Name: Cuantificación en tiempo real de especies reactivas de oxígeno en neutrófilos infectados con escherichia coli meningítica (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-04-20T13:30:00.000+00:00
Duration: 11 min
Description: Aprende a cuantificar especies reactivas de oxígeno en tiempo real en neutrófilos infectados con Escherichia coli meningítica mediante sondas fluorescentes y lectura en placa. Este método permite estudiar los mecanismos bactericidas durante interacciones huésped-patógeno.

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Este trabajo fue apoyado por la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (31670845, 31870832, 32000811) y el Programa de Profesor Distinguido de la Provincia de Liaoning (LJH2018-35).

La sangre periférica de los voluntarios aplicados en esta investigación fue aprobada por la Junta de Revisión Institucional del primer Hospital de la Universidad Médica de China (#2020-2020-237-2).
1. Preparación de reactivos y medios de cultivo
<ol><li>Preparar el tampón de lisis de glóbulos rojos añadiendo 8,29 g de NH4Cl, 1 g de KHCO3,37,2 mg de Na2EDTA en 1 L de agua destilada doble y ajustar el pH a 7,2-7,4. Retire la bacteria mediante filtración utilizando filtros de 0,22 μm.</li>
	<li>Prepare el medio de cultivo experimental para neutrófilos añadiendo un 5% de suero bovino fetal al medio RPMI 1640 y guárdelo a 4 °C. Equilibrar a temperatura ambiente antes de su uso. NOTA: Utilice el medio RPMI 1640 sin fenol rojo.</li>
	<li>Preparar solución salina tampón de fosfato (PBS) añadiendo 8 g de NaCl, 0,2 g de KCl, 1,44 g de Na2HPO4·2H2O y 0,2 g de KH2PO4 en 1 L de agua destilada doble en un matraz de vidrio de 1 L. Ajuste el pH a 7,2-7,4. Autoclave durante 15 min a 121 °C.</li>
	<li>Preparar solución de rifampicina mediante la disolución de 0,5 g de polvo de rifampicina en 10 ml de sulfóxido de dimetil (DMSO) para producir una solución de rifampicina de 50 mg/ml.</li>
	<li>Preparar solución de agar LB añadiendo 10 g de NaCl, 10 g de triptona, 5 g de extracto de levadura y 15 g de polvo de agar en 1 L de agua destilada doble y autoclave la mezcla. Llene las placas De Petri a la mitad del volumen vertiendo solución de agar LB caliente que contenga 100 rifampicina de μg/ml. Guarde la placa sólida enfriada a 4 °C.</li>
	<li>Preparar caldo de infusión cardíaca cerebral (BHI) apropiado para cepas bacterianas mediante la disolución de 37 g de polvo BHI en 1 L de agua destilada doble. Ajuste el pH a 7,2 y autoclave.</li>
	<li>Disolver la sonda fluorescente dihidroethidium (DHE) en disolvente DMSO para producir una solución de stock de 10 mM. Mezcle suavemente antes de usarlo. NOTA: Aliquot la solución de stock inmediatamente en viales a prueba de luz. La vida útil de la solución de stock es de 6 meses a -20 °C.</li>
</ol>2. Preparación de la cepa bacteriana E44
NOTA: E44 es una cepa mutante de E. coli meningítica con resistencia a la rifampicina.
<ol><li>Sumerja la colonia E44 criopreservada con una punta de pipeta estéril, inocular la cepa E44 en la placa de agar LB que contiene 100 μg/ml de rifampicina dibujando líneas. Ponga la placa boca abajo en la incubadora a 37 °C durante la noche.</li>
	<li>Un día antes del experimento, elija una colonia E44 de la placa con una punta de pipeta estéril y colóquela en 5 ml de caldo BHI que contenga 100 rifampicina de μg/ml en un matraz de 50 ml. Incubar el cultivo bacteriano a 37 °C con 90 rpm durante 17 h en un agitador de incubación.</li>
</ol>3. Aislamiento de neutrófilos de sangre periférica humana
<ol><li>Extraiga 5 ml de muestra de sangre de voluntarios por vía intravenosa al tubo de recolección de sangre al vacío que contiene EDTA para la anticoagulación.</li>
	<li>Centrífuga las muestras de sangre periférica a 500 x g durante 5 min. Las muestras de sangre se dividen en tres capas por centrifugación, que de abajo a arriba son la capa de glóbulos rojos (RBC), la capa de glóbulos blancos (CMB) y la capa plasmática, secuencialmente.</li>
	<li>Aspirar la capa de glóbulos blancos con un pipete a un nuevo tubo con 3x Tampón de lisis RBC. Mezcle bien la mezcla y colóquelo a temperatura ambiente durante 5 minutos.</li>
	<li>Centrífuga el tubo a 500 x g durante 5 minutos. Aspirar el sobrenadante por completo y descartar.<ol>
<li>Repita el procedimiento de lisis con el búfer de lisis RBC 1-2 veces, hasta que el precipitado se vuelva blanco.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Lave las células resuspendiendo el precipitado con 2 ml de PBS. A continuación, centrífuga a 300 x g durante 5 minutos para dejar que las células se asienten hasta la parte inferior del tubo.</li>
	<li>Etiquete a los neutrófilos con microperlas CD16 resuspendiendo el sedimento con 50 μL de amortiguador de clasificación de células magnéticas precooled. A continuación, mezcle con 50 μL de microperlas CD16 humanas a fondo. Incubar la mezcla a 4 °C durante 30 min. NOTA: Las soluciones deben preenfriarse para evitar el taponamiento de anticuerpos en la superficie celular y el etiquetado no específico. La mayoría de los adultos tienen entre 4.000 y 10.000 glóbulos blancos por microlitro de sangre, entre los cuales, los neutrófilos representan aproximadamente el 50-70%. Según las estimaciones, los recuentos de glóbulos blancos totales en 5 ml de sangre periférica humana suelen ser de hasta 2-5 x 107.</li>
	<li>Lave las células añadiendo 2 ml de amortiguador de clasificación de células magnéticas y centrífuga a 4 °C, 300 x g durante 10 min. Deseche el sobrenadante por completo y vuelva a gastar el precipitado con 500 μL de búfer de clasificación.</li>
	<li>Monte la columna magnética y el estante de separación. Mueva el separador al estante con la columna magnética y enjuague la columna con 3 ml de búfer de clasificación.</li>
	<li>Suelte la suspensión celular en la columna para permitir que los neutrófilos etiquetados por las cuentas magnéticas se unan a la columna magnética.</li>
	<li>Lávese las celdas no etiquetadas añadiendo 3 ml de búfer de clasificación de células magnéticas 3 veces, asegurándose de que el depósito de columnas esté vacío cada vez.</li>
	<li>Retire la columna del separador magnético y colóquela en un tubo de 15 ml. Agregue 5 ml de búfer de clasificación de células magnéticas a la columna. Expulse las células etiquetadas magnéticas usando un émbolo. NOTA: Para mejorar la pureza de los neutrófilos, los pasos de clasificación pueden repetirse utilizando una nueva columna.</li>
	<li>Centrífuga el tubo a 300 x g durante 5 min, deseche el sobrenadante por completo y resuspend el precipitado con 1 ml de medio de cultivo. Determine el número de celda con un contador de celdas y prepare las celdas para más experimentos.</li>
</ol>4. Medición de ROS
<ol><li>Centrífuga los neutrófilos aislados a 300 x g durante 5 minutos, resuspend el precipitado y ajuste la concentración celular a 2 x 106/ml con un medio de cultivo que contenga una sonda de fluorescencia DHE de 5 μM.</li>
	<li>Incubar los neutrófilos a 37 °C durante 30 minutos para cargar la sonda DHE, y luego asignar la suspensión celular a una microplaca de poliestireno negro de 96 pozos con 200 μL por pozo.</li>
	<li>Encienda el lector de microplacas y abra el software de detección. Elija el formato de placa opaca de 96 pozos y determine el área de lectura.<ol>
<li>Ajuste la fluorescencia (Ex/Em = 518/605 nm) en modo cinético cada 5 minutos durante 60 min a 37 °C. Asegúrese de agitar el plato durante 3 s antes de cada lectura.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Saque la microplaca de la incubadora, agregue la E44 cultivada (MOI=100) o el phorbol 12-myristate 13-acetato (PMA) (100 ng/mL) a cada pozo que contenga neutrófilos precargados con 3 réplicas. Utilice PMA como control positivo.</li>
	<li>Coloque la placa en el lector de microplacas e inicie el ensayo inmediatamente.</li>
</ol>

<ol><li>Kim, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+bacterial+meningitis+in+infants+and+children%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Acute bacterial meningitis in infants and children.</a> Lancet Infectious Diseases. 10 (1), 11(2010).</li>
<li>Woll, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidemiology+and+Etiology+of+Invasive+Bacterial+Infection+in+Infants+%3C%2F%3D60+Days+Old+Treated+in+Emergency+Departments%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pediatrics%22%5BJournal%5D)">Epidemiology and Etiology of Invasive Bacterial Infection in Infants </=60 Days Old Treated in Emergency Departments.</a> Journal of Pediatrics. 200, 210-217 (2018).</li>
<li>Xu, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Etiology+and+Clinical+Features+of+Full-Term+Neonatal+Bacterial+Meningitis%3A+A+Multicenter+Retrospective+Cohort+Study%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Pediatrics%22%5BJournal%5D)">Etiology and Clinical Features of Full-Term Neonatal Bacterial Meningitis: A Multicenter Retrospective Cohort Study.</a> Frontiers in Pediatrics. 7, 31(2019).</li>
<li>Kim, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+Meningitis-Associated+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22EcoSal+Plus%22%5BJournal%5D)">Human Meningitis-Associated Escherichia coli.</a> EcoSal Plus. 7 (1), (2016).</li>
<li>Rosales, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophils+at+the+crossroads+of+innate+and+adaptive+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Leukocyte+Biology%22%5BJournal%5D)">Neutrophils at the crossroads of innate and adaptive immunity.</a> Journal of Leukocyte Biology. 108 (1), 377-396 (2020).</li>
<li>Kolaczkowska, E., Kubes, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophil+recruitment+and+function+in+health+and+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews%3A+Immunology%22%5BJournal%5D)">Neutrophil recruitment and function in health and inflammation.</a> Nature Reviews: Immunology. 13 (3), 159-175 (2013).</li>
<li>Winterbourn, C. C., Kettle, A. J., Hampton, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reactive+Oxygen+Species+and+Neutrophil+Function%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Reactive Oxygen Species and Neutrophil Function.</a> Annual Review of Biochemistry. 85, 765-792 (2016).</li>
<li>Witko-Sarsat, V., Descamps-Latscha, B., Lesavre, P., Halbwachs-Mecarelli, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophils%3A+Molecules%2C+Functions+and+Pathophysiological+Aspects%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Investigation%22%5BJournal%5D)">Neutrophils: Molecules, Functions and Pathophysiological Aspects.</a> Laboratory Investigation. 80 (5), 617-653 (2000).</li>
<li>Zorov, D. B., Juhaszova, M., Sollott, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+reactive+oxygen+species+%28ROS%29+and+ROS-induced+ROS+release%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Reviews%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial reactive oxygen species (ROS) and ROS-induced ROS release.</a> Physiological Reviews. 94 (3), 909-950 (2014).</li>
<li>Zeng, M. Y., Miralda, I., Armstrong, C. L., Uriarte, S. M., Bagaitkar, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+roles+of+NADPH+oxidase+in+modulating+neutrophil+effector+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Oral+Microbiology%22%5BJournal%5D)">The roles of NADPH oxidase in modulating neutrophil effector responses.</a> Molecular Oral Microbiology. 34 (2), 27-38 (2019).</li>
<li>Liew, P. X., Kubes, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Neutrophil%27s+Role+During+Health+and+Disease%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Reviews%22%5BJournal%5D)">The Neutrophil's Role During Health and Disease.</a> Physiological Reviews. 99 (2), 1223-1248 (2019).</li>
<li>Brinkmann, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophil+Extracellular+Traps+Kill+Bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Neutrophil Extracellular Traps Kill Bacteria.</a> Science. 303 (5), 1532-1535 (2004).</li>
<li>Lam, G. Y., Huang, J., Brumell, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+many+roles+of+NOX2+NADPH+oxidase-derived+ROS+in+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Seminars+in+Immunopathology%22%5BJournal%5D)">The many roles of NOX2 NADPH oxidase-derived ROS in immunity.</a> Seminars in Immunopathology. 32 (4), 415-430 (2010).</li>
<li>Panday, A., Sahoo, M. K., Osorio, D., Batra, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NADPH+oxidases%3A+an+overview+from+structure+to+innate+immunity-associated+pathologies%5BTitle%5D)+AND+%22Cellular+%26+Molecular+Immunology%22%5BJournal%5D)">NADPH oxidases: an overview from structure to innate immunity-associated pathologies.</a> Cellular & Molecular Immunology. 12 (1), 5-23 (2015).</li>
<li>Nunes, P., Demaurex, N., Dinaue, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+the+NADPH+Oxidase+and+Associated+Ion+Fluxes+During+Phagocytosis%5BTitle%5D)+AND+%22Traffic%22%5BJournal%5D)">Regulation of the NADPH Oxidase and Associated Ion Fluxes During Phagocytosis.</a> Traffic. 14, 1118-1131 (2013).</li>
<li>Dahlgren, C., Karlsson, A., Bylund, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+Neutrophil+Oxidants%3A+From+Laboratory+Curiosity+to+Clinical+Reality%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Intracellular Neutrophil Oxidants: From Laboratory Curiosity to Clinical Reality.</a> Journal of Immunology. 202 (11), 3127-3134 (2019).</li>
<li>Stoiber, W., Obermayer, A., Steinbacher, P., Krautgartner, W. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Role+of+Reactive+Oxygen+Species+%28ROS%29+in+the+Formation+of+Extracellular+Traps+%28ETs%29+in+Humans%5BTitle%5D)+AND+%22Biomolecules%22%5BJournal%5D)">The Role of Reactive Oxygen Species (ROS) in the Formation of Extracellular Traps (ETs) in Humans.</a> Biomolecules. 5 (2), 702-723 (2015).</li>
<li>Haynes, A. P., Fletcher, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((neutrophil+function+test%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Haematology%22%5BJournal%5D)">neutrophil function test.</a> Clinical Haematology. 3 (4), 871-887 (1990).</li>
<li>Eichelberger, K. R., Goldman, W. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+Neutrophil+Isolation+and+Degranulation+Responses+to+Yersinia+pestis+Infection%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Human Neutrophil Isolation and Degranulation Responses to Yersinia pestis Infection.</a> Methods in Molecular Biology. 2010, 197-209 (2019).</li>
<li>Siano, B., Oh, H., Diamond, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophil+isolation+protocol%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Neutrophil isolation protocol.</a> Journal of Visualized Experiments. (17), (2008).</li>
<li>Chen, X., Zhong, Z., Xu, Z., Chen, L., Wang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((2%27%2C7%27-Dichlorodihydrofluorescein+as+a+fluorescent+probe+for+reactive+oxygen+species+measurement%3A+Forty+years+of+application+and+controversy%5BTitle%5D)+AND+%22Free+Radical+Research%22%5BJournal%5D)">2',7'-Dichlorodihydrofluorescein as a fluorescent probe for reactive oxygen species measurement: Forty years of application and controversy.</a> Free Radical Research. 44 (6), 587-604 (2010).</li>
<li>Woolley, J. F., Stanicka, J., Cotter, T. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+advances+in+reactive+oxygen+species+measurement+in+biological+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Biochemical+Sciences%22%5BJournal%5D)">Recent advances in reactive oxygen species measurement in biological systems.</a> Trends in Biochemical Sciences. 38 (11), 556-565 (2013).</li>
<li>Dikalov, S. I., Harrison, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+detection+of+mitochondrial+and+cellular+reactive+oxygen+species%5BTitle%5D)+AND+%22Antioxidants+and+Redox+Signaling%22%5BJournal%5D)">Methods for detection of mitochondrial and cellular reactive oxygen species.</a> Antioxidants and Redox Signaling. 20 (2), 372-382 (2014).</li>
<li>Puleston, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+Mitochondrial+Mass%2C+Damage%2C+and+Reactive+Oxygen+Species+by+Flow+Cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Protocols%22%5BJournal%5D)">Detection of Mitochondrial Mass, Damage, and Reactive Oxygen Species by Flow Cytometry.</a> Cold Spring Harbor Protocols. 2015 (9), (2015).</li>
</ol>

Los autores no declaran intereses financieros competidores u otros conflictos de intereses.

Los neutrófilos actúan como el componente más abundante de los glóbulos blancos en la circulación sanguínea humana. Son células efectoras importantes en el sistema inmune humano innato, que construye la primera línea de defensa contra la invasión de patógenos11. La generación de ROS representa uno de los principales mecanismos bactericidas de los neutrófilos después de la fagocitosis11. Estudios recientes han demostrado que una estructura similar a la red liberada por un ne...

La meningitis bacteriana neonatal es una enfermedad infecciosa pediátrica común. Escherichia coli (E. coli)con una cápsula K1 es el patógeno gram-negativo más común que causa meningitis bacteriana neonatal, representando alrededor del 80% de la incidencia total1,2,3. A pesar de los avances en la quimioterapia antimicrobiana y la atención de apoyo, la meningitis bacteriana sigue siendo una de las afecciones más devastadoras con alta morbilidad y mortalidad4.
La aparición de meningitis bacteriana neonatal generalmente comienza con la bacteremia causada por la entrada de bacterias patógenas en la circulación periférica de las lesiones locales de los recién nacidos, seguida de la penetración a través de la barrera blood - brain (BBB) en el cerebro, lo que resulta en la inflamación de las meninges4. La aparición de la bacteremia depende de la interacción entre las bacterias y las células inmunes huésped, incluidos los neutrófilos y los macrófagos, etc. Los neutrófilos, que representan ~50-70% de los glóbulos blancos, son la primera línea de defensa contra las infecciones bacterianas5,6. Durante la invasión de bacterias, los neutrófilos activados son reclutados en los sitios infecciosos y liberan especies reactivas de oxígeno (ROS) incluyendo el anión superóxido, peróxido de hidrógeno, radicales hidroxilos y oxígeno singlete7. El ROS se somete a reacciones redox con la membrana celular, moléculas de ácido nucleico y proteínas de la bacteria, lo que resulta en la lesión y muerte de la bacteria invasora8. Las mitocondrias son el sitio principal de producción de ROS en células eucariotas, y varios oxidases (por ejemplo, nicotinamida adenina dinucleótido fosfato (NADPH) complejo oxidasa, sistema lipoxigenasa, proteína quinasa C y sistema ciclooxigenasa) median la producción de ROS9,10. La medición en tiempo real de la producción de ROS, que representa el mecanismo antimicrobiano primario en neutrófilos, es un método útil para estudiar la defensa del huésped durante la interacción bacteriana-huésped.
En este protocolo, la producción de ROS dependiente del tiempo en neutrófilos infectados con E. coli meningítica se cuantificó con una sonda ROS fluorescente DHE, detectada por un lector de microplacas de fluorescencia en tiempo real. Este método también se puede aplicar a la evaluación de la producción de ROS en otras células de mamíferos durante la interacción patógeno-huésped.

<table><tbody><tr><td>Tubos centrífugos cónicos de polipropileno de 15 mL</td><td>KIRGEN</td><td>KG2611</td><td></td></tr><tr><td>Placa de 96 pocillos</td><td>Agar Corning</td><td>3025</td><td></td></tr><tr><td></td><td>DINGGUO</td><td>DH010-1.1</td><td></td></tr><tr><td>Contador de células autenticado</td><td>Bio-rad</td><td>508BR03397</td><td></td></tr><tr><td>Carbinet de seguridad biológica</td><td>Shanghai Lishen</td><td>Hfsafe-1200Lcb2</td><td></td></tr><tr><td>Infusión cerebro-corazón</td><td>BD</td><td>237500</td><td></td></tr><tr><td>CD16 Microperlas, humano</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-045-701</td><td></td></tr><tr><td>Centrífuga</td><td>Changsha Xiangyi</td><td>TDZ5-WS</td><td></td></tr><tr><td>Columnas</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-401</td><td></td></tr><tr><td>Dihidroetidio (DHE)</td><td>MedChemExpress</td><td>104821-25-2</td><td></td></tr><tr><td>Suero fetal bovino</td><td>Cellmax</td><td>SA211.02</td><td></td></tr><tr><td>Incubadora</td><td>Heraeus</td><td>Hera Cell Tampón</td><td></td></tr><tr><td>de separación MACS</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-091-221</td><td></td></tr><tr><td>Lector de microplacas</td><td>Molecular Devices</td><td>SpectraMax M5</td><td></td></tr><tr><td>Phorbol 12-miristato 13-acetato (PMA)</td><td>Beyoitme</td><td>S1819-1mg</td><td></td></tr><tr><td>Unidad de separación QuadroMACS</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-090-976</td><td></td></tr><tr><td>Rifampicina</td><td>Solarbio</td><td>13292-46-1</td><td></td></tr><tr><td>medio RPMI1640</td><td>Sangon Biotech</td><td>E600027-0500</td><td></td></tr><tr><td>Agitador termostático</td><td>Shanghai Zhicheng</td><td>ZWY-100D</td><td></td></tr><tr><td>Trypton</td><td>OXOID</td><td>LP0042</td><td></td></tr><tr><td>Extracto de levadura</td><td>OXOID</td><td>LP0021</td><td></td></tr></tbody></table>

cuantificación en tiempo real de especies reactivas de oxígeno en neutrófilos infectados con escherichia coli meningítica

Real-Time Quantification of Reactive Oxygen Species in Neutrophils Infected with Meningitic Escherichia Coli

Escherichia coli (E. coli)es la bacteria Gram-negativa más común que causa meningitis neonatal. La aparición de bacteremia y penetración bacteriana a través de la barrera hematoencefálica son pasos indispensables para el desarrollo de la meningitis E. coli. Las especies reactivas de oxígeno (ROS) representan los principales mecanismos bactericidas de los neutrófilos para destruir los patógenos invadidos. En este protocolo, la producción de ROS intracelular dependiente del tiempo en neutrófilos infectados con E. coli meningítica se cuantificó utilizando sondas ROS fluorescentes detectadas por un lector de microplacas de fluorescencia en tiempo real. Este método también se puede aplicar a la evaluación de la producción de ROS en células de mamíferos durante las interacciones patógeno-huésped.

Utilizando el protocolo descrito en este artículo, los neutrófilos fueron aislados de la sangre periférica humana y cargados con la sonda de fluorescencia DHE para detectar los cambios de los niveles de ROS en respuesta a la infección por E44. Aquí, proporcionamos datos representativos que demuestran la producción ROS evocada por la cepa E44 determinada por un lector de microplacas en tiempo real. Al añadir cepas E44 a un MOI de 100, los niveles ROS aumentaron inmediatamente y mostraron una tendencia continua al alza con...

La escherichia coli es la principal causa de meningitis bacteriana gram-negativa neonatal. Durante la infección bacteriana, las especies reactivas de oxígeno producidas por neutrófilos desempeñan un papel bactericida importante. Aquí introducimos un método para detectar las especies reactivas de oxígeno en neutrófilos en respuesta a la meningitis E. coli.

Cuantificación en tiempo real de especies reactivas de oxígeno en neutrófilos infectados con escherichia coli meningítica

Escherichia coli (E. coli) is the most common Gram-negative bacteria causing neonatal meningitis. The occurrence of bacteremia and bacterial penetration ...

Escherichia Coli es la bacteria gram-negativa más común que causa meningitis neonatal. La aparición de meningitis bacteriana neonatal comienza únicamente con la bacteremia y luego las bacterias en la sangre penetran a través de la barrera hematoencefálica para causar meningitis. Los neutrófilos son la primera línea de defensa contra las infecciones bacterianas.Durante la invasión bacteriana, los neutrófilos activos liberan ROS. ROS representa los principales mecanismos bacteriocidas de las células huésped para destruir los patógenos invasores. Medir la producción de ROS en neutrófilos es un método útil para iniciar la defensa del huésped durante la interacción bacteriana-huésped.Tome una sola colonia bacteriana de la placa con una pipeta estéril y colóquela en un medio de infusión cerebro-corazón de cinco mililitros que contiene rifampicina en un matraz cóncavo. Incubar el cultivo bacteriano a 37 grados centígrados, con 90 RPM durante 17 horas en la incubadora. Centrífuga las muestras de sangre periférica a 2000 RPM durante cinco minutos.Después de la centrífuga, las muestras de sangre se dividen en tres capas. Desde la parte inferior hasta la parte superior, la capa de glóbulos ro

real-time-quantification-reactive-oxygen-species-neutrophils-infected

Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Neisseria meningitidis (Nm), una gram negativos humanos específicos de patógenos respiratorios, se puede unir a humanos α-actinina. Aquí se presenta un protocolo para la visualización de la colocalización de la bacteria intracelular de α-actinina después de la entrada de bacterias en las células endoteliales microvasculares cerebrales (HBMECs).

La visualización y cuantificación de interacciones intracelulares de Neisseria meningitidis Humanos y α-actinina de imagen confocal

En este video, demostramos un ensayo de quimioluminiscencia in vitro para detectar la generación de especies reactivas de oxígeno por parte de los neutrófilos al exponerse a una biopelícula bacteriana opsonizada.

Determinación de la producción de ROS por neutrófilos tras la interacción con biofilm opsonizado

Se adaptó un conjunto de protocolos para la medición de especies reactivas de oxígeno (ROS) que se pueden aplicar en varios modelos celulares de ameba y de mamíferos para estudios cualitativos y cuantitativos.

La detección, la visualización y cuantificación de la generación de especies reactivas de oxígeno en un sistema modelo de la ameba

Por la presente presentamos un protocolo para medir al lado de la cama la actividad endotoxina de muestras de sangre entera humana. El ensayo actividad de la endotoxina es una prueba simple de realizar y puede ser un biomarcador útil en pacientes en estado crítico con sepsis.

Ensayo de actividad de endotoxinas para la detección de endotoxemia de sangre completa en pacientes con enfermedades críticas

La infección de ratones neonatales con E. coli O1:K1:H7 bioluminiscente produce una infección séptica con inflamación pulmonar significativa y patología pulmonar. Aquí, describimos procedimientos para modelar y estudiar más a fondo la sepsis neonatal utilizando imágenes intravitales longitudinales en paralelo con la enumeración de cargas bacterianas sistémicas, perfiles inflamatorios e histopatología pulmonar.

Un modelo de imagen neonatal de sepsis bacteriana gram-negativa

Aquí, proponemos un protocolo sistematizado, accesible y reproducible para detectar especies reactivas celulares de oxígeno (ROS) utilizando una sonda de dicacetato de 2′,7′-diclorofluoresceína (DCFH-DA) en células gliales de Müller (MGC). Este método cuantifica los niveles totales de ROS celulares con un citómetro de flujo. Este protocolo es muy fácil de usar, adecuado y reproducible.

Cuantificación de especies reactivas de oxígeno utilizando sonda de dicacetato de 2′,7′-diclorofluoresceína y citometría de flujo en células gliales de Müller

El presente protocolo describe el estudio de las interacciones neutrófilos-biofilm. Las biopelículas de Staphylococcus aureus se establecen in vitro y se incuban con neutrófilos humanos derivados de sangre periférica. La respuesta de explosión oxidativa de los neutrófilos se cuantifica, y la localización de neutrófilos dentro de la biopelícula se determina mediante microscopía.

Ensayos in vitro estandarizados para visualizar y cuantificar las interacciones entre neutrófilos humanos y biopelículas de Staphylococcus aureus

Aquí se presenta un protocolo para la inducción y análisis de trampas extracelulares de neutrófilos (TNE) in vitro . La cuantificación del ADN, la catelicidina (LL37) y la actividad enzimática arrojó datos que muestran la variabilidad en la composición y morfología de los NET inducidos por estímulos microbianos y químicos en condiciones controladas similares.

Análisis morfológico y composicional de trampas extracelulares de neutrófilos inducidas por estímulos microbianos y químicos

Presentamos un protocolo para una técnica modificada de ensayo de inmunoadsorción enzimática sándwich para medir cuantitativamente dos componentes de los remanentes de trampas extracelulares de neutrófilos, los complejos de ADN conjugado con mieloperoxidasa y ADN conjugado con elastasa de neutrófilos, derivados de neutrófilos activados.

Cuantificación de complejos mieloperoxidasa-ADN y neutrófilos elastasa-ADN a partir de trampas extracelulares de neutrófilos mediante el uso de un ELISA sándwich modificado

Describimos protocolos paso a paso que miden la respiración mitocondrial de neutrófilos de ratón y humanos y células HL60 utilizando el analizador de flujo extracelular metabólico.

Medición en tiempo real del perfil bioenergético mitocondrial de neutrófilos

Presentamos un método automatizado de alto rendimiento para cuantificar las trampas extracelulares de neutrófilos (NET) utilizando el sistema de análisis de células vivas, junto con un enfoque de doble colorante dependiente de la permeabilidad de la membrana.

Técnica de alto rendimiento en tiempo real para cuantificar la formación de trampas extracelulares de neutrófilos en neutrófilos humanos

Aprende a cuantificar especies reactivas de oxígeno en tiempo real en neutrófilos infectados con Escherichia coli meningítica mediante sondas fluorescentes y lectura en placa. Este método permite estudiar los mecanismos bactericidas durante interacciones huésped-patógeno.

Cuantificación en tiempo real de especies reactivas de oxígeno en neutrófilos infectados con escherichia coli meningítica

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