Name: Reprogramación directa de fibroblastos de ratón en melanocitos (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-08-27T14:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 38 s
Description: Aprende la reprogramación directa de fibroblastos de ratón en melanocitos funcionales usando solo tres factores de transcripción: Mitf, Sox10 y PAX3. Este método optimizado mejora la eficiencia y estabilidad del sistema de cultivo para aplicaciones en medicina regenerativa y terapias contra el vitíligo.

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Este estudio fue parcialmente apoyado por subvenciones de la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (82070638 y 81770621) y la Fundación de Ciencias Naturales de la Provincia de Jiangsu (BK20180281).

Este trabajo fue aprobado por el Comité de Manejo y Uso de Animales de Laboratorio de la Universidad de Jiangsu (UJS-IACUC-AP--20190305010). Los experimentos se realizaron en estricta conformidad con los estándares establecidos por la Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care International (AAALAC International). No hubo experimentos con humanos, por lo que este trabajo no necesitó la aprobación del comité de ética de investigación humana. Consulte la Tabla de materiales para obtener detalles sobre los reactivos.
1. Construcción de un sistema concentrado de envasado de lentivirus para factores de transcripción
<ol><li>Producción del virus concentrado (Figura 1A, B)<ol>
<li>Placa 1,5 × 106 células HEK-293T en una placa de 60 mm y cultivar estas células con medio normal (ver Tabla 1) a 37 °C en una incubadora humidificada con 5% de CO2. NOTA: Si el virus necesita ser empaquetado en lotes, se puede utilizar una placa de cultivo celular de 100 mm (para más detalles, consulte la Tabla 2).</li>
		<li>Después de 24 h, asegúrese de que las células HEK-293T hayan alcanzado el 80-90% de confluencia el día de la transducción, y reemplace el medio con 3,5 ml de DMEM (150 μL de DMEM por 1 cm2). Dejar las células a 37 °C en una incubadora humidificada con 5% de CO2 durante 2 h. NOTA: El medio de reemplazo debe estar libre de suero, de modo que las células puedan estar "hambrientas" para una mejor transfección de plásmidos.</li>
		<li>Preparar la mezcla de plásmidos (mezcla A) que contenga 3 μg de los plásmidos diana de Mitf, Sox10, Pax3, Sox2, Sox9 o Snai2; 1 μg del plásmido envasador PMD2. G, y 2 μg del plásmido empaquetador PSPAX2. Enrasar el volumen de la mezcla A a 150 μL con DMEM sin suero. Prepare la mezcla del reactivo de transfección (mezcla B) agregando 12 μL del reactivo de transfección (el volumen es el doble de la masa total de todos los plásmidos) y componga el volumen de la mezcla B a 150 μL con DMEM sin suero. NOTA: Al preparar las mezclas, es importante agregar líquido lentamente para evitar burbujas de aire.</li>
		<li>Combine la mezcla A y la mezcla B después de dejar que permanezcan durante 5 minutos a temperatura ambiente. Incubar la mezcla a temperatura ambiente durante 20-30 min para formar el complejo de transfección.</li>
		<li>Saque las células HEK-293T de la incubadora, reemplace el medio con DMEM + 2% FBS, agregue la mezcla del paso 1.1.4 gota a gota y mezcle el líquido suavemente.</li>
		<li>Después de 8 h, cambie el medio con 3,5 ml de medio normal. Después de cambiar el medio, recoger el sobrenadante del virus cada 24 h y 48 h.</li>
		<li>Mezcle los sobrenadantes del virus recolectados en dos puntos de tiempo diferentes. Centrifugar a 200 × g durante 5 min a 4 °C. Pase el sobrenadante a través de filtros de 0,45 μm y recójalo en un tubo cónico estéril de 50 ml. NOTA: El virus recogido a las 24 h puede almacenarse a 4 °C y mezclarse con el virus recogido a las 48 h.</li>
		<li>Concentrar el sobrenadante del virus centrifugando a 6000 × g a 4 °C durante la noche (~16 h). Asegúrese de que el gránulo del virus sea visible en la parte inferior del tubo cónico después de la centrifugación.</li>
		<li>Vierta el sobrenadante lentamente. Disolver el gránulo del virus en un volumen de medio normal que sea 1/100th del volumen del sobrenadante del virus. Usando una micropipeta P1000, pipetee hacia arriba y hacia abajo suavemente hasta obtener una mezcla homogénea. Divida el virus concentrado en tubos de microcentrífuga según sea necesario. Conservar a -80 °C. NOTA: El virus se concentra 100 veces con este método. El virus concentrado (100x) se puede almacenar durante >1 año a -80 °C. Evite la congelación y descongelación repetidas del virus.</li>
	</ol></li>
	<li>Detección del título concentrado del virus (Figura 1C)<ol>
<li>La placa 1 × 105 células HEK-293T en un pocillo de una placa de 6 pocillos. Recuerda añadir uno bien como control negativo. Cultive estas células con medio normal a 37 °C en una incubadora humidificada con 5% de CO2.</li>
		<li>Añadir 0,1 μL o 0,2 μL de virus concentrado fluorescente (100x) a cada pocillo después de 24 h, y añadir 4 ng/μL del reactivo de transfección polimérica catiónica a cada pocillo. Aproximadamente 8-12 h después de la infección, reemplace el medio con el medio normal. NOTA: Para garantizar la precisión y la eficiencia de la detección de fluorescencia, la tasa de infección debe ser del 10-30%. La adición de 0,1 μL o 0,2 μL del virus concentrado fluorescente puede mantener la eficiencia de la infección dentro de este rango. El título concentrado del virus puede alcanzar 1 × 108 unidades transductoras (TU)/ml como mínimo.</li>
		<li>Aproximadamente 48 h después de la infección, lave el plato con 1 ml de solución salina estéril tamponada con fosfato (PBS) para eliminar las células muertas.</li>
		<li>Tripsinizar estas células usando 250 μL de tripsina-EDTA al 0,05% por pocillo en una placa de 6 pocillos durante 1 min a temperatura ambiente. Centrifugar a 200 × g durante 5 min a 4 °C y luego retirar el sobrenadante.</li>
		<li>Resuspenda el pellet celular en 1 ml de PBS, agregue la suspensión a un tubo de fondo redondo de poliestireno de 5 ml y detecte la eficiencia de infección de la fluorescencia del virus (proteína fluorescente verde, GFP +) utilizando citometría de flujo.</li>
		<li>Calcule el título concentrado del virus utilizando la siguiente fórmula: 105 (volumen celular) × tasa de infección (GFP+%)/volumen de virus añadido (0,1 μL o 0,2 μL).</li>
	</ol></li>
</ol>2. Reprogramación directa de fibroblastos a melanocitos (Figura 2A)
<ol><li>Cubra un pocillo de una placa de cultivo celular de 6 pocillos con 1 ml de solución de gelatina al 0,1% a temperatura ambiente durante 15-30 min. Asegúrese de que el pozo esté completamente cubierto con la solución de gelatina al 0,1%. Aspire la solución de gelatina al 0,1% después del recubrimiento. NOTA: Prepare una solución de gelatina al 0,1% (100 ml) de la siguiente manera: 0,1 g de gelatina en polvo se disuelven en 100 ml de agua ultrapura en una botella de vidrio en autoclave y luego se almacenan a 4 ° C durante no más de 2 meses.</li>
	<li>La placa 5 × 104 MEFs en un pocillo de una placa de 6 pocillos recubierta con gelatina al 0,1% (como en el paso 2.1), y cultiva estas células con medio normal a 37 °C en una incubadora humidificada con 5% de CO2 durante la noche.</li>
	<li>Pasadas las 24 h, confirmar que los MEFs han alcanzado el 40-50% de confluencia. Reemplace el medio por el medio normal.</li>
	<li>El día 0, saque el virus concentrado del congelador y derrita el virus en hielo. Calcule el volumen del virus que se agregará mediante eq. (1). Agregue el virus concentrado para los seis factores de transcripción, Mitf, Pax3, Sox10, Sox9, Sox2 y Snai2 (consulte la Tabla de materiales) a cada pozo de acuerdo con el volumen calculado, y luego agregue 4 μg / ml del agente de transfección polimérica catiónica. Número de células (5 × 104) × 30 (multiplicidad de infección, MOI)/título de virus (1)</li>
	<li>El día 1, 8-12 h después de la infección, retire el medio que contiene el virus y reemplácelo con un medio normal fresco mientras agrega 0.5 μg / ml de puromicina para detectar líneas celulares infectadas estables.</li>
	<li>El día 2, 48 h después de la infección, reemplace el medio sobrenadante gradualmente con el medio de reprogramación. Primero, cambie 1/4 del volumen medio total y agregue 3 μM CHIR99021.</li>
	<li>Desde el día 3 hasta el día 7, dependiendo de la condición de las celdas, cambie el medio reemplazando con una mayor proporción de medio de reprogramación (ver Tabla 1) gradualmente, y cambie a un medio de reprogramación completo dentro de los 5 días. NOTA: Durante este período, puromycin y CHIR99021 deben usarse todos los días. Muchas células muertas aparecerán el primer y segundo día de cambio del medio de reprogramación. Esto es normal a medida que las células se adaptan gradualmente a la transformación. Por lo tanto, el medio debe cambiarse gradualmente para garantizar la proliferación saludable de las células.</li>
	<li>Para pasar las células, agregue 500 μL de tripsina-EDTA al 0.05% para digerir las células durante 3 minutos a temperatura ambiente. Cuando ~ 60% de las células han flotado, detenga la digestión agregando un medio normal 2 veces el volumen de la enzima digestiva. Recoger la suspensión celular en un tubo cónico estéril de 15 ml, centrifugar a 200 × g durante 5 min a 4 °C, retirar el sobrenadante, resuspendir el pellet celular con el medio de reprogramación y colocar las células en una placa estéril de 60 mm a una densidad de 3 × 104/cm2. Cultive estas células a 37 °C en una incubadora humidificada al 5% de CO2 . NOTA: Desde el día 8 hasta el día 21, estas células se subcultivan cada 3-5 días y se cultivan en platos estériles de 60 mm para expandirse. Se pueden cultivar para llegar al menos al pasaje 5.</li>
</ol>3. Optimización para la reprogramación e identificación directa
<ol><li>Detección de los factores de transcripción optimizados<ol>
<li>Repita los pasos 2.1-2.7, reduciendo uno de los seis factores de transcripción cada vez. Infectar los MEF con el virus con combinaciones de cinco factores de transcripción.</li>
		<li>Siete días después de la infección, extraer el ARN de estas células16 y analizar los niveles de expresión de sus genes melanocíticos mediante PCR de transcripción inversa (RT-PCR)17 para detectar los factores de transcripción con mayor impacto en la conversión a melanocitos eliminándolos uno por uno (Figura 3A).</li>
		<li>Utilice los tres principales factores de transcripción que afectan la conversión a melanocitos para infectar los MEF. Repita los pasos 2.1 a 2.7. NOTA: Siete días después de la infección, los genes melanocíticos deben ser detectables en estas células transformadas (Figura 3B). La información de imprimación para la caracterización de iMels se incluye en la Tabla 3.</li>
	</ol></li>
	<li>Identificación de melanocitos inducidos (iMels)<ol>
<li>Utilice la tinción de inmunofluorescencia18 para verificar que los iMels expresan proteínas melanocíticas, incluyendo TYRP-1 y DCT (Figura 4A).</li>
		<li>Tinción de 3,4-dihidroxifenilalanina (DOPA) específica de melanina (Figura 4B)<ol>
<li>Prepare paraformaldehído al 4% (10 ml) de la siguiente manera: disuelva 0,4 g de polvo de paraformaldehído en 10 ml de PBS. Coloque la solución en un horno a 56 °C durante 2 h para promover la disolución. NOTA: La solución se puede mantener a 4 °C durante no más de un mes.</li>
			<li>Cultive los iMels en un plato de 30 mm y lave el plato dos veces con PBS precalentado. Agregue 1 ml de paraformaldehído al 4% para fijar las células durante 20 minutos y lave el plato 3 veces con PBS.</li>
			<li>Prepare la solución de tinción de DOPA al 0,1% (10 ml) justo antes de su uso disolviendo 0,01 g de polvo de L-DOPA en 10 ml de PBS. Coloque la solución en un baño de agua a 37 °C durante 30 min; agitarlo varias veces para promover la disolución.</li>
			<li>Agregue 1 ml de solución de tinción de DOPA al 0,1% recién preparada. Incubar en un horno a 37 °C durante 2-5 h. Si no hay partículas marrón-negras, continúe incubando a 37 °C durante otras 2 h, pero no durante >5 h. Compruebe las muestras cada 30 minutos.</li>
			<li>Lave el plato 3 veces con PBS durante 1 minuto cada vez. Mante el núcleo con 1 ml de solución de tinción de hematoxilina durante 2 min.</li>
			<li>Para el almacenamiento a largo plazo, deshidrate las muestras con etanol al 95% durante 3 minutos y luego etanol al 100% durante 5 minutos. Selle el plato con xileno y bálsamo neutro.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Tinción de Masson-Fontana específica de melanina (Figura 4B)<ol>
<li>Placa iMels en un plato de 30 mm y fijar las células con 4% de paraformaldehído durante 20 min; lavar el plato 3 veces con PBS.</li>
			<li>Agregue 1 ml de solución A (solución de plata de amoníaco) del kit de tinción Masson-Fontana (consulte la Tabla de materiales), coloque el plato en una caja oscura y coloque la caja oscura en un horno a 56 ° C durante 15-40 min. NOTA: Si las partículas marrón-negras no son visibles después de 15 min en el horno, devuelva las muestras al horno de 56 °C para continuar incubando, pero no durante >40 min. Se puede agregar un poco de agua a la caja oscura para evitar que se seque.</li>
			<li>Aspirar la solución A y lavar el plato 5-6 veces con agua destilada, 1-2 min cada vez.</li>
			<li>Agregue 1 ml de solución B (hipo solución) del kit de tinción Masson-Fontana y deje el plato a temperatura ambiente durante 3-5 min.</li>
			<li>Aspire la solución B y lave el plato con agua del grifo 3 veces, 1 min cada vez.</li>
			<li>Agregue 1 ml de solución C (tinte rojo neutro) del kit de tinción Masson-Fontana y deje el plato a temperatura ambiente durante 3-5 min.</li>
			<li>Aspirar la solución C y lavar el plato 3 veces con agua destilada, 1 min cada vez.</li>
			<li>Agregue 1 ml de etanol al 100% para una deshidratación rápida y aspire el etanol después de 3 min. NOTA: Las muestras teñidas se pueden almacenar durante mucho tiempo después del sellado con xileno y bálsamo neutro.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol><li>Ezzedine, K., Eleftheriadou, V., Whitton, M., van Geel, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vitiligo%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Vitiligo.</a> Lancet. 386 (9988), 74-84 (2015).</li>
<li>Picardo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vitiligo%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews.+Disease+Primers%22%5BJournal%5D)">Vitiligo.</a> Nature Reviews. Disease Primers. 1, 15011(2015).</li>
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<li>Mohammad, T. F., Hamzavi, I. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+therapies+for+vitiligo%5BTitle%5D)+AND+%22Dermatologic+Clinics%22%5BJournal%5D)">Surgical therapies for vitiligo.</a> Dermatologic Clinics. 35 (2), 193-203 (2017).</li>
<li>Bishnoi, A., Parsad, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+and+molecular+aspects+of+vitiligo+treatments%5BTitle%5D)+AND+%22International+journal+of+molecular+sciences%22%5BJournal%5D)">Clinical and molecular aspects of vitiligo treatments.</a> International journal of molecular sciences. 19 (5), 1509(2018).</li>
<li>Takahashi, K., Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+decade+of+transcription+factor-mediated+reprogramming+to+pluripotency%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews.+Molecular+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">A decade of transcription factor-mediated reprogramming to pluripotency.</a> Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 17 (3), 183-193 (2016).</li>
<li>Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pluripotent+stem+cell-based+cell+therapy-promise+and+challenges%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Pluripotent stem cell-based cell therapy-promise and challenges.</a> Cell Stem Cell. 27 (4), 523-531 (2020).</li>
<li>Xu, J., Du, Y., Deng, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+lineage+reprogramming%3A+strategies%2C+mechanisms%2C+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Direct lineage reprogramming: strategies, mechanisms, and applications.</a> Cell Stem Cell. 16 (2), 119-134 (2015).</li>
<li>Ieda, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+reprogramming+of+fibroblasts+into+functional+cardiomyocytes+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Direct reprogramming of fibroblasts into functional cardiomyocytes by defined factors.</a> Cell. 142 (3), 375-386 (2010).</li>
<li>Gascón, S., Masserdotti, G., Russo, G. L., Götz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+neuronal+reprogramming%3A+achievements%2C+hurdles%2C+and+new+roads+to+success%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Direct neuronal reprogramming: achievements, hurdles, and new roads to success.</a> Cell Stem Cell. 21 (1), 18-34 (2017).</li>
<li>Atkinson, P. J., Kim, G. S., Cheng, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+cellular+reprogramming+and+inner+ear+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Opinion+on+Biological+Therapy%22%5BJournal%5D)">Direct cellular reprogramming and inner ear regeneration.</a> Expert Opinion on Biological Therapy. 19 (2), 129-139 (2019).</li>
<li>Kurita, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+reprogramming+of+wound-resident+cells+generates+skin+epithelial+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">In vivo reprogramming of wound-resident cells generates skin epithelial tissue.</a> Nature. 561 (7722), 243-247 (2018).</li>
<li>Yang, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+conversion+of+mouse+and+human+fibroblasts+to+functional+melanocytes+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Direct conversion of mouse and human fibroblasts to functional melanocytes by defined factors.</a> Nature Communications. 5, 5807(2014).</li>
<li>Fehrenbach, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loss+of+tumorigenic+potential+upon+transdifferentiation+from+keratinocytic+into+melanocytic+lineage%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Loss of tumorigenic potential upon transdifferentiation from keratinocytic into melanocytic lineage.</a> Scientific Reports. 6, 28891(2016).</li>
<li>Majumdar, G., Vera, S., Elam, M. B., Raghow, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+streamlined+protocol+for+extracting+RNA+and+genomic+DNA+from+archived+human+blood+and+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">A streamlined protocol for extracting RNA and genomic DNA from archived human blood and muscle.</a> Analytical Biochemistry. 474, 25-27 (2015).</li>
<li>Bachman, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reverse-transcription+PCR+%28RT-PCR%29%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Enzymology%22%5BJournal%5D)">Reverse-transcription PCR (RT-PCR).</a> Methods in Enzymology. 530, 67-74 (2013).</li>
<li>Donaldson, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunofluorescence+staining%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Immunofluorescence staining.</a> Current Protocols in Cell Biology. 69 (1), 1-7 (2015).</li>
<li>Yin, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-viral+vectors+for+gene-based+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews.+Genetics%22%5BJournal%5D)">Non-viral vectors for gene-based therapy.</a> Nature Reviews. Genetics. 15 (8), 541-555 (2014).</li>
</ol>

Los autores no tienen conflictos de intereses que revelar.

La calidad del virus es crucial para el éxito de la reprogramación directa a los melanocitos en este protocolo. El método de envasado y concentración de virus en este protocolo es simple y fácil de repetir y no depende de ningún otro reactivo concentrado auxiliar. Este protocolo se puede seguir con éxito en la mayoría de los laboratorios. Para garantizar la calidad del virus concentrado, los siguientes puntos necesitan una atención especial. Uno es el estado celular de HEK-293T. Aunque las células HEK-293T son células in...

El vitiligo es una enfermedad de la piel que afecta seriamente la salud física y mental de los individuos afectados. Por diversas razones, incluyendo anomalías metabólicas, estrés oxidativo, generación de mediadores inflamatorios, desprendimiento celular y respuesta autoinmune, los melanocitos funcionales se pierden y se detiene la secreción de melanina, lo que lleva al desarrollo de vitiligo 1,2. Esta condición ocurre ampliamente y es particularmente problemática en la cara. El tratamiento principal es el uso sistémico de corticosteroides e inmunomoduladores. La fototerapia se puede utilizar para enfermedades sistémicas o locales, y existen tratamientos quirúrgicos, como el trasplante de piel perforada y el trasplante autólogo de melanocitos 3,4,5. Sin embargo, los pacientes que usan terapia farmacológica y fototerapia son propensos a la recaída, y estos tratamientos tienen efectos terapéuticos pobres a largo plazo. El tratamiento quirúrgico es traumático y sólo moderadamente efectivo 2,6. Por lo tanto, se necesita una estrategia terapéutica nueva y efectiva para el vitiligo.
La reprogramación de células madre pluripotentes inducidas (iPSC) revierte estas células de su estado terminal a un estado pluripotente, un proceso mediado por los factores de transcripción, Oct4, Sox2, Klf4 y c-Myc7. Sin embargo, debido a la posibilidad de tumorigenicidad y al largo tiempo de producción, esta tecnología ha sido recibida con escepticismo cuando se aplica a entornos clínicos8. La reprogramación directa es una tecnología que hace que un tipo de célula terminal se transforme en otro tipo de célula terminal9. Este proceso se logra mediante factores de transcripción adecuados. Varias células ya han sido reprogramadas directamente con éxito, incluyendo cardiomiocitos10, neuronas11 y células ciliadas cocleares12. Algunos investigadores incluso han reprogramado el tejido de la piel directamente in situ, que se puede utilizar para la reparación de heridas13. Las ventajas de la reprogramación directa incluyen tiempos y costos de espera reducidos, menor riesgo de cáncer, menos problemas éticos y una mejor comprensión del mecanismo subyacente a la determinación del destino celular9.
Aunque el método de reprogramación directa es ampliamente utilizado, actualmente no existe un método definido para la reprogramación directa de las células de la piel en melanocitos, especialmente debido a los numerosos factores de transcripción que deben considerarse14,15. Los factores de transcripción, Mitf, Sox10 y Pax3, se han utilizado para la reprogramación directa de las células de la piel en melanocitos14. En contraste, la combinación de MITF, PAX3, SOX2 y SOX9 también se ha utilizado para la reprogramación directa de células de la piel en melanocitos humanos en otro estudio15. En este protocolo, a pesar del uso de un método de cribado diferente, se obtuvo el mismo resultado con la combinación de Mitf, Sox10 y Pax3 para la reprogramación directa de células de la piel en melanocitos como se describió anteriormente14. El desarrollo de un sistema para generar melanocitos a partir de otras células de la piel puede proporcionar un esquema para transformar otras células de la piel de pacientes con vitiligo en melanocitos. Por lo tanto, es crucial construir un método simple y eficiente para que esta reprogramación directa genere melanocitos con éxito.

<table><tbody><tr><td>0.05% Tripsina-EDTA</td><td>Gibco</td><td>25300-062</td><td>almacenado a -20 &deg; C</td></tr><tr><td>0,45 &mu; Filtro</td><td>M Millipore</td><td>SLHVR33RB</td><td></td></tr><tr><td>5 mL poliestireno tubo de fondo redondo</td><td>Falcon</td><td>352052</td><td></td></tr><tr><td>95%/100% etanol</td><td>LANBAO</td><td>210106</td><td>Almacenado en RT</td></tr><tr><td>Adenina</td><td>Sigma</td><td>A2786</td><td>Concentración de existencias 40 mg/mL Concentración final 24 &micro; g/mL</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 555 Cabra anti-Ratón IgG2a</td><td>Invitrogen</td><td>A21137</td><td>Dilución de 1:500 para usar</td></tr><tr><td>Antibióticos(Pluma/Estreptococo)</td><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td>Almacenado a -20 &deg; C</td></tr><tr><td>Anticuerpo anti-TRP1/TYRP1</td><td>Millipore</td><td>MABC592</td><td>Huésped/Isotipo: Ratón IgG2a Reactividad de la especie: Ratón/Humano Dilución de 1:200 para utilizar</td></tr><tr><td>Anticuerpo Anti-TRP2/DCT</td><td>Abcam</td><td>ab74073</td><td>Huésped/Isotipo: Conejo IgG Reactividad de la especie: Ratón/Humano Dilución de 1:200 para utilizar</td></tr><tr><td>CHIR99021</td><td>Stemgent</td><td>04-0004</td><td>Concentración de stock 10 mM Final concentración 3 &mu; M</td></tr><tr><td>Toxina del cólera</td><td>Sigma</td><td>C8052</td><td>Concentración de existencias 0,3 mg/mL Concentración final 20 pM</td></tr><tr><td>Cy3 Cabra anti-Conejo IgG (H+L)</td><td>Jackson Immunoresearch</td><td>111-165-144</td><td>Dilución de 1:500 para usar</td></tr><tr><td>DMEM (Alta glucosa)</td><td>HyClone</td><td>SH30243.01</td><td>Almacenado a 4 & grados; C</td></tr><tr><td>DMSO&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>D2650</td><td>almacenado en RT</td></tr><tr><td>FBS</td><td>Gibco</td><td>10270-106</td><td>almacenado a -20 &deg; C Inactivado por calor antes de usar</td></tr><tr><td>Gelatina</td><td>Sigma</td><td>G9391</td><td>almacenada en</td></tr><tr><td>plásmidos RT GFP-PURO (Mitf, Sox10, Pax3, Sox2, Sox9 y Snai2)</td><td>Hanheng Biological Technology Co., Ltd.</td><td>pHBLPm003198 pHBLPm001143 pHBLPm002968 pHBLPm002981 pHBLPm004348 pHBLPm000325</td><td>Almacenado a -20 &deg; C</td></tr><tr><td>Hematoxilina</td><td>Abcam</td><td>ab220365</td><td>Almacenado en RT</td></tr><tr><td>Human EDN3</td><td>Péptido americano</td><td>88-5-10A</td><td>Concentración de existencias 100 &mu; M Concentración final 0,1 &mu; M</td></tr><tr><td>Hidrocortisona</td><td>Sigma</td><td>H0888</td><td>Concentración de existencias 100 &micro; g/mL Concentración final 0,5 y micro; g/mL</td></tr><tr><td>L-DOPA</td><td>Sigma</td><td>D9628</td><td>almacenado en RT</td></tr><tr><td>Lipofectamine 2000</td><td>Invitrogen</td><td>11668-019</td><td>Reactivo de transfección, almacenado a 4 & deg; C</td></tr><tr><td>Kit de tinción Masson-Fontana</td><td>Solarbio</td><td>G2032</td><td>Almacenado a 4 & grados; C</td></tr><tr><td>Bálsamo neutro</td><td>Solarbio</td><td>G8590</td><td>Almacenado a 4 & grados; C</td></tr><tr><td>Paraformaldehído</td><td>Sigma</td><td>P6148</td><td>Almacenado en RT</td></tr><tr><td>PBS (-)</td><td>Gibco</td><td>C10010500BT</td><td>Almacenado en RT</td></tr><tr><td>Phorbol 12-miristato 13-acetato (TPA)</td><td>Sigma</td><td>P8139</td><td>Concentración de stock 1 mM Concentración final 200 nM</td></tr><tr><td>Polybrene</td><td>Sigma</td><td>H9268</td><td>reactivo de transfección polimérica catiónica; Concentración de existencias 8 &mu; g/&micro; L Concentración final 4 ng/&micro; L</td></tr><tr><td>Puromicina</td><td>Gibco</td><td>A11138-03</td><td>Almacenado a -20 &deg; C</td></tr><tr><td>BFGF humano recombinante</td><td>Invitrogen</td><td>13256-029 Concentración de</td><td>existencias 4 &mu; g/mL Concentración final 10 ng/</td></tr><tr><td>mL Insulina humana recombinante</td><td>Sigma&nbsp;</td><td>I3536</td><td>Concentración de existencias 10 mg/mL Concentración final 5 &micro; g/mL</td></tr><tr><td>SCF humano recombinante</td><td>R& D</td><td>255-SC-010 Concentración de</td><td>existencias 200 &mu; g/mL Concentración final 100 ng/mL</td></tr><tr><td>RPMI-1640</td><td>Gibco</td><td>11875-093</td><td>Almacenado a 4 & grados; C</td></tr><tr><td>Xileno</td><td>Sigma</td><td>1330-20-7</td><td>almacenado en RT</td></tr></tbody></table>

reprogramación directa de fibroblastos de ratón en melanocitos

Direct Reprogramming of Mouse Fibroblasts into Melanocytes

La pérdida de función de los melanocitos conduce al vitiligo, que afecta seriamente la salud física y mental de los individuos afectados. Actualmente, no existe un tratamiento efectivo a largo plazo para el vitiligo. Por lo tanto, es imperativo desarrollar un tratamiento conveniente y efectivo para el vitiligo. La tecnología de medicina regenerativa para la reprogramación directa de las células de la piel en melanocitos parece ser un nuevo tratamiento prometedor para el vitiligo. Esto implica la reprogramación directa de las células de la piel del paciente en melanocitos funcionales para ayudar a mejorar la pérdida de melanocitos en pacientes con vitiligo. Sin embargo, este método debe probarse primero en ratones. Aunque la reprogramación directa es ampliamente utilizada, no existe un protocolo claro para la reprogramación directa en melanocitos. Además, el número de factores de transcripción disponibles es abrumador. 
Aquí, se presenta un protocolo de sistema de empaquetado de lentivirus concentrados para producir factores de transcripción seleccionados para reprogramar células de la piel a melanocitos, incluidos Sox10, Mitf, Pax3, Sox2, Sox9 y Snai2. Los fibroblastos embrionarios de ratón (MEF) se infectaron con el lentivirus concentrado para todos estos factores de transcripción para la reprogramación directa de los MEF en melanocitos inducidos (iMels) in vitro. Además, se examinaron estos factores de transcripción y se optimizó el sistema para la reprogramación directa a los melanocitos. La expresión de los marcadores característicos de melanina en iMels a nivel de gen o proteína aumentó significativamente. Estos resultados sugieren que la reprogramación directa de fibroblastos a melanocitos podría ser una nueva estrategia terapéutica exitosa para el vitiligo y confirmar el mecanismo de desarrollo de melanocitos, que proporcionará la base para una mayor reprogramación directa de fibroblastos en melanocitos in vivo.

Este artículo incluye los protocolos de un sistema concentrado de empaquetado de lentivirus para producir lentivirus de factores de transcripción para la reprogramación directa de fibroblastos a melanocitos y protocolos para la detección de factores de transcripción y reprogramación directa de melanocitos a partir de MEFs.
El éxito de la producción concentrada de lentivirus se evaluó observando la intensidad de fluorescencia de GFP (Figura 1A) o por citometría de ...

Aquí, describimos un sistema de reprogramación directa optimizado para melanocitos y un sistema de empaquetado de virus concentrado de alta eficiencia que garantiza una reprogramación directa sin problemas.

Reprogramación directa de fibroblastos de ratón en melanocitos

The loss of function of melanocytes leads to vitiligo, which seriously affects the physical and mental health of the affected individuals. Presently, ...

Se ha reportado reprogramación directa para generar melanocitos. Sin embargo, varios factores de transcripción se utilizan en diferentes estudios. En este protocolo, validamos y redujimos el número de factores de transcripción aún con una mayor eficiencia de reprogramación.Establecimos un sistema de reprogramación directa para generar melanocitos utilizando solo tres factores de transcripción, Mitf, Sox10 y PAX3, y modificamos el sistema de cultivo para hacerlo más estable y robusto. Cómo regenerar los melanocitos funcionales es una pregunta importante que puede ayudar a abordar las limitaciones de la terapia para las enfermedades de despigmentación como el vitiligo. La reprogramación correcta proporciona una perspectiva Nuestra técnica tiene las características de conveniencia, fuerte operatividad y estabilidad, que es más fácil de promover y repetir.Para comenzar la producción del lentivirus concentrado, coloque la placa 1.5 veces 10 a las 6 células HEK-293T en un plato de 60 milímetros, y cultive las células con medio normal a 37 grados Celsius en una incubadora humidificada con 5% de dióxido de carbono. Después de 24 horas de la incubación, cuando las células HEK-293T hayan alcanzado una confluencia del 80 al 90%, reemplace el medio con 3.5 mL de DMEM, luego incube las células a 37 grados Celsius en una incubadora humidificada con 5% de dióxido de carbono durante dos horas. Después de retirar las células de la incubadora, reemplace el medio con DMEM que contenga 2% FBS y agregue la mezcla compleja de transfección recién preparada a las células de manera aleatoria.Mezcle la mezcla líquida suavemente. Al finalizar ocho horas, cambie el medio celular con 3,5 ml de medio normal. Recoger el sobrenadante del virus a las 24 y 48 horas.A continuación, mezcle los sobrenadantes del virus recolectados en dos puntos de tiempo diferentes y centrífuga la mezcla a 200 xg durante cinco minutos a cuatro grados centígrados. Luego pase el sobrenadante recolectado a través de filtros de 0.45 micras para recolectar el filtrado en un tubo cónico estéril de 50 ml. Concentre el sobrenadante del virus filtrado por centrifugación a 6.000 xg a cuatro grados centígrados durante la noche.Una vez hecho esto, asegúrese de que el gránulo del virus sea visible en la parte inferior del tubo cónico. Vierta el sobrenadante lentamente. Para disolver el gránulo del virus en el medio normal con uno por 100 * volumen del sobrenadante del virus.Use una micropipeta P1000 para pipetear hacia arriba y hacia abajo suavemente hasta obtener una mezcla homogénea de virus concentrado 100x. Divida el virus concentrado en los tubos de la microcentrífuga para almacenarlo a 80 grados centígrados. Placa 1 veces 10 a la 5ª célula HEK-293T en un pozo de una placa de seis pocillos.Cultive estas células con el medio normal a 37 grados centígrados en una incubadora humidificada con 5% de dióxido de carbono. Después de 24 horas, agregue de 0.1 a 0.2 microlitros del virus concentrado fluorescente 100x a cada pocillo. Seguido de la adición de cuatro nanogramos por microlitros del reactivo de transfección polimérica catiónica a cada pozo.Alrededor de ocho a doce horas después de la infección con el virus, reemplace el medio con el medio normal. A las cuarenta y ocho horas después de la infección, lave el plato con 1 ml de PBS estéril para eliminar las células muertas. Luego tripsinizar las células usando 250 microlitros de solución de tripsina-EDTA al 0.05% por pocillo de una placa de seis pocillos a temperatura ambiente.Centrifugar la placa a 200 xg durante cinco minutos a cuatro grados centígrados. Después de retirar el sobrenadante, vuelva a suspender el pellet celular en un ml de PBS y agregue la suspensión celular a un tubo de fondo redondo de poliestireno de cinco ml. Luego coloque el tubo en el citómetro de flujo para analizar la muestra.Para la reprogramación directa de fibroblastos, cubra un pocillo de una placa de cultivo celular de seis pocillos con 1 ml de solución de gelatina al 0,1% a temperatura ambiente. Después de 15 a 30 minutos, cuando el pozo esté completamente cubierto con la gelatina, aspire la solución de gelatina al 0,1%. A continuación, coloque 5 veces 10 a los 4º fibroblastos embrionarios de ratón, o MEF, en un pozo de una placa de seis pocillos recubierta con gelatina al 0,1%, y cultive las células durante la noche con el medio normal a 37 grados centígrados en una incubadora humidificada con 5% de dióxido de carbono.Después de 24 horas, cuando los MEF hayan alcanzado una confluencia del 40 al 50%, reemplace el medio por el medio normal. A continuación, derrita el virus congelado y concentrado en el hielo. Calcule el volumen del virus que se agregará utilizando la ecuación y luego agregue el virus concentrado para los seis factores de transcripción a cada pozo, de acuerdo con el volumen calculado.Agregue cuatro microgramos por ml del agente de transfección polimérica catiónica al pozo. Considéralo como el día cero de la infección por lentivirus. El primer día, después de 8 a 12 horas de infección, reemplace el medio que contiene el virus con el medio normal fresco, mientras agrega 0.5 microgramos por ml de puromicina para detectar líneas celulares infectadas estables.En el segundo día, 48 horas después de la infección, reemplace el medio sobrenadante gradualmente con el medio de reprogramación. Cambie una cuarta parte del volumen medio total antes de agregar tres micromolares CHIR99021. Desde el tercer día hasta el día siete, dependiendo de la condición de las células, cambie el medio reemplazándolo gradualmente con una mayor proporción de medio de reprogramación para cambiar al medio de reprogramación completo dentro de los cinco días.A continuación, separe las células con 500 microlitros de enzima digestiva tripsina-EDTA al 0,05% durante tres minutos a temperatura ambiente. Cuando aproximadamente el sesenta por ciento de las células han flotado, detenga la digestión agregando el medio normal, dos veces el volumen de la enzima digestiva. Recoja la suspensión celular en un tubo cónico estéril de 15 ml para centrifugar a 200 xg durante cinco minutos a cuatro grados centígrados.Retire el sobrenadante antes de volver a suspender el pellet celular con el medio de reprogramación. Cuando haya terminado, coloque las células resuspendidas en un plato estéril de 60 milímetros. Cultive las células a 37 grados centígrados en una incubadora humidificada de dióxido de carbono al 5%.Después de cuarenta y ocho horas de infección por lentivirus en células HEK-293T, el éxito de la producción concentrada de lentivirus se evaluó observando la intensidad de fluorescencia de GFP o mediante citometría de flujo. Se encontró que el título del virus concentrado era alto en 10 a 8º TU/ml. Durante la reprogramación directa de los fibroblastos, la morfología celular cambió gradualmente a sinapsis celular alargada y núcleos celulares agrandados.Sin embargo, las células envejecieron progresivamente después del día veinte. La eliminación de los factores de transcripción, Mitf, Pax3 o Sox10, resultó en el silenciamiento de la expresión de los genes melanocíticos, Tyr, Tyrp1 y Mlana, lo que indica el mayor impacto en la conversión de fibroblastos a melanocitos. Por lo tanto, la expresión de genes melanocíticos inducida por la programación directa con tres factores de transcripción fue mayor en comparación con seis factores de transcripción.Para identificar melanocitos inducidos por MEF, o iMels, se detectó la expresión de marcadores melanocíticos, TYRP1 y DCT mediante tinción inmunofluorescente. Además, los métodos de tinción específicos de melanina como DOPA y tinción de Masson-Fontana mostraron resultados positivos. Las células 293T deben distribuirse uniformemente.Además, la adición de mezcla de transfección a las células debe hacerse suavemente para evitar que las células floten. El protocolo es estable y práctico y se puede utilizar para reprogramar otros tipos de células. Se espera proporcionar una referencia y una estrategia para la reprogramación directa in vivo en la regeneración de melanocitos en la medicina futura.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Developmental Biology

Biología del Desarrollo

Este video muestra el procedimiento para generar células madre pluripotentes inducidas mediante lentivirus inducible que expresan Oct4, Sox2, c-Myc y Klf4.

La generación de células iPS a partir de MEFs través de la expresión forzada de Sox-2, Oct-4, c-Myc y Klf4

Este video describe el método rápido para aislar y cultivar los melanocitos y fibroblastos simultáneamente de la piel de la cría de ratón postnatal. Estas células se pueden mantener y manipular in vitro para estudiar la biología de las células de la piel, la cicatrización de heridas y el melanoma.

Cultivo rápido de melanocitos y fibroblastos murinos primarios: aislamiento de melanocitos y fibroblastos de muestras de piel murina completa

Generación de células madre pluripotentes inducidas ofrece perspectivas fascinantes para la derivación de los trasplantes autólogos. Sin embargo, la progresión a través de un estado pluripotente y laborioso re-diferenciación todavía dificulta traducción clínica. Aquí se describe la derivación de fibroblastos humanos de adultos y su conversión directa en células progenitoras neuronales inducidas y la posterior diferenciación en linajes neuronales.

Derivación de adultos fibroblastos humanos y de su conversión directa en células progenitoras neurales expandible

El protocolo descrito aquí detalla la inducción de un programa hemogénico en fibroblastos embrionarios de ratón a través de la sobreexpresión de un conjunto mínimo de factores de transcripción. Esta tecnología puede trasladarse al sistema humano para proporcionar plataformas para futuros estudios de la hematopoyesis, la enfermedad hematológica y el trasplante de células madre hematopoyéticas.

La reprogramación de fibroblastos embrionarios de ratón con factores de transcripción para inducir un programa Hemogenic

Aquí presentamos un método robusto para reprogramar fibroblastos embrionarios primarios en cardiomiocitos funcionales a través de la sobreexpresión de GATA4, Hand2, Mef2c, Tbx5, miR-1 y miR-133 (GHMT2m) junto con la inhibición de la señalización de TGF-β. Nuestro protocolo genera cardiomiocitos paliza tan pronto como transducción después de 7 días con hasta un 60% eficiencia.

Supresión de la señalización Pro-fibróticos potencia Factor-mediada la reprogramación de fibroblastos embrionarios de ratón en cardiomiocitos inducida

Presentamos nuestro protocolo para producir inducida por progenitores eritroides (iEPs) de fibroblastos adultos ratón usando transcripción basada en el factor dirigen linaje reprogramación (DLR).

Directo linaje reprogramación de fibroblastos de ratón adulto a progenitores eritroides

Aquí describimos un método clínicamente relevante, alta eficiencia y libre de alimentador para reprogramar fibroblastos primarios humanos en células pluripotentes inducidas, usando modificado mRNAs que codifican factores de reprogramación y microRNA maduro-367/302 imita. También se incluyen métodos para evaluar la eficiencia de reprogramación, ampliar las colonias clonales iPSC y confirmar la expresión de los marcadores de pluripotencia TRA-1-60.

Basado en el ARN la reprogramación de fibroblastos primarios de humanos en células madre pluripotentes inducidas

Este protocolo describe un método rápido para generar simultáneamente cultivos de melanocitos y fibroblastos a partir de la piel de ratones de 0-4 días de edad. Estos cultivos primarios pueden ser mantenidos y manipulados in vitro para estudiar una variedad de procesos fisiológicamente relevantes, incluyendo biología celular de la piel, pigmentación, cicatrización de heridas y melanoma.

Generación rápida de cultivos primarios de melanocitos muritonos y fibroblastos

Este protocolo demuestra la inducción de un programa hemogénico en fibroblastos dérmicos humanos mediante la expresión forzada de los factores de transcripción GATA2, GFI1B y FOS para generar células hematopoyéticas madre y progenitoras.

Reprogramación hemogénica de fibroblastos humanos por expresión forzada de factores de transcripción

La reprogramación celular requiere la introducción de genes clave, que regulan y mantienen el estado celular pluripotente. El protocolo descrito permite la formación de colonias de células madre pluripotentes inducidas (iPSC) a partir de fibroblastos dérmicos humanos sin métodos virales/integradores pero utilizando ARN no modificados (NM-RNA) combinados con factores de evasión inmune que reducen los mecanismos de defensa celular.

Aislamiento de fibroblastos dérmicos humanos adultos de la piel abdominal y generación de células madre pluripotentes inducidas utilizando un método no integrador

Este protocolo describe la conversión de fibroblastos de piel en mioblastos y su diferenciación en miotubes. Las líneas celulares se derivan de pacientes con trastornos neuromusculares y se pueden utilizar para investigar mecanismos patológicos y para probar estrategias terapéuticas.

Reprogramación directa de fibroblastos humanos en mioblastos para investigar terapias para trastornos neuromusculares

Aprende la reprogramación directa de fibroblastos de ratón en melanocitos funcionales usando solo tres factores de transcripción: Mitf, Sox10 y PAX3. Este método optimizado mejora la eficiencia y estabilidad del sistema de cultivo para aplicaciones en medicina regenerativa y terapias contra el vitíligo.

Reprogramación directa de fibroblastos de ratón en melanocitos

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