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Artículo de método

Análisis de la señalización lipídica en fotorreceptores de Drosophila mediante espectrometría de masas

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DOI:

10.3791/63516

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7 de marzo de 2022

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En este artículo

Resumen

El manuscrito presenta protocolos de espectrometría de masas versátiles, robustos y sensibles para identificar y cuantificar varias clases de lípidos de fotorreceptores de Drosophila .

Resumen

La activación de la fosfolipasa Cβ (PLCβ) es un paso esencial durante la transducción sensorial en los fotorreceptores de Drosophila . La actividad de PLCβ da lugar a la hidrólisis del lípido de membrana fosfatidilinositol 4,5 bisfosfato [PI(4,5)P2], lo que conduce en última instancia a la activación de canales de potencial receptor transitorio (TRP) y TRP similares (TRPL). La actividad de PLCβ también conduce posteriormente a la generación de muchas especies de lípidos, varias de las cuales se ha propuesto que desempeñan un papel en la activación de TRP y TRPL. Además, se ha propuesto que varias clases de lípidos desempeñan un papel clave en la organización de la biología celular de los fotorreceptores para optimizar las reacciones de señalización para una transducción sensorial óptima. Históricamente, estos descubrimientos han sido impulsados por la capacidad de aislar mutantes de Drosophila para enzimas que controlan los niveles de lípidos específicos y realizar análisis de la fisiología de los fotorreceptores en estos mutantes. Más recientemente, se han desarrollado potentes métodos de espectrometría de masas para el aislamiento y el análisis cuantitativo de lípidos con alta sensibilidad y especificidad. Estos son particularmente adecuados para su uso en Drosophila , donde ahora es posible el análisis de lípidos a partir de fotorreceptores sin la necesidad de marcar con radionúclidos. En este artículo, se cubren las consideraciones conceptuales y prácticas en el uso de la espectrometría de masas lipídicas para la evaluación cuantitativa robusta, sensible y precisa de varios lípidos de señalización en fotorreceptores de Drosophila . Junto con los métodos existentes en genética molecular y análisis fisiológico, es probable que estos lípidos aumenten el poder de los fotorreceptores como sistema modelo para los descubrimientos en biología.

Introducción

La fototransducción en Drosophila está mediada por una cascada PLCβ acoplada a la proteína G que conduce a la activación de los canales activados por luz TRP y TRPL1. PLCβ hidroliza el fosfolípido unido a la membrana, fosfatidilinositol 4,5 bisfosfato [PI(4,5)P2] y genera diacilglicerol (DAG) e inositol 1,4,5 trifosfato (IP3). A continuación, el DAG es fosforilado por la DAG-quinasa para generar ácido fosfatídico (PA). Posteriormente, a través de una serie de reacciones que implican la generación de intermedios lipídicos, se regenera PI(4,5)P2 2.....

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Protocolo

1. Cría de moscas y preparación de productos químicos

  1. Moscas traseras (Drosophila melanogaster) en alimento estándar para moscas en una incubadora con 50% de humedad relativa a 25 °C sin iluminación interna. Prepare el alimento para moscas agregando 80 g/L de harina de maíz, 20 g/L de D-glucosa, 40 g/L de sacarosa, 8 g/L de agar, 15 g/L de extracto de levadura, 4 mL de ácido propiónico, 0,7 g/L de TEGO (hidroxibenzoato de metilo) y 0,6 mL de ácido ortofosfórico como se describe en34 y también están disponibles en https:// bangalorefly.ncbs.res.in/drosophila-media-preparatio....

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Resultados

Determinación de la linealidad de la medición en MS. La linealidad es la capacidad del método MS para proporcionar resultados que son directamente proporcionales a la concentración del analito lipídico. La linealidad depende de (a) la eficiencia de ionización del analito lipídico y (b) el comportamiento de ionización del analito lipídico a diferentes concentraciones depende de la fuente de iones utilizada. En la ionización por electrospray (ESI) que se utiliza en este estudio, la linealidad se mantiene a.......

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Discusión

Una serie de líneas de evidencia convergen en múltiples roles de los lípidos de señalización en la regulación de la organización y función de los fotorreceptores de Drosophila. Además del papel bien estudiado de los lípidos en la regulación de la fototransducción3, los lípidos de señalización también se han implicado en el tráfico de proteínas y la organización subcelular 23,30,39,40,41.

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

El trabajo descrito en este manuscrito fue apoyado por el Departamento de Energía Atómica del Gobierno de la India (Identificación del Proyecto No. RTI 4006), el Departamento de Biotecnología del Gobierno de la India (BT/PR4833/MED/30/744/2012) y una beca senior de la Alianza de la India (IA/S/14/2/501540) a PR. Agradecemos al Centro de Espectrometría de Masas del NCBS, especialmente al Dr. Dhananjay Shinde y a los miembros del laboratorio de relaciones públicas por sus contribuciones al desarrollo de estos métodos.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
HCL metanólico 0,1 N Para elaislamiento total de lípidos
0,88% KClSigma AldrichP9541Para el aislamiento total de lípidos
1,5 ml / 2ml LoBind Tubos EppendorfEppendorf,022431081/022431102Para el aislamiento total de lípidos
2.3.18 16:0/18:1 Diether PELípidos polares Avanti999974Estándar interno de lípidos
37% HCl puroSigma Aldrich320331Para el aislamiento total de lípidos Placa
de 96 pocillos Ensayo defosfato orgánico total
AcetonaFisher Scientific32005Para disecciones
molibdatoFosfato orgánico total
ascórbicoFosfato orgánico total
Sonicadorde baño
Columna BEH300 C18 [1,0 mm x 100 mm x 1,7 mm]Waters India Pvt. Ltd.186002352
PortacuchillasFine Scientific Tools10052-11Para disecciones
IncubadoraDBO Ensayo de fosfato orgánico total
Cuchillas rompiblesFine Scientific tools10050-00Para disecciones
Papel mantequillaGE healthcare10347671Para disecciones
C4, 300 A0, [1.7 μ m x1 mm x 100 mm] columnaWaters India Pvt. Ltd.186004623
LC Cromatografía Viales de vidrio de color ámbar con insertosMerck27083-U
d18:1/17:0)Lípidos polares Avanti860517Patrón interno de lípidos
d5-Fosfatidilinositol 3,5-bisfosfato [PI(3,5)P2]-16:0/16:0Lípidos polares Avanti850172Patrón interno de lípidos
Microscopiosde disecciónOlympusSZ51Para disecciones
Baño de calor seco.
Eluyente AHexano:Alcohol isopropílico:100 mM acetato de amonio acuoso (68:30:2) , para LC
Eluyente BHexano:Alcohol isopropílico:100 mM acetato acuoso de amonio (70:20:10), para LC
Papel de filtroIndica-HM274039Para
disecciones MatracesBorosilPara disecciones
MoscasNANARaghu Padinjat lab
Alimento para moscasNANANCBS lab kitchen, composición: harina de maíz 80 g/L, D-glucosa 20 g/L, sacarosa 40 g/L, agar 8 g/L, extracto de levadura 15 g/L, ácido propiónico 4 mL, TEGO (metil para hidroxibenzoato) 0,7 g/L, ácido ortofosfórico 0,6 mL)
PinzasFine Scientific Tools11254-20Para disecciones
Embudo de campana
BorosilPara disecciones
Ácido acético glacialFisher ScientificA35-500Para derivatización
Frascos de vidrio: transparente y colorPara el aislamiento total
de lípidos Tubos de vidrio sin fosfatos resistentes a altas temperaturas.Ensayo de fosfato orgánico total
Tubos de homogeneización con perlasPara el aislamiento total de lípidos
Instrumento homogeneizadorPrecellys
CO2 conectado a las almohadillas para moscasPara empujar moscas
Incubadoras controladas por iluminaciónPanasonic SanyoMIR-553Para mosca cría
Mezclametanol:cloroformo (2:1), Para el aislamiento total de lípidos
Grado LC-MS CloroformoSigma Aldrich650498Para el aislamiento total
de lípidos Grado LC-MS MetanolSigma Aldrich34860Para el aislamiento total de lípidos
Agua de grado LC-MSSigma Aldrich34877Para un aislamiento total de lípidos
Ligero medidorHTC instrumentsLX-103
Puntas de baja retenciónEppendorf0030072006/72014/72022/72030Para el aislamiento total de lípidos
Instrumento LTQ Orbitrap XLThermo Fisher Scientific, Bremen, Alemania
Ácido lisofosfatídico (LPA)- 13:0Lípidos polares AvantiLM-1700Lípidos Estándar interno
Ácido lisofosfatídico (LPA)- 17:1Lípidos polares AvantiLM 1701Lípidos Estándar
Interno Lisofosfatidilcolina (LPC) -13:0Lípidos polaresAvanti LM-1600Lípidos Estándar Interno
Lisofosfatidilcolina (LPC) -17:1Lípidos polares Avanti855677Lípidos Estándar Interno
Lisofosfatidilcolina (LPC)- 19:0Lípidos polares Avanti855776Patrón
Ácido perclórico.Ensayo de fosfato orgánico total
Fosfato estándar de fosfato dihidrógenoEnsayo de fosfato orgánico total
Solución salina tamponada con fosfato (PBS)NANAComposición: 137 mMNaCl, 2,7 mM de KCl, 10 mM de Na2HPO4 y 1,8 mM de KH2PO4, pH 7,4
Ácido fosfatídico (PA) - 12:0/13:0Lípidos polares de Avanti, LM-1400  Lípidos Estándar Interno
Ácido fosfatídico (PA)- 17:0/14:1Lípidos polaresAvanti LM-1404Lípidos Estándar Interno
Ácido fosfatídico (PA)-(17:0/17:0)Lípidos polares Avanti830856Lípidos Estándar Interno
Ácido fosfatídico (PA)-16:0-D31/18:1Lípidos polares860453Pídidos Estándar
Interno Fosfatidilcolina (PC) -12:0/13:0Lípidos polares AvantiLM-1000Pípidos Estándar Interno
Fosfatidilcolina (PC) - 17:0/14:1Lípidos polaresLM-1004Lípidos Estándar Interno
Fosfatidiletanolamina (PE) - 17:0/14:1Lípidos polares AvantiLM-110Pípidos Estándar Interno
Fosfatidilinositol (PI) - 17:0/14:1Lípidos Avanti Estándar Interno LípidosLM-1504Lípidos
Fosfatidilinositol 4,5-bisfosfato [PI(4,5)P2)]-17:0/20:4Lípidos polares AvantiLM-1904Lípidos Estándar Interno
Fosfatidilinositol 4-fosfato (PI4P) - 17:0/20:4Lípidos polares AvantiLM-1901Estándar Interno de Lípidos
Fuente robótica de iones de nanoflujoTriVersa NanoMate (Advion BioSciences, Ithaca, NY, EE. UU.)
Rotospin instrumentoTarsons3090X
Almohadillas desilicona Para disecciones
disolvente A0,1% ácido fórmico en agua, para
LC disolvente B0,1% ácido fórmico en acetonitrilo, para LC
Centrífuga
Termomezclador
TMS-diazometanoAcrosAC385330050Para derivatización
Espectrómetro de masas de triple cuadrupoloAB SciexQTRAP 6500
Sistema UPLCWaters Acquity
Concentrador centrífugo de vacíoScanvac , Labogene
Máquina
Ensayo de de amonio Ensayo de ácido LC de extractora ámbar de óxido de circonio orgánica inicial Interno de Lípidos de potasio de sobremesa de vórtice

Referencias

  1. Hardie, R. C. C., Raghu, P. Visual transduction in Drosophila. Nature. 413 (6852), 186-193 (2001).
  2. Raghu, P., Yadav, S., Mallampati, N. B. N. Lipid signaling in Drosophila photoreceptors. Biochimica et Biophysica Acta. 1821 (8), 1154-1165 (2012).
  3. Hardie, R. C.

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