción de la transcripción de ARN a nivel del organismo de una manera programable y eficiente.
Uno de los factores clave en la personalización exitosa del sistema CasRx es el diseño de gRNAs. Específicamente, se prestarán atención a los siguientes consejos: la secuencia objetivo tiene una longitud de alrededor de 30 nucleótidos, la longitud de los estiramientos poli-U en la secuencia objetivo es de 4 pares de bases o menos, el contenido de GC de la secuencia objetivo está en el rango del 30% al 70%, no se predice que la secuencia objetivo forme estructuras de horquilla de ARN fuertes y la secuencia objetivo contiene una estructura secundaria o terciaria mínima de ARN predicha5.
Además de los diseños de ARNg, el paso de genética de moscas en cada protocolo también es crítico en una implementación exitosa. La presencia o falta de los fenotipos definidos transmitidos por los padres en las progenies son importantes para identificar y cuantificar los fenotipos inducidos por el sistema CasRx en las progenies transheterocigotas. Además, la configuración de cruces de control utilizando las moscas dCasRx en paralelo también es útil para descartar fenotipos no específicos en las progenies transheterocigotas.
Vale la pena señalar que estos resultados revelaron el problema de toxicidad introducido por la expresión ubicua de casRx y la proteína dCasRx en la mosca, una limitación del sistema CasRx. La expresión ubicua de CasRx o dCasRx bajo el promotor Ubiq solo, sin gRNAs, vino con costos de aptitud no triviales, ya que ni ubiq-CasRx ni ubiq-dCasRx volaron como líneas homocigotas. Por el contrario, las moscas UASt-CasRx y UASt-dCasRx pueden establecerse como poblaciones homocigotas sanas, aunque debido al diseño del esquema cruzado se mantuvieron como poblaciones de doble equilibrio, un hecho que respalda la existencia de toxicidad inducida por la expresión ubicua de la proteína CasRx. Otra evidencia de apoyo es que en experimentos de control que involucran dCasRx, que es catalíticamente inactivo, los porcentajes de moscas que llevan construcciones de dCasRx y gRNA del número total de moscas en la generación F1 fueron consistentemente inferiores al 50%, la proporción esperada basada en la genética mendeliana si no había toxicidad asociada a dCasRx. Esto indicó que la expresión ubicua de dCasRx, junto con los gRNAs, induce toxicidad en la mosca, lo que resulta en una relación de herencia inferior a la esperada. Las relaciones de herencia de las moscas transheterocigotas UASt-dCasRx, gRNA, GAL4 siguieron la genética mendeliana, lo que nuevamente sugiere la toxicidad inducida específicamente por la expresión ubicua de las proteínas CasRx y dCasRx. La toxicidad en el sistema CRISPR/Cas no es nueva. Se ha demostrado que altas cantidades de proteína Cas9 son tóxicas en varios organismos, incluidas las moscas29,30,31,32. Un estudio reciente ha desarrollado un sistema GAL4/UAS personalizado que puede ajustar la cantidad de proteína Cas9 expresada en moscas mediante la adición de un marco de lectura abierta de longitud variable entre la secuencia UAS y la secuencia Cas9 en la construcción UAS-Cas933. Por lo tanto, vale la pena explorar formas de reducir la toxicidad inducida por CasRx ajustando el nivel de expresión de la proteína CasRx.
Aparte de la toxicidad inducida por la expresión ubicua de las proteínas CasRx y dCasRx, los resultados también mostraron una letalidad vinculada a los efectos colaterales no específicos fuera del objetivo del sistema CasRx, una característica de muchos sistemas CRISPR1,2,7,34. En algunas de las moscas transheterocigotas dobles o triples que expresan gRNA de CasRx y genes no esenciales, por ejemplo, cuando se dirigen a Notch, las moscas transheterocigotas CasRx tienen niveles significativamente más bajos de tasa de supervivencia en comparación con las moscas transheterozgyous dCasRx. En el análisis de ARN-seq de estas moscas transheterocigotas casRx y que expresan ARNg, se observó tanto la reducción de los niveles de transcripción de genes diana como la reducción de transcripciones de genes no objetivo. Estos efectos colaterales fueron dependientes de CasRx y dependientes del objetivo, ya que solo se observaron en moscas transheterocigotas que expresan tanto la proteína CasRx como el ARNg. Vale la pena señalar que uno de los genes objetivo, el blanco, mostró solo una reducción limitada y no estadísticamente significativa en las transcripciones cuando el gen blanco fue atacado por CasRx, lo que contrastaba con el fenotipo de reducción de pigmento claro. Se plantea la hipótesis de que esto puede deberse al hecho de que 1) el momento de la recolección de muestras de ARN-seq no estaba bien alineado con el momento en que el gen blanco alcanza su máxima expresión durante el desarrollo temprano, y 2) la expresión localizada del gen blanco en los ojos hace que sea difícil recolectar los tejidos relevantes durante la fase de desarrollo temprano cuando solo es factible la recolección de muestras de todo el cuerpo. Para reducir la actividad colateral en el sistema CasRx, se requieren estudios futuros para comprender completamente los mecanismos subyacentes al sistema de fenómenos fuera del objetivo a nivel del organismo.
Curiosamente, un estudio reciente35 que describe las herramientas Cas13 dirigidas al ARN en moscas pareció mejorar la toxicidad general asociada con la expresión de CasRx, por varias razones posibles. En primer lugar, los autores recodificaron los transgenes Cas13 para optimizar la expresión en Drosophila y utilizaron un promotor de expresión más débil (actina 5C) en comparación con el promotor de ubiquitina utilizado en el presente estudio, lo que probablemente conduce a niveles más bajos de expresión de Cas13 y, por lo tanto, a una menor toxicidad. De hecho, esto está respaldado por las observaciones de que la expresión de CasRx y dCasRx impulsada por UASt no era, por sí misma, tóxica, ya que este estudio (y los autores en 35) no observaron ninguna letalidad obvia en las moscas UASt-CasRx. Además, estos autores codificaron sus ARNs de manera diferente en comparación con este estudio, lo que puede haber afectado su expresión y reducido la toxicidad del sistema en moscas transheterocigotas Cas13/gRNA. Por ejemplo, en su estudio se expresaron dos ARNg utilizando el promotor U6:3 y flanqueados por ARNt para permitir el procesamiento de ARNg en la maduración del ARNt sin requerir CasRx35. Por el contrario, en este estudio, los gRNAs se codificaron como matrices dirigidas a hasta 4 ubicaciones por gen e imitando la estructura endógena de la matriz Cas13 que se encuentra en las bacterias, que requiere que la enzima Cas13 procese cada gRNA. Estos diferentes enfoques pueden haber llevado a diferencias en los niveles de expresión de ARNg y otros factores que pueden tener efectos inherentes sobre la toxicidad de todo el sistema. Finalmente, Huynh et al. se dirigieron a genes diferentes a los dirigidos en el presente estudio, lo que resulta en diferencias en la interacción objetivo-Cas/gRNA y la actividad colateral y puede tener efectos sobre los niveles observados de letalidad. Estas diferencias en la toxicidad observada justifican una mayor investigación para identificar formas en que se pueden mejorar los sistemas generales.
En general, este estudio es la primera demostración de un sistema Cas funcional codificable programable dirigido a ARN codificado genéticamente en D. melanogaster, aunque se requerirá una mayor optimización del sistema CasRx (en línea con lo que se informa35) para reducir aún más la letalidad asociada fuera del objetivo y aumentar la eficacia de la escisión CasRx en el objetivo. La orientación de ARN con enzimas Cas es un campo en rápida evolución con muchas aplicaciones potenciales que van desde el control de insectos vectores hasta usos terapéuticos1,2,3,4,5,6,7, y este protocolo ofrece un paquete de inicio para cualquier persona interesada en diseñar su primer sistema CasRx en moscas, al tiempo que es compatible con la personalización y la optimización adicional del sistema. Los ejemplos presentados aquí demuestran una gama de resultados que uno puede encontrar durante la implementación de este sistema in vivo y pueden servir como puntos de referencia para otros usuarios en la evaluación del rendimiento del sistema CasRx en sus aplicaciones.

Desde el advenimiento de las tecnologías Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats (CRISPR), gran parte del enfoque en este campo se ha centrado en la edición de ADN, que ofrece aplicaciones transformadoras en medicina y biotecnología1. La alteración permanente de las secuencias de ADN, sin embargo, no siempre se desea debido a consideraciones éticas. A la luz de esto, estudios recientes comenzaron a desarrollar herramientas basadas en CRISPR para dirigirse al ARN y demostraron que las tecnologías CRISPR pueden usarse para la orientación del ARN en una variedad de sistemas biológicos2,3,4,5,6,7. En muchos de estos sistemas probados, el enfoque actual ampliamente utilizado para dirigirse a la reducción de ARN y transcripción es la interferencia de ARN (ARNi), que está lejos de ser perfecta, a menudo exhibe una eficacia variada y una alta actividad fuera del objetivo cuando se usa in vivo8,9,10,11,12,13,14,15,16,17 . Por lo tanto, dado el estado de estas tecnologías, vale la pena explorar más a fondo los potenciales de las herramientas basadas en CRISPR para la orientación de ARN.
Un estudio reciente notable informó que la ribonucleasa CasRx, un miembro de la clase Cas13d, puede reducir eficientemente los niveles de transcripción de genes en cultivos celulares humanos y posee un atractivo perfil fuera del objetivo4. Este hallazgo llevó a la pregunta de si esta nueva ribonucleasa puede mantener su eficacia y una baja tasa fuera del objetivo para el ARN dirigido a nivel del organismo. Un estudio reciente abordó esta pregunta al mostrar que el sistema CasRx se puede utilizar para lograr una reducción de la transcripción de genes ubicua y específica del tejido en Drosophila melanogaster5.
Para agilizar la usabilidad de este enfoque recientemente publicado, este protocolo detalla los métodos de este trabajo reciente, que consta de tres partes principales: 1) orientación de ARN in vivo ubicua utilizando un sistema CasRx de dos componentes; 2) orientación ubicua de ARN exógeno in vivo utilizando un sistema CasRx de tres componentes; y 3) la orientación de ARN in vivo específica del tejido utilizando un sistema CasRx de tres componentes.
Se diseñaron ARN guía (ARNg) dirigidos a diferentes genes diana bajo el control de un promotor ubicuo y se generaron líneas de mosca que expresan estas construcciones que contienen ARNg. También se diseñaron construcciones casRx bajo el control de un promotor ubicuo o un promotor de secuencia de activación ascendente condicional (UASt) activable por el factor de transcripción GAL4 y se generaron líneas de vuelo que albergan estas construcciones que contienen CasRx. Los constructos CasRx catalíticamente inactivos, dCasRx, fueron diseñados y utilizados como controles negativos. La orientación ubicua de ARN en moscas se logra cruzando líneas de mosca que expresan gRNA con líneas de mosca que expresan CasRx de forma ubicua. La progenie que expresa tanto la construcción de ARNg dirigida a una transcripción genética específica como la proteína CasRx tiene una reducción ubicua de las transcripciones de genes dirigidos. La focalización de ARN específico de tejido en moscas se logra cruzando primero moscas que expresan ARNg con moscas que expresan UASt-CasRx, obteniendo moscas transheterocigotas que transportan construcciones de gRNA y UASt-CasRx. Tales moscas a su vez se cruzan con moscas que expresan GAL4 específicas del tejido, lo que resulta en la generación de la expresión de CasRx específica del tejido y la orientación de ARN en las moscas.
La naturaleza programable del sistema CasRx ofrece la posibilidad de personalización y optimización para ayudar a lograr una alta eficacia y una baja actividad fuera del objetivo para la orientación de ARN in vivo. Las aplicaciones potenciales de la orientación de ARN basada en CRISPR son numerosas, incluida la sustitución de ARNi en el laboratorio y la contribución al control de insectos vectores en la naturaleza. De estos últimos, una de las necesidades globales insatisfechas es el desarrollo de herramientas eficientes para combatir las infecciones de virus de ARN transmitidas a través de mosquitos. Muchos virus de ARN, como el dengue, el Zika y el virus chikungunya, se transmiten a través de mosquitos, lo que afecta la salud humana y contribuye a la mortalidad. Se han hecho muchas propuestas para diseñar poblaciones de mosquitos con resistencia al virus para la prevención de enfermedades; sin embargo, ninguna tecnología actual es capaz de hacer que los mosquitos sean simultáneamente resistentes a todos los virus de ARN significativos18,19,20,21,22,23. Los sistemas Cas dirigidos al ARN pueden proporcionar un punto de partida para dicha tecnología al permitir una plataforma programable para atacar todos los virus de ARN transmitidos por mosquitos.

<table><tbody><tr><td>100% Jugo de Uva</td><td>Welch Foods Inc.</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Levadura seca activa (908 g)</td><td>Red Star Yeast Company, LLC</td><td>N/A</td><td></td></tr> Cámara <tr><td>a color</td><td>DMC4500 Leica Microsystems</td><td>DMC4500</td><td></td></tr><tr><td>Sistema de ensayo reportero de luciferasa dual</td><td>Promega</td><td>E1910</td><td></td></tr><tr><td>GAL4-GMR moscas</td><td>Bloomington Drosophila Stock Center</td><td>29967</td><td></td></tr><tr><td>GAL4-y moscas</td><td>Bloomington Drosophila Stock Center</td><td>44373</td><td></td></tr><tr><td>Glomax 20/20 Luminómetro</td><td>Promega</td><td>E5331</td><td></td></tr><tr><td>Illumina HiSeq2500 Secuenciador</td><td>Illumina, Inc.</td><td>HiSeq2500</td><td></td></tr><tr><td>M165FC microscopio estereoscópico fluorescente</td><td>Leica Microsystems</td><td>M165FC</td><td></td></tr><tr><td>Nanodrop OneC espectrofotómetro UV-vis</td><td>ThermoFisher</td><td>NDONEC-W</td><td></td></tr><tr><td>NEBNext Ultra II Kit de preparación de bibliotecas de ARN</td><td>New England Biolabs, Inc.</td><td>E7770</td><td></td></tr><tr><td>plásmido # 112686</td><td>Addgene</td><td>112686</td><td></td></tr><tr><td>plásmido # 112688</td><td>Addgene</td><td>112688</td><td></td></tr><tr><td>plásmido # 132416</td><td>Addgene</td><td>132416</td><td></td></tr><tr><td>plásmido # 132417</td><td>Addgene</td><td>132417</td><td></td></tr><tr><td>plásmido # 132419</td><td>Addgene</td><td>132419</td><td></td></tr><tr><td>plásmido # 132420</td><td>Addgene</td><td>132420</td><td></td></tr><tr><td>plásmido # 132421</td><td>Addgene</td><td>132421</td><td></td></tr><tr><td>plásmido # 132422</td><td>Addgene</td><td>132422</td><td></td></tr><tr><td>plásmido # 132425</td><td>Addgene</td><td>132425</td><td></td></tr><tr><td>plásmido # 132426</td><td>Addgene</td><td>132426</td><td></td></tr><tr><td>plásmido # 133304</td><td>Addgene</td><td>133304</td><td></td></tr><tr><td>plásmido # 164586</td><td>Addgene</td><td>164586</td><td></td></tr><tr><td>plásmido #132418</td><td>Addgene</td><td>132418</td><td></td></tr><tr><td>plásmido pJFRC81</td><td>Addgene</td><td>36432</td><td></td></tr><tr><td>Qiagen RNeasy Mini Kit</td><td>Qiagen</td><td>74104</td><td></td></tr><tr><td>Endonucleasas de restricción AscI</td><td>New England Biolabs Inc.</td><td>R0558L</td><td></td></tr><tr><td>Endonucleasas de restricción NotI</td><td>New England Biolabs Inc.</td><td>R0189L</td><td></td></tr><tr><td>Endonucleasas de restricción PacI</td><td>New England Biolabs Inc.</td><td>R0547L</td><td></td></tr><tr><td>Endonucleasas de restricción PstI</td><td>New England Biolabs Inc.</td><td>R0140L</td><td></td></tr><tr><td>Endonucleasas de restricción SwaI</td><td>New England Biolabs Inc.</td><td>R0604L</td><td></td></tr><tr><td>Endonucleasas de restricción XbaI</td><td>New England Biolabs Inc.</td><td>R0145L</td><td></td></tr><tr><td>RNA 6000 Pico Kit para Bioanalizador</td><td>Agilent Technologies</td><td>5067-1513</td><td></td></tr><tr><td>Turbo DNase</td><td>Invitrogen</td><td>AM2238</td><td></td></tr><tr><td>U6-3:4-gRNA-Fluc vuela</td><td>Bloomington Drosophila Stock Center</td><td>84125</td><td></td></tr><tr><td>U6-3:4-gRNA-GFP; OpIE2-GFP vuela</td><td>Bloomington Drosophila Stock Center</td><td>84986</td><td></td></tr><tr><td>U6-3:4-gRNA-N vuela</td><td>Bloomington Drosophila Stock Center</td><td>84122</td><td></td></tr><tr><td>U6-3:4-gRNA-w vuela</td><td>Bloomington Drosophila Stock Center</td><td>84124</td><td></td></tr><tr><td>U6-3:4-gRNA-y vuela</td><td>Bloomington Drosophila Stock Center</td><td>84123</td><td></td></tr><tr><td>UASt-CasRx vuela</td><td>Bloomington Drosophila Stock Centro</td><td>84121</td><td></td></tr><tr><td>UASt-dCasRx vuela</td><td>Bloomington Drosophila Centro de Acciones</td><td>84120</td><td></td></tr><tr><td>Ubiq-CasRx vuela</td><td>Bloomington Drosophila Centro de Acciones</td><td>84118</td><td></td></tr><tr><td>Ubiq-dCasRx vuela</td><td>Bloomington Drosophila Centro de Acciones</td><td>84119</td><td></td></tr><tr><td>Ubiq-Firefly-T2A-eGFP-Ubiq-Renilla vuela</td><td>Bloomington Drosophila Stock Center</td><td>84127</td><td></td></tr><tr><td>Zymoclean Gel Kits de Recuperación de ADN</td><td>Zymo Research Corporation</td><td>D4007</td><td></td></tr></tbody></table>

orientación de arn ubicuo y específico del tejido en drosophila melanogaster utilizando crispr / casrx

Ubiquitous and Tissue-specific RNA Targeting in Drosophila Melanogaster using CRISPR/CasRx

CasRx, un miembro de la familia Cas13 dirigida al ARN, es una nueva adición prometedora de las tecnologías CRISPR / Cas en la reducción eficiente de la transcripción de genes con un atractivo perfil fuera del objetivo tanto a nivel celular como de organismo. Recientemente se ha informado de que el sistema CRISPR/CasRx se puede utilizar para lograr una reducción ubicua y específica de la transcripción de genes en Drosophila melanogaster. Este artículo detalla los métodos del trabajo reciente, que consta de tres partes: 1) orientación ubicua de ARN endógeno in vivo utilizando un sistema CasRx de dos componentes; 2) orientación ubicua de ARN exógeno in vivo utilizando un sistema CasRx de tres componentes; y 3) la orientación de ARN in vivo específica del tejido utilizando un sistema CasRx de tres componentes. Los efectos de la orientación del ARN observados incluyen cambios fenotípicos específicos de genes dirigidos, reducción dirigida de la transcripción del ARN y fenotipos de letalidad ocasionales asociados con una alta expresión de la proteína CasRx y la actividad colateral. En general, estos resultados mostraron que el sistema CasRx es capaz de apuntar a la reducción de la transcripción de ARN a nivel del organismo de una manera programable y eficiente, lo que demuestra que la orientación y la ingeniería del transcriptoma in vivo son factibles y sientan las bases para futuras tecnologías de orientación de ARN basadas en CRISPR in vivo.

Orientación ubicua de ARN in vivo mediante un sistema CasRx de dos componentes Las moscas transheterocigotas F1 que expresan las construcciones Ubiq-CasRx y gRNA (dirigidas a genes endógenos y exógenos) mostraron fenotipos marcados en comparación con las moscas de control que expresan las construcciones Ubiq-dCasRx y gRNA (Figura 2 y Figura 4). Específicamente, las moscas transheterocigotas CasRx tienen niveles significativamente más bajos de tasa de supervivencia en comparación con las moscas transheterozgyous dCasRx, lo que indica toxicidad del sistema Ubiq-CasRx (Figura 2A y Figura 4A). Vale la pena señalar que tanto las moscas transheterocigotas CasRx como dCasRx tienen una tasa de herencia inferior al 50%, que es la proporción esperada basada en la genética mendeliana. De los tres genes diana, el Ubiq-CasRx/+; U6-gRNAN/+ moscas y Ubiq-CasRx/+; Las moscas U6-gRNAy/+ no son viables (0% de herencia) y no crecieron más allá de la segunda etapa de larvas instar (Figura 2A-2B). El Ubiq-CasRx/+sobreviviente; Las moscas U6-gRNAw/+, cuya herencia fue del 12,9%, mostraron un fenotipo distintivo de ojos blancos totalmente penetrante (Figura 2B). Además de los rasgos observables asociados con CasRx, pudimos confirmar una reducción significativa de las transcripciones de genes diana para 3 genes diana: Notch, amarillo y GFP (Figura 2E-2G). Se observó una reducción de las transcripciones de genes blancos en las moscas Ubiq-CasRx/+, U6-gRNAw/+, en comparación con las moscas de control Ubiq-dCasRx/+, U6-gRNAw/+, aunque la reducción no fue estadísticamente significativa (Figura 2E - 2F). Se encontró evidencia de actividad fuera del objetivo inducida por CasRx al comparar las transcripciones expresadas diferencialmente entre muestras de moscas que expresan CasRx y muestras de moscas que expresan dCasRx (Figura 2E, 2G). El número de transcripciones no objetivo expresadas significativamente de manera diferencial son las siguientes: blanco, 253 (1,4% del total de transcripciones); Notch, 300 (1,7%); amarillo, 41 (0,23%); GFP, 5.880 (33%) (Figura 2G).. Del total de 17.779 transcripciones diferentes, 6 transcripciones no objetivo se expresaron significativamente de manera diferencial en los 4 grupos de muestras. Una de las 6 transcripciones identificadas fue Gadd45, un gen involucrado en la apoptosis y la detención celular en moscas, lo que plantea la posibilidad de que la acción enzimática de CasRx pueda desencadenar directamente la apoptosis celular o desencadenar indirectamente la mala expresión de otros genes, lo que a su vez conduce a la apoptosis. Finalmente, vale la pena señalar que las moscas Ubiq-CasRx y Ubiq-dCasRx no se establecieron como poblaciones homocigotas, presumiblemente debido a la toxicidad conferida por la alta expresión ubicua. Como resultado, se utilizaron moscas heterocigotas Ubiq-CasRx/CyO y Ubiq-dCasRx/CyO para cruzar con líneas de moscas homocigotas de ARNg. En resumen, el sistema Ubiq-CasRx de dos componentes es capaz de lograr una orientación ubicua de ARN para objetivos endógenos y exógenos, lo que resulta en fenotipos observables y reducción de la transcripción. Estos resultados también mostraron que la orientación de ARN mediado por CasRx puede introducir toxicidad in vivo.
Orientación ubicua de ARN exógeno in vivo utilizando un sistema CasRx de tres componentes Los resultados de la cruz de dos pasos mostraron que a pesar de la naturaleza exógena del gen diana (es decir, Fluc), la expresión de los tres transgenes en los transheterocigotos triples F2 (Ubiq-CasRx/+; gRNAFluc/Ubiq-Fluc-Ubiq-Rluc) dio como resultado una letalidad del 100% en comparación con los cruces de control que involucran Ubiq-dCasRx, donde no se observó letalidad en los transheterocigotos triples F2 (Ubiq-dCasRx/+; gRNAFluc/Ubiq-Fluc-Ubiq-Rluc) (Figura 3B-C ). Más específicamente, solo la combinación de los tres transgenes (Ubiq-CasRx/+; gRNAFluc/Ubiq-Fluc-Ubiq-Rluc) resultó en una letalidad del 100% (Figura 3B y D), mientras que (Ubiq-CasRx/+; gRNAFluc/TM6) y (Ubiq-CasRx/+; Los genotipos Ubiq-Fluc-Ubiq-Rluc/TM6) eran viables y carecían de fenotipos con sus tasas de herencia que coincidían con las tasas de transmisión mendelianas esperadas, lo que sugiere que la disponibilidad de la secuencia objetivo (es decir, luciferasa luciérnaga) en combinación con Ubiq-CasRx/+ y gRNAFluc es lo que resultó en los fenotipos de letalidad observados, presumiblemente derivados de la actividad colateral de las enzimas Cas132,8 . Además, no hay fenotipos distinguibles ni influencia dramática sobre la herencia en transheterocigotos F1 (Ubiq-CasRx/+; gRNAFluc/+ o Ubiq-CasRx/+; Se observaron ubiq-fluc-ubiq-Rluc/+) en comparación con los controles Ubiq-dCasRx (Ubiq-dCasRx/+; gRNAFluc/+ o Ubiq-dCasRx/+; Ubiq-Fluc-Ubiq-Rluc/+) (Figura 3B), indicando que una enzima catalíticamente activa es esencial para obtener los fenotipos de letalidad observados. Además, los niveles de expresión de Fluc y Rluc en moscas de todos los genotipos viables no mostraron una reducción significativa en la expresión de Fluc en los transheterocigotos triples ubiq-dCasRx (Ubiq-dCasRx/+; gRNAFluc/Ubiq-Fluc-Ubiq-Rluc) en comparación con los controles reporteros de luciferasa dual. Esto sugiere que los niveles de expresión de la proteína Fluc no se redujeron mediante la orientación de dCasRx (Figura 3D). Tomados en conjunto, el fenotipo de letalidad común en los dos diferentes experimentos de orientación de ARN ubicuo mediados por CasRx indica que cuando se usa en tejidos de manera ubicua, la orientación de ARN mediado por CasRx puede ser tóxica para el organismo.
Segmentación de ARN in vivo específica del tejido mediante un sistema CasRx de tres componentes El alto nivel de toxicidad observado en los experimentos de orientación de ARN ubicuo nos llevó a explorar la orientación de ARN específica del tejido utilizando un diseño de sistema CasRx de tres componentes detallado en la sección de métodos. De hecho, el nivel de toxicidad observado se redujo cuando la expresión general de CasRx se redujo utilizando el promotor UASt en comparación con el del promotor Ubiq, esto se ejemplifica en tres aspectos: 1) las líneas UASt-CasRx y UASt-dCasRx se mantuvieron como líneas homocigotas, aunque en base al esquema cruzado de dos pasos se utilizaron líneas uast-CasRx y UASt-dCasRx doblemente equilibradas para realizar los cruces, 2) todas las tasas de herencia transheterocigota triple dCasRx de la generación F2 coincidieron con la tasa de herencia mendeliana esperada del 25%, y 3) el fenotipo de letalidad transheterocigota triple CasRx de la generación F2 se redujo moderadamente. En el experimento de focalización blanca, de las tasas de herencia mendelianas del 25% esperadas en los transheterocigotos triples F2, solo se observaron un 0,57% de moscas adultas viables (UASt-CasRx/+; gRNAw/GMR-Gal4), todas las cuales mostraron fenotipos severos de pigmentación y morfología específica del ojo (Figura 4A y 4B). Para el cruce de blancos, la tasa de herencia F2 transheterocigota triple que expresa CasRx fue significativamente menor que la del grupo de control de triple transheterocigoto que expresa dCasRx (27,6%) (Figura 4A). En el experimento de focalización Notch, los tranheterocigotos triples que expresan CasRx que transportan los tres transgenes fueron 100% letales, mientras que la tasa de herencia de control de dCasRx fue del 29,3% (Figura 4A). En el experimento de focalización amarilla, F2 triple transheterocigoto que expresa CasRx, gRNAy e y-GAL4 mostró una reducción marginal del pigmento de quitina como pequeños parches de cutícula amarilla en el tórax y el abdomen con una tasa de herencia del 2,67%, mucho menor que la del grupo de control dCasRx (25,2%) (Figura 4A ). Todas las moscas transheterocigotas triples de control dCasRx no presentaron fenotipos obvios como las moscas que expresan CasRx, lo que indica que la actividad catalítica de CasRx contribuyó a los fenotipos observados. La baja tasa de herencia en el grupo transheterocigoto triple de CasRx sugirió que existen dos fuentes de toxicidad en la orientación de ARN de CasRx: una está asociada con una alta expresión de CasRx, cuya toxicidad se redujo por la expresión restrictiva de CasRx, la otra está asociada con la actividad colateral. Tomados en conjunto, estos resultados mostraron que el sistema CasRx puede lograr la orientación de ARN in vivo específica del tejido al aprovechar el sistema clásico Gal4 / UASt y, mientras tanto, reducir la toxicidad. Sin embargo, los fenotipos de toxicidad y letalidad ocasional todavía se observaron en un nivel de gravedad más bajo en comparación con el de los enfoques ubicuos, lo que indica que la actividad de escisión colateral se asocia con toxicidad.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62154/62154fig01.jpg"> Figura 1: Descripción general de la orientación de ARN utilizando un sistema Cas13D. (A) Esquemas del cruce genético de un solo paso en la orientación ubicua de ARN in vivo utilizando un sistema CasRx de dos componentes. (B) Esquemas de un cruce genético de dos pasos en la omnipresente orientación de ARN exógeno in vivo utilizando el sistema CasRx de tres componentes. (C) Esquemas de un cruce genético de dos pasos en la orientación de ARN in vivo específico del tejido utilizando un sistema CasRx de tres componentes. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62154/62154fig01large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62154/62154fig02.jpg"> Figura 2: Orientación ubicua de ARN in vivo utilizando un sistema CasRx de dos componentes (reimpreso5). (A) Porcentajes de herencia total de moscas transheterocigotas que heredan Ubiq-CasRx (o Ubiq-dCasRx) y gRNAs. El sombreado azul en el diagrama de caja indica la penetrancia del fenotipo. (B) Fenotipos de moscas transheterocigotas. Las flechas indican necrosis tisular en el ojo. La mosca blanca y negra marcada con ''X'' representa la letalidad. (C) Porcentajes de herencia total de moscas transheterocigotas de cruces bidireccionales entre ubiq-CasRx (o Ubiq-dCasRx) y moscas gRNAGFP-OpIE2-GFP. M, herencia materna de CasRx; P, herencia paterna de CasRx. (D) Larvas F1 progenies en la cruz paterna. (E) Estimaciones máximas a posteriori de las transcripciones para el cambio del pliegue logarítmico. Se utilizó la tubería DESeq2. (F) Transcripciones por millón (TPM) dirigidas con CasRx o dCasRx. (G) Porcentaje de transcripciones expresadas diferencialmente por CasRx-depentent de transcripciones. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62154/62154fig02large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62154/62154fig03.jpg"> Figura 3: Orientación ubicua de ARN exógeno in vivo utilizando un sistema CasRx de tres componentes. (A) Esquemas del cruce genético de dos pasos. (B) Porcentajes de herencia total para todos los genotipos emergentes en la generación F2 . La herencia de los tres transgenes (Ubiq-CasRx, Ubiq-Fluc-Ubiq-Rluc y gRNAFLuc) en la progenie F2 resultó en una letalidad del 100% y fue significativamente menor en comparación con el grupo de control de transheterocigotos triples ubiq-dCasRx (p = 0,001, prueba t). (C) Llevar Ubiq-CasRx/gRNAFluc solo o Ubiq-CasRx y Ubiq-Fluc-Ubiq-Rluc solo no condujo a una letalidad grave, y las relaciones de herencia entre los transheterocigotos Ubiq-CasRx y Ubiq-dCasRx no fueron significativamente diferentes (p = 0,41 y p = 0,51, respectivamente, prueba t). (D) Proporciones de luciferasa normalizando las lecturas de Fluc a las lecturas de Rluc. Las moscas transheterocigotas triples que expresaban Ubiq-CasRx, Ubiq-Fluc-Ubiq-Rluc, gRNAFLuc eran letales embrionarias, que estaban representadas por una mosca con una "X", y como resultado no se midió la expresión de luciferasa. La relación Fluc/Rluc de Ubiq-CasRx/+, Ubiq-Fluc-Ubiq-Rluc/TM6, Stb transheterocigotos fue significativamente menor que la de los otros grupos que expresan Ubiq-Fluc-Ubiq-Rluc (p = 1.2e-06 o inferior, prueba t). Los resultados del grupo de solo gRNAFLuc fueron significativamente más bajos que los de todos los demás grupos (p = 1.2e-06 o menos, prueba t). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62154/62154fig03large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62154/62154fig04.jpg"> Figura 4: Orientación de ARN in vivo específico de tejido utilizando un sistema CasRx de tres componentes (reimpreso5). (A) Porcentaje de herencia total de moscas transheterocigotas triples portadoras de tres transgenes (UASt-CasRx o UASt-dCasRx, gRNAs y Gal4-driver. (B) Fenotipos de las moscas transheterocigotas triples. La flecha blanca indica la reducción del pigmento de quitina en el tórax. La mosca blanca y negra marcada con ''X'' representa la letalidad. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62154/62154fig04large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Construir</td>
			<td>Descripción</td>
			<td>Cebador</td>
			<td>Secuencia de imprimación (5' a 3')</td>
			<td>Plantilla PCR</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">OA-1050E</td>
			<td rowspan="2">CasRx</td>
			<td>1050E. C3</td>
			<td>TACTAATTTTCCAC ATCTCTATTTTGAC CCGCAGATTAATTA ATGAGCCCCAAGA AGAA</td>
			<td rowspan="2">pNLS-RfxCas13d-NLS-HA (pCasRx)</td>
		</tr>
<tr>
<td>1050E. C4</td>
			<td>CAATTGATTTGTTA TTTTAAAAACGATT CATTCTAGCTAGCT TAAGCGTAATCTGG AACA</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">OA-1050R</td>
			<td rowspan="2">dCasRx</td>
			<td>1050E. C3</td>
			<td>TACTAATTTTCCAC ATCTCTATTTTGAC CCGCAGATTAATTA ATGAGCCCCAAGA AGAA</td>
			<td rowspan="2">pNLS-dRfxCas13d-NLS-HA (pdCasRx)</td>
		</tr>
<tr>
<td>1050E. C4</td>
			<td>CAATTGATTTGTTA TTTTAAAAACGATT CATTCTAGCTAGCT TAAGCGTAATCTG GAACA</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="4">OA-1050L</td>
			<td rowspan="2">Promotor UASt</td>
			<td>1041.C9</td>
			<td>GCGGGTTCTCGA CGGTCACGGCGG GCATGTCGACGC GGCCGCAACCAA CAACACTAGTAG</td>
			<td rowspan="2">pJFRC81</td>
		</tr>
<tr>
<td>1041.C11</td>
			<td>CTGGCCTCCACC TTTCTCTTCTTCT TGGGGCTCATGT TTAAACCCAATT CCCTATTCAGA</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">CasRx</td>
			<td>1050L. C1</td>
			<td>AATACAAGAAGA GAACTCTGAATA GGGAATTGGGT TTAAACATGAGC CCCAAGAAGAA</td>
			<td rowspan="2">pCasRx</td>
		</tr>
<tr>
<td>1050E. C4</td>
			<td>CAATTGATTTGT TATTTTAAAAAC GATTCATTCTA GCTAGCTTAAG CGTAATCTGGA ACA</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="4">OA-1050S</td>
			<td rowspan="2">Promotor UASt</td>
			<td>1041.C9</td>
			<td>GCGGGTTCTC GACGGTCACG GCGGGCATGT CGACGCGGCC GCAACCAACAA CACTAGTAG</td>
			<td rowspan="2">pJFRC81</td>
		</tr>
<tr>
<td>1041.C11</td>
			<td>CTGGCCTCCA CCTTTCTCTTC TTCTTGGGGCT CATGTTTAAAC CCAATTCCCTA TTCAGA</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">dCasRx</td>
			<td>1050L. C1</td>
			<td>AATACAAGAAG AGAACTCTGAAT AGGGAATTGGG TTTAAACATGAG CCCCAAGAAGAA</td>
			<td rowspan="2">pdCasRx</td>
		</tr>
<tr>
<td>1050E. C4</td>
			<td>CAATTGATTTGT TATTTTAAAAAC GATTCATTCTAG CTAGCTTAAGCG TAATCTGGAACA</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">OA-1043</td>
			<td rowspan="2">Promotor U6:3</td>
			<td>1043.C1</td>
			<td>GGGAATTGGGA ATTGGGCAATAT TTAAATGGCGGC GCGCCGAATTCT TTTTTGCTCACCT</td>
			<td rowspan="2">Plásmido Addgene #164586</td>
		</tr>
<tr>
<td>1043.C23</td>
			<td>ACACTAGTGGAT CTCTAGAGGTAC CGTTGCGGCCG CAAAAAAGTTGT AATAGCCCCTCA AAACTGGACCTT CCACAACTGCAG CCGACGTTAAAT TGAAA</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="6">OA-1052B</td>
			<td rowspan="2">Promotor Ubiq</td>
			<td>Artículo 1052B. C1</td>
			<td>GGGAATTGGGCA ATATTTAAATGGC GGCTGCAGCGC GCAGATCGCCGAT</td>
			<td rowspan="2">Plásmido Addgene #112686</td>
		</tr>
<tr>
<td>Artículo 1052B. C2</td>
			<td>TTTCTTTATGTTT TTGGCGTCTTCC ATCCTAGGTCTG CGGGTCAAAATA GAGATG</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">T2A-eGFP</td>
			<td>908A1</td>
			<td>ATAAAGGCCAAG AAGGGCGGAAA GATCGCCGTGG AGGGCAGAGGA AGTCTTCTAACAT GC</td>
			<td rowspan="2">Plásmido Addgene #112686</td>
		</tr>
<tr>
<td>908A2</td>
			<td>TTGTTATTTTAAAA ACGATTCATTCTA GGCGATCGCTTA CTTGTACAGCTC GTCCATGCC</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Promotor ubiq invertido</td>
			<td>908A3</td>
			<td>ACCGTGACCTAC ATCGTCGACACTA GTGGATCTCTAGA CGCGCAGATCGC CGATG</td>
			<td rowspan="2">Plásmido Addgene #112686</td>
		</tr>
<tr>
<td>908A4</td>
			<td>GGATCATAAACTT TCGAAGTCATGC GGCCGCTCTGCG GGTCAAAATAGAG ATGT</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabla 1: Lista de constructos moleculares y cebadores utilizados en este estudio. Esta lista incluye todas las construcciones (tanto el ID como la descripción) y los cebadores asociados de cada constructo (tanto el ID como las secuencias (5' a 3')) y las plantillas utilizadas.

Este artículo describe un protocolo detallado para el uso de la enzima Cas13D dirigida al ARN (RfxCas13D) en moscas.

Orientación de ARN ubicuo y específico del tejido en Drosophila Melanogaster utilizando CRISPR / CasRx

CasRx, a member of the RNA-targeting Cas13 family, is a promising new addition of the CRISPR/Cas technologies in efficient gene transcript reduction with ...

Como muestra nuestro protocolo, las tecnologías CRISPR CasRx se pueden utilizar para lograr reducciones de transcripción de genes ubicuas y específicas de tejidos en moscas de la fruta. Nuestra técnica ofrece un paquete de inicio para cualquier persona que esté interesada en utilizar la reducción de la transcripción de genes basada en CRISPR en moscas de la fruta, al tiempo que es compatible con una mayor personalización y optimización. Para establecer una orientación de ARN in vivo ubicua utilizando un sistema CasRx de dos componentes, recolecte 10 moscas hembras adultas vírgenes de la línea de interés de ARNg homocigota y cinco moscas macho adultas del heterocigoto equilibrado Ubiq CasRx CurlyO.Coloque las moscas parentales en un vial suplementado con 100 microgramos de polvo de levadura seca y levante los viales durante 48 horas a 26 grados centígrados. Observe los viales todos los días para ver si alguna nueva progenie adulta ha surgido del pubis de la generación F1 y anestesia a alguno de los adultos con dióxido de carbono durante 10 segundos. Una vez que las moscas se vuelven inmóviles, vacíe el vial en una almohadilla para moscas conectada al tanque de dióxido de carbono con dióxido de carbono continuo y use una cámara a color conectada a un microscopio estéreo fluorescente para calificar e obtener imágenes de los fenotipos de las moscas.Luego cuente el número de progenie con diferentes fenotipos, de acuerdo con la expresión de la señal fluorescente. Según la genética mendeliana, se espera que el 50% de la progenie exprese el ARN objetivo. Tenga en cuenta que la toxicidad del sistema Ubiq CasRx puede reducir la proporción de progenie que expresa ARN dirigido a menos del 50% Para establecer una orientación ubicua de ARN exógeno in vivo utilizando un sistema CasRx de tres componentes, recolecte de ocho a 10 moscas hembras adultas vírgenes de una línea de expresión de luciferasa dual y de cuatro a cinco moscas macho adultas del heterocigoto equilibrado Ubiq CasRx Curly más TM6, Línea STB que exhibe ojos blancos, alas rizadas y fluorescencia roja ds simultáneamente.Coloque el paso parental uno cruzado en un vial suplementado con 100 microgramos de polvo de levadura seca y retroceda esta cruz durante 48 horas a 26 grados centígrados. Al final de la incubación, retire todas las moscas parentales de cada vial y devuelva los viales a la incubadora de 26 grados Celsius durante al menos 14 días. En el transcurso de 14 días, como se mencionó anteriormente, recolecte de ocho a 10 vírgenes hembras de la luciferasa homocigota dirigida a la línea de ARNg tres veces.Observe el paso uno cruza viales todos los días para ver si han surgido nuevas progenies adultas de las pupas, anestesiando con dióxido de carbono para permitir la recolección de cuatro a cinco moscas macho que expresan tanto el Ubiq CasRx como el reportero dual Luciferase según esté disponible. Coloque las moscas en un nuevo vial con 10 hembras vírgenes de la mosca de la fruta luciferasa dirigida a la línea de ARNg, y coloque estos pasos dos cruces a 26 grados centígrados durante 48 horas. Recoja otros cinco machos de un día de edad que expresen tanto el Ubiq CasRx como el reportero de luciferasa dual de los viales cruzados del paso uno e incube las moscas durante dos o cuatro días solos a 26 grados centígrados antes de transferirlas a una centrífuga de 1,5 mililitros para un almacenamiento de menos 80 grados centígrados.Al final de la incubación, retire todos los viales parentales de cada uno de los viales cruzados del paso dos. Y devuelva los viales a la incubadora de 26 grados centígrados durante al menos 20 días. Observe los viales cruzados de paso dos todos los días para ver si alguna nueva progenie adulta ha emergido del pubis, anestesiando a las moscas con dióxido de carbono a medida que están disponibles, y anotando e imaginando sus fenotipos como se ha demostrado.La genética mendeliana sugiere que, si todas las moscas son viables, el 25% de la progenie debería expresar el ARN objetivo. Para realizar un ensayo de luciferasa, genere las moscas heterocigotas trans triples, así como las moscas de control como se ha demostrado. Recolectar las moscas macho al nacer y envejecerlas hasta los tres días de edad.Transfiera las moscas de tres días de edad a tubos centrífugos de 1,5 mililitros y lisarlas usando un tampón en el tampón de lisis de luciferasa de un kit de ensayo de luciferasa disponible comercialmente. Luego use cinco microlitros de tejido lisado de cada muestra y luminómetro para medir tanto las moscas de la fruta como la actividad de la luciferasa, de acuerdo con los protocolos estándar de ensayo de luciferasa. F1, trans heterocigoto CasRx, tiene tasas de supervivencia significativamente más bajas en comparación con las moscas trans heterocigotas dCasRx.Confirmando la toxicidad del sistema Ubiq CasRx de los tres genes diana, las moscas heterocigotas U6 gRNA Y son inviables y no crecen más allá de la segunda etapa larvaria instar. Las moscas heterocigotas Supervivientes Ubq CasRx y U6 gRNA W, demuestran un fenotipo distintivo de ojos anchos totalmente penetrante. Además, también se observa una reducción significativa de las transcripciones de genes diana para tres genes diana.También se observa evidencia de actividad fuera del objetivo inducida por CasRx cuando se comparan transcripciones expresadas diferencialmente entre muestras de moscas que expresan CasRx y muestras de moscas que expresan dCasRx. En la cruz de dos pasos, solo la combinación de los tres genes trans da como resultado una letalidad del 100%. Cuando se emplea la orientación de ARN específico del tejido utilizando un diseño de sistema CasRx de tres componentes, el nivel de toxicidad se reduce cuando la expresión general de CasRx se reduce utilizando el promotor UAST en comparación con el promotor Ubiq.Es importante configurar el proceso genético correctamente utilizando moscas de género correcto y fenotipos correctos.

ubiquitous-tissue-specific-rna-targeting-drosophila-melanogaster

Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

ARN de interferencia se ha demostrado muy eficaz para analizar la función del gen...

RNAi interferencia por inyección de dsRNA en Drosophila Los embriones

El objetivo de esta publicación es visualizar y discutir los pasos operativos de un protocolo de transferencia Northern mejorada en el ARN extraído de Drosophila melanogaster embriones, células y tejidos. Este protocolo es particularmente útil para la detección eficiente de pequeñas especies de ARN.

Mejorada del Norte Blot Detección de los Pequeños ARN Especies en Drosophila melanogaster

Edición del genoma específica en el sistema modelo Danio rerio (pez cebra) ha sido facilitada enormemente por la aparición de enfoques CRISPR. Adjunto, describimos un protocolo robusto optimizado para la generación y la identificación de alelos derivados CRISPR absurdo que incorpora el análisis de movilidad del heterodúplex y la identificación de mutaciones mediante secuenciación de próxima generación.

Producción eficiente y genera identificación de CRISPR/Cas9 Gene Knockouts en el sistema modelo Danio rerio

Aquí, presentamos un método para diseñar el genoma de C. elegans utilizando ribonucleoproteínas Cas9 CRISPR y plantillas de reparación dependiente de homología.

Un rápido y fácil tubería para generar genómica punto mutantes de C. elegans utilizando CRISPR/Cas9 ribonucleoproteínas

Aquí, presentamos un método para generar sistemas de transcripción binario tejidos específicos en Drosophila sustituyendo el primer exón de la codificación de los genes con los conductores de la transcripción. El método basado en el CRISPR/Cas9 coloca una secuencia de transactivator bajo la regulación endógena de un gen sustituyó y en consecuencia facilita la expresión de transctivator exclusivamente en los patrones espacio-temporales de gene-específico.

Una estrategia eficiente para la generación de sistemas de transcripción binario tejidos específicos en Drosophila genoma editando

Aquí se presenta un protocolo para utilizar el sistema CRISPR-Cas9 para reducir la producción de una proteína en el cerebro adulto de abeja sellos para probar la especificidad de anticuerpos.

Pruebas de anticuerpos anti-RDL y anti-mGlutR1 en secciones de cerebro de abeja con CRISPR-Cas9

El objetivo de este protocolo es permitir la edición CRISPR/Cas9 sin fisuras del genoma de C. elegans utilizando complejos de ribonucleoproteína ensamblados y el marcador co-CRISPR dpy-10 para el cribado. Este protocolo se puede utilizar para realizar una variedad de modificaciones genéticas en C. elegans, incluidas inserciones, deleciones, reemplazos de genes y sustituciones de codones.

CRISPR/Cas9 Edición del gen C. elegans rbm-3.2 utilizando el marcador de detección co-CRISPR dpy-10 y complejos de ribonucleoproteína ensamblados.

Aquí, presentamos un protocolo simplificado de etiquetado de genes endógenos para Drosophila, que utiliza una técnica basada en PCR para la identificación sin marcadores de modificaciones genéticas exitosas, lo que facilita el desarrollo de líneas knock-in estables.

Estrategia basada en CRISPR de un solo paso para el etiquetado de genes endógenos en Drosophila melanogaster

La Biotinilación Mejorada por Iluminación Restringida por Localización específica (ALIBi) es un método novedoso activado optogenéticamente desarrollado para marcar y purificar afinidad poblaciones subcelulares de ribosomas para secuenciación posterior y análisis proteómico.

Aislamiento de subpoblaciones subcelulares de ribosomas basadas en biotinilación potenciada por iluminación restringida por etiquetas péptidas específicas de péptidos recombinantes

Un flujo de trabajo de microinyección CRISPR/Cas9 para el marcaje fluorescente endógeno en la línea germinal de Caenorhabditis elegans para obtener líneas homocigotas de knock-in para análisis in vivo de localización de proteínas.

Marcado fluorescente endógeno mediado por CRISPR/Cas9 de genes específicos de la línea germinal en Caenorhabditis elegans

Aprende a dirigir ARN de forma ubicua y específica de tejido en Drosophila melanogaster utilizando el sistema CRISPR/CasRx. Este método permite la reducción programable de transcritos con evaluación fenotípica y molecular in vivo.

Orientación de ARN ubicuo y específico del tejido en Drosophila Melanogaster utilizando CRISPR / CasRx

Explorar más videos