Name: Separación y recolección automáticas de sustancias relacionadas con el cáncer a partir de muestras clínicas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-01-13T14:40:00.000+00:00
Duration: 8 min 49 s
Description: Aprenda a separar y recolectar automáticamente ADN libre de células y células tumorales circulantes de sangre completa con alta pureza. Este protocolo automatizado minimiza la contaminación y facilita estudios genómicos del cáncer.

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Este manuscrito fue apoyado en parte por el Fondo de Desarrollo de Dispositivos Médicos de Corea (KMDF, Subvención No. RS-2020-KD000019) y el Instituto de Desarrollo de la Industria de la Salud de Corea (KHIDI, Subvención No. HI19C0521020020).

Todas las muestras de sangre entera se obtuvieron de pacientes con cáncer de pulmón. La investigación y el análisis en Clinomics son llevados a cabo por el Instituto de Investigación de Genómica del Cáncer, y la aprobación de la investigación del IRB por parte del gobierno está dirigida por el Comité de Revisión Institucional del Centro Médico Asan (IRB NO. 2021-0802) con el número IRB registrado para la investigación en Clinomics.
1. Preparación de la muestra
<ol><li>Recoja 9 ml de sangre total en un tubo de recolección de sangre estable con EDTA o cfDNA.</li>
	<li>Mezcle bien volteando el tubo hacia arriba y hacia abajo aproximadamente 10 veces.</li>
	<li>Conservar las muestras a temperatura ambiente (RT; para almacenamiento a corto plazo) o 4 °C (para almacenamiento a largo plazo). No congelar y descongelar.</li>
</ol>2. Preparación del dispositivo
<ol><li>Pulse el interruptor de encendido para encender el instrumento. NOTA: Aparece una pantalla de carga en el panel táctil y se inicializa el instrumento. Mantenga las manos alejadas del instrumento durante la inicialización. La pantalla de selección del cartucho aparece una vez completada la inicialización del instrumento.</li>
	<li>Seleccione el modo de muestra que se va a utilizar. Cambie el número de muestras pulsando la flecha.</li>
</ol>3. Funcionamiento del dispositivo y recogida de muestras
<ol><li>Carga del cartucho LBx-1<ol><li>Seleccione el tipo de cartucho en el panel de la pantalla táctil del instrumento. Cambie el número de muestras pulsando el botón de flecha.</li>
		<li>Abra la puerta del instrumento e inserte todos los cartuchos que se utilizarán en orden de número en el soporte del cartucho. Asegúrese de insertar correctamente el cartucho y el soporte del cartucho. Si el cartucho no se inserta correctamente, puede causar daños considerables al instrumento.</li>
		<li>Para un total de cuatro cartuchos, coloque el cartucho ficticio en el espacio vacío del portacartuchos.</li>
		<li>Utilice la rueda de soporte para montar el cartucho y apriete la tuerca de bloqueo para asegurarlo.</li>
		<li>Cierre la puerta y pulse el botón EJECUTAR en la pantalla del panel táctil. El instrumento cierra las válvulas de los cartuchos, lo que tarda aproximadamente 30 s.</li>
		<li>Siga el mensaje para abrir la puerta, quitar la rueda de soporte y retirar el cartucho cerrado con la válvula del soporte del cartucho.</li>
		<li>Coloque el cartucho sobre la mesa y prepárese para inyectar toda la muestra de sangre. Pipetear un máximo de 10 ml de muestra de sangre total utilizando una pipeta serológica. PRECAUCIÓN: Peligros de manipular sangre. Durante todo el procedimiento de manejo de muestras de sangre y reactivos, es importante usar una bata de laboratorio y guantes de laboratorio. La MSDS proporcionada debe ser estudiada a fondo por los trabajadores del laboratorio.</li>
		<li>Inserte la punta de la pipeta profundamente en la entrada de muestras del cartucho e inyecte lentamente toda la muestra de sangre. NOTA Cuando se usa más o igual a 9 ml de muestra de sangre entera, no es necesaria la adición de solución salina tamponada con fosfato (PBS). Cuando use menos de 9 ml de muestra de sangre total, agregue PBS para que el volumen total sea de 9 ml. Por ejemplo, cuando use 7.2 ml de sangre total, agregue 1.8 ml de PBS a la entrada de la muestra. Se puede utilizar una pipeta serológica o una punta de pipeta para la inyección de sangre total y PBS. Cuando se usa menos de 8 ml de muestra de sangre total, es posible que la capa leucocitaria no se recupere incluso agregando 1 ml de PBS. Para la preparación de ADNg, use 200 μL de sangre total, que se separó antes de este paso.</li>
		<li>Inserte los cartuchos que se utilizarán en orden de número en el soporte del cartucho. Utilice la rueda de soporte para montar el cartucho y apriete la tuerca de bloqueo para asegurarlo. Cierre la puerta y pulse el botón OK . NOTA: El plasma y la capa leucocitaria se separan automáticamente de la sangre total, lo que tarda aproximadamente 30 minutos. PRECAUCIÓN Peligro durante la operación. Abrir la puerta o tocar el instrumento durante las operaciones de rotación de alta velocidad puede causar lesiones graves. También existe el riesgo de lesiones debido a la carga asimétrica del rotor. Si se producen vibraciones y ruidos inusuales cuando el instrumento arranca en modo de enriquecimiento celular asistido o experto, la colocación del cartucho puede ser asimétrica. Presione inmediatamente la tecla de encendido para detener e instalar correctamente el cartucho.</li>
		<li>Busque el mensaje en la pantalla acompañado de un sonido de alarma, que aparece cuando se completa la separación del plasma y la capa leucocitaria.</li>
		<li>Detenga la alarma abriendo la puerta o presionando el botón STOP . Abra la puerta, retire el cartucho y colóquelo sobre la mesa.</li>
		<li>Recuperar 3 ml de plasma de la salida de plasma utilizando una punta de pipeta de 1 ml. Recuperar la capa leucocitaria de 3 ml de la salida de la capa leucocitaria con una punta de pipeta de 1 ml.</li>
	</ol></li>
	<li>Carga del cartucho LBx-2<ol><li>Seleccione el nombre del cartucho en el panel de la pantalla táctil del instrumento. Cambie el número de muestras pulsando el botón de flecha.</li>
		<li>Abra la puerta e inserte los cartuchos que se utilizarán en orden del número en el soporte del cartucho.</li>
		<li>Para un total de cuatro cartuchos, coloque el cartucho ficticio en el espacio vacío del portacartuchos.</li>
		<li>Utilice la rueda de soporte para montar el cartucho y apriete la tuerca de bloqueo para asegurarlo. Asegúrese de insertar correctamente el cartucho en el soporte del cartucho. Si el cartucho no se inserta correctamente, puede causar daños considerables al instrumento.</li>
		<li>Cierre la puerta y pulse el botón EJECUTAR en la pantalla del panel táctil. El instrumento cierra las válvulas del cartucho, lo que tarda aproximadamente 30 s.</li>
		<li>Siga el mensaje para abrir la puerta, quitar la rueda de soporte, retirar el cartucho cerrado con válvula del soporte del cartucho y colocarlo sobre la mesa.</li>
		<li>Coloque el cartucho sobre la mesa y prepárese para inyectar la solución de gradiente de densidad y la muestra de sangre entera. Compruebe el volumen de la solución de gradiente de densidad y PBS que se inyectará en función del volumen de la muestra de sangre total (Tabla complementaria 1).</li>
		<li>Pipetear la solución de gradiente de densidad utilizando una pipeta serológica. Inserte la punta de la pipeta profundamente en la entrada del cartucho e inyecte lentamente la solución de gradiente de densidad.</li>
		<li>Después de inyectar la solución de gradiente de densidad, pipetear toda la muestra de sangre con una pipeta serológica. Inserte la punta de la pipeta profundamente en la entrada de muestras del cartucho e inyecte lentamente toda la muestra de sangre. NOTA: Cuando use menos de 9 ml de la muestra de sangre total, agregue PBS consultando esta tabla (Tabla suplementaria 1).</li>
		<li>Inserte los cartuchos que se utilizarán en orden según el número en el soporte del cartucho. Utilice la rueda de soporte para montar el cartucho y apriete la tuerca de bloqueo para asegurarlo. Cierre la puerta y pulse el botón OK .</li>
		<li>El plasma y la PBMC se separan automáticamente de la sangre total, lo que tarda aproximadamente 30 minutos. Busque el mensaje que aparece acompañado de un sonido de alarma, cuando la separación de plasma y PBMC se haya completado.</li>
		<li>Detenga la alarma abriendo la puerta o presionando el botón STOP . Abra la puerta, retire el cartucho y colóquelo sobre la mesa.</li>
		<li>Recuperar 3 ml de plasma de la salida de plasma utilizando una punta de pipeta de 1 ml. Recupere 3 ml del PBMC de la salida del PBMC utilizando una punta de pipeta de 1 ml.</li>
	</ol></li>
	<li>Carga del cartucho FAST-auto<ol><li>Seleccione el cartucho en el panel de pantalla táctil del instrumento. Cambie el número de muestras pulsando el botón de flecha.</li>
		<li>Abra la puerta e inserte los cartuchos que se utilizarán en orden del número en el soporte del cartucho. Para un total de cuatro cartuchos, coloque el cartucho ficticio en el espacio vacío del portacartuchos.</li>
		<li>Utilice la rueda de soporte para montar el cartucho y apriete la tuerca de bloqueo para asegurarlo.</li>
		<li>Cierre la puerta y presione el botón EJECUTAR en la pantalla del panel táctil. El instrumento cierra las válvulas del cartucho, lo que tarda aproximadamente 30 s.</li>
		<li>Siga el mensaje para abrir la puerta, quitar la rueda de soporte y retirar el cartucho cerrado con la válvula del soporte del cartucho.</li>
		<li>Coloque el cartucho sobre la mesa y prepárese para inyectar la solución de PBS y la muestra de sangre entera. Pipetear 6 ml de solución de PBS utilizando una pipeta serológica. Inserte la punta de la pipeta profundamente en la entrada de PBS del cartucho e inyecte lentamente 6 ml de la solución de PBS.</li>
		<li>Después de inyectar la solución de PBS, pipetear 3 ml de sangre total o muestra de PBMC obtenida de LBx-2 utilizando una pipeta serológica, que se enjuagó previamente con BSA al 1% para evitar que se pegue el residuo. Inserte la punta de la pipeta profundamente en la entrada de muestras del cartucho e inyecte lentamente toda la muestra de sangre.</li>
		<li>Inserte los cartuchos que se utilizarán en orden de número en el soporte del cartucho. Utilice la rueda de soporte para montar el cartucho y apriete la tuerca de bloqueo para asegurarlo. Cierre la puerta y pulse el botón OK .</li>
		<li>Las CTC se enriquecen automáticamente con sangre total, lo que tarda aproximadamente 15 minutos. Busque un mensaje que aparezca acompañado de un sonido de alarma cuando se complete el enriquecimiento de los CTC. Detenga la alarma abriendo la puerta o presionando el botón STOP .</li>
		<li>Abra la puerta, retire el cartucho y colóquelo sobre la mesa. Inserte el removedor de placa posterior (BPR) en los cuatro orificios de la parte frontal del cartucho. Presione el ala azul oscuro con los pulgares de ambas manos y luego presione el cuerpo azul claro hasta que haga clic.</li>
		<li>Retire con cuidado el cuerpo del cartucho levantándolo. Levante muy suavemente la membrana del filtro por el borde con una pinza. Asegúrese de utilizar el borde exterior (la parte del borde de 1 mm de ancho) de la membrana del filtro para pellizcar y sostener la membrana del filtro.</li>
		<li>Coloque cuidadosamente la membrana del filtro (en la que residen los CTC enriquecidos) en un tubo de 1,5 ml para la preparación de ácidos nucleicos. Si es necesario, recupere la sangre filtrada a la salida de sangre con una punta de pipeta de 1 ml.</li>
	</ol></li>
</ol>4. Mantenimiento del sistema
<ol><li>Preparación para la limpieza y desinfección del instrumento<ol><li>Limpie todas las superficies accesibles del instrumento y los accesorios una vez a la semana con etanol y tejido seco, y también inmediatamente cuando esté contaminado.</li>
		<li>Limpie el recipiente y el eje del rotor regularmente con alcohol (etanol e isopropanol) o desinfectantes a base de alcohol.</li>
	</ol></li>
	<li>Limpieza y desinfección del instrumento NOTA: Para la solución de problemas generales y otras notas sobre el equipo, consulte la Tabla complementaria 2.<ol><li>Apague el instrumento con el interruptor de encendido principal. Desconecte el enchufe de alimentación de la fuente de alimentación.</li>
		<li>Abra la puerta y limpie y desinfecte todas las superficies accesibles del instrumento, incluido el cable de alimentación, utilizando un paño húmedo y los agentes de limpieza recomendados.</li>
		<li>Compruebe si el eje del rotor está dañado. Inspeccione el instrumento en busca de corrosión y daños.</li>
		<li>Conecte el instrumento a la fuente de alimentación solo si está completamente seco por dentro y por fuera.</li>
	</ol></li>
	<li>Desconecte el enchufe de alimentación principal y retire el portafusibles. El portafusibles se encuentra encima de la toma de corriente. Reemplace el fusible usado por uno de repuesto del contenedor.</li>
</ol>

<ol><li>Babayan, A., Pantel, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+in+liquid+biopsy+approaches+for+early+detection+and+monitoring+of+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Medicine%22%5BJournal%5D)">Advances in liquid biopsy approaches for early detection and monitoring of cancer.</a> Genome Medicine. 10 (1), 21(2018).</li>
<li>Crowley, E., Di Nicolantonio, F., Loupakis, F., Bardelli, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liquid+biopsy%3A+monitoring+cancer-genetics+in+the+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Clinical+Oncology%22%5BJournal%5D)">Liquid biopsy: monitoring cancer-genetics in the blood.</a> Nature Reviews Clinical Oncology. 10 (8), 472-484 (2013).</li>
<li>Bardelli, A., Pantel, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liquid+biopsies%2C+what+we+do+not+know+%28yet%29%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">Liquid biopsies, what we do not know (yet).</a> Cancer Cell. 31 (2), 172-179 (2017).</li>
<li>Mattox, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Applications+of+liquid+biopsies+for+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Translational+Medicine%22%5BJournal%5D)">Applications of liquid biopsies for cancer.</a> Science Translational Medicine. 11 (507), (2019).</li>
<li>Heitzer, E., Perakis, S., Geigl, J. B., Speicher, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+potential+of+liquid+biopsies+for+the+early+detection+of+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22NPJ+Precision+Oncology%22%5BJournal%5D)">The potential of liquid biopsies for the early detection of cancer.</a> NPJ Precision Oncology. 1 (1), 36(2017).</li>
<li>Scudellari, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myths+that+will+not+die%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Myths that will not die.</a> Nature. 582 (7582), 322-326 (2015).</li>
<li>Prasad, V., Fojo, T., Brada, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Precision+oncology%3A+origins%2C+optimism%2C+and+potential%5BTitle%5D)+AND+%22The+Lancet+Oncology%22%5BJournal%5D)">Precision oncology: origins, optimism, and potential.</a> The Lancet Oncology. 17 (2), 81-86 (2016).</li>
<li>Prasad, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perspective%3A+The+precision-oncology+illusion%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Perspective: The precision-oncology illusion.</a> Nature. 537 (7619), 63(2016).</li>
<li>Siravegna, G., Marsoni, S., Siena, S., Bardelli, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrating+liquid+biopsies+into+the+management+of+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Clinical+Oncology%22%5BJournal%5D)">Integrating liquid biopsies into the management of cancer.</a> Nature Reviews Clinical Oncology. 14 (9), 531-548 (2017).</li>
<li>Bettegowda, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+circulating+tumor+DNA+in+early-and+late-stage+human+malignancies%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Translational+Medicine%22%5BJournal%5D)">Detection of circulating tumor DNA in early-and late-stage human malignancies.</a> Science Translational Medicine. 6 (224), 24(2014).</li>
<li>Udomruk, S., Orrapin, S., Pruksakorn, D., Chaiyawat, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Size+distribution+of+cell-free+DNA+in+oncology%5BTitle%5D)+AND+%22Critical+Reviews+in+Oncology%2FHematology%22%5BJournal%5D)">Size distribution of cell-free DNA in oncology.</a> Critical Reviews in Oncology/Hematology. 166, 103455(2021).</li>
<li>Paterlini-Brechot, P., Benali, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulating+tumor+cells+%28CTC%29+detection%3A+clinical+impact+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Letters%22%5BJournal%5D)">Circulating tumor cells (CTC) detection: clinical impact and future directions.</a> Cancer Letters. 253 (2), 180-204 (2007).</li>
<li>Loeian, M. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liquid+biopsy+using+the+nanotube-CTC-chip%3A+capture+of+invasive+CTCs+with+high+purity+using+preferential+adherence+in+breast+cancer+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Liquid biopsy using the nanotube-CTC-chip: capture of invasive CTCs with high purity using preferential adherence in breast cancer patients.</a> Lab on a Chip. 19 (11), 1899-1915 (2019).</li>
<li>Rikkert, L. G., Van Der Pol, E., Van Leeuwen, T. G., Nieuwland, R., Coumans, F. A. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Centrifugation+affects+the+purity+of+liquid+biopsy-based+tumor+biomarkers%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+Part+A%22%5BJournal%5D)">Centrifugation affects the purity of liquid biopsy-based tumor biomarkers.</a> Cytometry Part A. 93 (12), 1207-1212 (2018).</li>
<li>Sharma, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulating+tumor+cell+isolation%2C+culture%2C+and+downstream+molecular+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+advances%22%5BJournal%5D)">Circulating tumor cell isolation, culture, and downstream molecular analysis.</a> Biotechnology advances. 36 (4), 1063-1078 (2018).</li>
<li>Bennett, C. W., Berchem, G., Kim, Y. J., El-Khoury, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-free+DNA+and+next-generation+sequencing+in+the+service+of+personalized+medicine+for+lung+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Oncotarget%22%5BJournal%5D)">Cell-free DNA and next-generation sequencing in the service of personalized medicine for lung cancer.</a> Oncotarget. 7 (43), 71013(2016).</li>
<li>Lowes, L. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulating+tumor+cells+%28CTC%29+and+cell-free+DNA+%28cfDNA%29+workshop+2016%3A+scientific+opportunities+and+logistics+for+cancer+clinical+trial+incorporation%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Molecular+Sciences%22%5BJournal%5D)">Circulating tumor cells (CTC) and cell-free DNA (cfDNA) workshop 2016: scientific opportunities and logistics for cancer clinical trial incorporation.</a> International Journal of Molecular Sciences. 17 (9), 1505(2016).</li>
<li>Bryzgunova, O. E., Konoshenko, M. Y., Laktionov, P. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Concentration+of+cell-free+DNA+in+different+tumor+types%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Review+of+Molecular+Diagnostics%22%5BJournal%5D)">Concentration of cell-free DNA in different tumor types.</a> Expert Review of Molecular Diagnostics. 21 (1), 63-75 (2021).</li>
<li>Park, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulating+tumour+cells+as+an+indicator+of+early+and+systemic+recurrence+after+surgical+resection+in+pancreatic+ductal+adenocarcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Circulating tumour cells as an indicator of early and systemic recurrence after surgical resection in pancreatic ductal adenocarcinoma.</a> Scientific Reports. 11 (1), 1-12 (2021).</li>
<li>Heidrich, I., Ačkar, L., Mossahebi Mohammadi, P., Pantel, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liquid+biopsies%3A+Potential+and+challenges%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Cancer%22%5BJournal%5D)">Liquid biopsies: Potential and challenges.</a> International Journal of Cancer. 148 (3), 528-545 (2021).</li>
<li>Celec, P., Vlková, B., Lauková, L., Bábíčková, J., Boor, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-free+DNA%3A+the+role+in+pathophysiology+and+as+a+biomarker+in+kidney+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Reviews+in+Molecular+Medicine%22%5BJournal%5D)">Cell-free DNA: the role in pathophysiology and as a biomarker in kidney diseases.</a> Expert Reviews in Molecular Medicine. 20, 1(2018).</li>
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<li>Ahn, S. M., Simpson, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Body+fluid+proteomics%3A+Prospects+for+biomarker+discovery%5BTitle%5D)+AND+%22Proteomics-Clinical+Applications%22%5BJournal%5D)">Body fluid proteomics: Prospects for biomarker discovery.</a> Proteomics-Clinical Applications. 1 (9), 1004-1015 (2007).</li>
</ol>

Los autores no tienen conflictos de intereses relacionados con este trabajo.

La cantidad y concentración de cfDNA y CTC depende del individuo, la etapa y el tipo de cáncer. También depende de la condición del paciente 2,4,5,10,20. En particular, en las etapas tempranas o precancerosas del cáncer, las concentraciones de sustancias relacionadas con el cáncer son muy bajas, por lo que existe una alta posibilidad de que no se pueda detecta...

La detección precoz y precisa de diversas enfermedades, incluyendo el cáncer, es el factor más importante para establecer una estrategia de tratamiento 1,2,3,4. En particular, la detección precoz del cáncer está estrechamente relacionada con el aumento de las posibilidades de supervivencia para el paciente 5,6,7,8. Recientemente, las biopsias líquidas han estado en el centro de atención para la detección temprana del cáncer. Los tumores sólidos sufren angiogénesis y liberan diversas sustancias en la sangre. En particular, se han encontrado ADN circulantes (ctDNAs), ARN circulantes (ctRNAs), proteínas, vesículas como exosomas y células tumorales circulantes (CTCs) en la sangre de pacientes con cáncer 2,9. Aunque existen diferencias en la cantidad de estas sustancias, se observan consistentemente no sólo en las primeras etapas, sino también en las etapas posteriores 6,10. Sin embargo, estas diferencias individuales son muy altas; por ejemplo, la cantidad de ADN libre de células (ADNcf) que contiene ctDNA es inferior a 1.000 ng, y el número de CTC es inferior a 100 en 10 ml de sangre total de pacientes con cáncer11,12,13. Muchos estudios han caracterizado el cáncer utilizando estas sustancias presentes en cantidades menores (es decir, cfDNA, ctDNA y CTC). Para obtener resultados precisos, es importante separar con precisión pequeñas cantidades de sustancias con alta pureza13,14. Los métodos convencionales de centrifugación se utilizan comúnmente, pero son difíciles de manejar y tienen baja pureza dependiendo de la habilidad del usuario. Desde el descubrimiento de las CTC, se han desarrollado varias técnicas de separación, como la centrifugación o separación de grado de densidad, la inmunoperla y los métodos microfluídicos. Se han desarrollado varias técnicas de contención desde el descubrimiento de los CTC. Sin embargo, estas técnicas a menudo son limitadas cuando es necesario aislar las células de los diversos chips y membranas utilizadas para aislarlas15. Además, los métodos de etiquetado requieren equipos como FACS, y existen límites para el proceso posterior debido a la contaminación del etiquetado.
Recientemente, el uso de biopsias líquidas ha aumentado, y se están realizando diversos estudios para la detección temprana del cáncer. A pesar de que este método es simple, todavía existen dificultades en el análisis posterior, y varios estudios están tratando de superar esas dificultades16,17. Además, muchos sitios, incluidos los hospitales, requieren métodos automatizados, reproducibles y de alta pureza que sean cómodos de usar. Aquí, hemos desarrollado un laboratorio en un disco para la separación automatizada de sustancias de muestras de sangre después de una biopsia líquida. Estos dispositivos se basan en el principio de centrifugación, microfluídica y captura de células del tamaño de un poro. Hay tres tipos de discos: LBx-1 puede adquirir plasma y capa leucocitaria, mientras que LBx-2 puede adquirir plasma y PBMC de sangre total con un volumen de menos de 10 ml; FAST-auto también puede adquirir CTC utilizando una membrana que se puede quitar del disco. Se pueden usar hasta cuatro de cada disco en una sola ejecución. Sobre todo, la ventaja de este dispositivo y método es que puede obtener una variedad de sustancias derivadas del cáncer de la misma muestra utilizando una pequeña cantidad de sangre. Esto significa que la sangre del paciente solo necesita ser extraída una vez. Además, tiene la ventaja de excluir errores debidos a diferencias en el período de muestreo de sangre. Esta plataforma es fácil de usar y proporciona resultados precisos para biopsias líquidas y aplicaciones posteriores. En este protocolo, se introduce el uso del dispositivo y el cartucho.

<table><tbody><tr><td>1% BSA (albúmina sérica bovina)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A3059</td><td></td></tr><tr><td>Tubo de microcentrífuga de 1,5 mL</td><td>Axygen</td><td>MCT-150-C-S</td><td></td></tr><tr><td>Tubo cónico de 15 mL</td><td>SPL</td><td>50015</td><td></td></tr><tr><td>4150 Sistema TapeStation</td><td>Agilent</td><td>G2992AA</td><td>Cinta de cribado de ADN libre de células (Agilent, 5067-5630), Tampón de muestras de ADN sin células (Agilent, 5067-5633)</td></tr><tr><td>Apostle MiniMax Kit de Aislamiento de ADN Libre de Células de Alta Eficiencia&nbsp;</td><td>Apostle</td><td>A17622-250</td> 5 <td>mL X 50 versión de preparación</td></tr><tr><td>Tubos de extracción de sangre BD Vacutainer Tubo de extracción de</td> sangre <td>BD</td><td>367525</td><td>EDTA (10 mL)</td></tr><tr><td>BioViewCCBS</td><td>Clinomics</td><td></td><td>BioView Clinomics-Sistema Bioview personalizado. Equipo de personalización basado en microscopio Allegro Plus</td></tr><tr><td>Anticuerpo monoclonal CD45 (HI30), PE-Alexa Fluor 610</td><td>Invitrogen</td><td>MHCD4522</td><td></td></tr><tr><td>FAST Cartucho automático</td><td>Clinomics</td><td>CLX-M3001</td><td></td></tr><tr><td>Cartucho LBx-1</td><td>Clinomics</td><td>CLX-M4101</td><td></td></tr><tr><td>Cartucho LBx-2</td><td>Clinomics</td><td>CLX-M4201</td><td></td></tr><tr><td>OPR-2000 instrumento</td><td>Clinomics</td><td>CLX-I2001</td><td></td></tr><tr><td>Cubierta de vidrio</td><td>Marienfeld Superior</td><td>HSU-0101040</td><td></td></tr><tr><td>DynaMag 2 Soporte</td> magnético <td>Thermo Fisher Scientific</td><td>12321D</td><td></td></tr><tr><td>Ficoll Paque Solution</td><td>GE healthcare</td><td>17-1440-03</td><td>solución de gradiente de densidad</td></tr><tr><td>Punta de filtro, 10 y micro; L</td><td>Axygen</td><td>AX-TF-10</td><td>Se recomiendan las puntas de pipeta con barreras contra aerosoles para ayudar a prevenir la contaminación cruzada.</td></tr><tr><td>Punta de filtro, 200 &micro; L</td><td>Axygen</td><td>AX-TF-200</td><td>Se recomiendan puntas de pipeta con barreras contra aerosoles para ayudar a prevenir la contaminación cruzada.</td></tr><tr><td>Punta de filtro, 100 y micro; L</td><td>Axygen</td><td>AX-TF-100</td><td>Se recomiendan puntas de pipeta con barreras contra aerosoles para ayudar a prevenir la contaminación cruzada.</td></tr><tr><td>Punta de filtro, 1000 y micro; L</td><td>Axygen</td><td>AX-TF-1000</td><td>Se recomiendan puntas de pipeta con barreras contra aerosoles para ayudar a prevenir la contaminación cruzada.</td></tr><tr><td>FITC anti-humano CD326 (EpCAM) Anticuerpo</td><td>BioLegend</td><td>324204</td><td></td></tr><tr><td>FITC Ratón Anti-Humano Citoqueratina</td><td>BD Biosciences</td><td>347653</td><td></td></tr><tr><td>solución de formaldehído (35 % en peso en H2O)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>433284</td><td></td></tr><tr><td>Kimtech Science Wipers</td><td>Yuhan-Kimberly</td><td>41117</td><td></td></tr><tr><td>Guante de látex</td><td>Microflex</td><td>63-754</td><td></td></tr><tr><td>Bastidor magnético de separación de cordones</td><td>V& P Scientific</td><td>VP 772F2M-2</td><td></td></tr><tr><td>Pipeteo manual&nbsp; (0,5-10 y micro; L)</td> <td>Pipeteo manual Eppendorf</td><td>3120000020</td><td></td></tr> &<tr><td>nbsp; (2-20 y micro; L)</td> <td>Pipeteo manual Eppendorf</td><td>3120000038</td><td></td></tr> &<tr><td>nbsp; (10-100 y micro; L)</td> <td>Eppendorf</td><td>3120000046</td><td></td></tr><tr><td>pipeteo manual&nbsp; (20-200 y micro; L)</td> Pipeteo manual <td>3120000054</td><td></td> <td>Eppendorf</td></tr><tr><td>&nbsp; (100-1000 y micro; L)</td> Medio de montaje <td>Eppendorf</td><td>3120000062</td><td></td></tr><tr><td>con DAPI&nbsp;- Acuoso, Fluoroshield</td><td>abcam</td><td>ab104139</td><td></td></tr><tr><td>Control de IgG humano normal</td><td>R& D Systems</td><td>1-001-A</td><td></td></tr><tr><td>OLYMPUS BX-UCB</td><td>Olympus</td><td>9217316</td><td></td></tr><tr><td>Pan Anticuerpo monoclonal de citoqueratina (AE1/AE3), Alexa Fluor 488</td><td>Invitrogen</td><td>53-9003-82</td><td></td></tr><tr><td>PBS (solución salina tamponada con fosfato)</td><td>Corning</td><td>21-040CVC</td><td></td></tr><tr><td>Pipeta portátil</td><td>Drummond</td><td>4-000-201</td><td></td></tr><tr><td>Portaobjetos de vidrio</td><td>Marienfeld Superior</td><td>HSU-1000612</td><td></td></tr><tr><td>StainTray Caja de tinción</td><td>Simport</td><td>M920</td><td></td></tr><tr><td>Pipeta serológica estéril (10 mL)</td><td>SPL</td><td>91010</td><td></td></tr><tr><td>Triton&nbsp; Solución X-100</td><td>Sigma Aldrich</td><td>93443</td><td></td></tr><tr><td>TWEEN&nbsp; 20</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P7949</td><td></td></tr><tr><td>Sangre entera</td><td></td><td></td><td>almacenada a 4-8 &deg; C mediante la recogida en un tubo estable de EDTA o cfDNA: Si la sangre total es insuficiente en 9 mL, añadir PBS (solución salina tamponada con fosfato) tanto como sea necesario.</td></tr><tr><td>X-Cite 120Q (Iluminador de lámpara de fluorescencia)</td><td>Excelitas</td><td>010-00157</td><td></td></tr></tbody></table>

separación y recolección automáticas de sustancias relacionadas con el cáncer a partir de muestras clínicas

Automatic Separation and Collection of Cancer-Related Substances from Clinical Samples

Recientemente, las biopsias líquidas se han utilizado para diagnosticar diversas enfermedades, incluido el cáncer. Los fluidos corporales contienen muchas sustancias, incluyendo células, proteínas y ácidos nucleicos que se originan en los tejidos normales, pero algunas de estas sustancias también se originan en el área enferma. La investigación y el análisis de estas sustancias en los fluidos corporales juegan un papel fundamental en el diagnóstico de diversas enfermedades. Por lo tanto, es importante separar con precisión las sustancias requeridas, y se desarrollan varias técnicas para ser utilizadas para este propósito.
Hemos desarrollado un tipo de dispositivo y plataforma de laboratorio en un disco llamado CD-PRIME. Este dispositivo está automatizado y tiene buenos resultados para la contaminación de la muestra y la estabilidad de la muestra. Además, tiene ventajas de un buen rendimiento de adquisición, un corto tiempo de operación y una alta reproducibilidad. Además, dependiendo del tipo de disco a montar, se puede separar el plasma que contiene ADN libre de células, las células tumorales circulantes, las células mononucleares de sangre periférica o las capas leucocitarias. Por lo tanto, la adquisición de una variedad de materiales presentes en los fluidos corporales se puede hacer para una variedad de aplicaciones posteriores, incluido el estudio de ómicas.

El objetivo de esta técnica es aislar fácil y automáticamente las sustancias asociadas al cáncer de la sangre total. En particular, cualquiera puede utilizar esta técnica en todos los campos adecuados de investigación y análisis. La separación simultánea y reproducible de múltiples sustancias en una sola muestra de sangre es significativa en las biopsias líquidas. Los discos LBx-1 y LBx-2 se utilizan para aislar plasma y capa leucocitaria o PBMC de sangre total. La figura 1 muestra los mater...

Este documento describe la aplicación de equipos automatizados para separar y recolectar sustancias de manera fácil y eficiente, como ADN libre de células y células tumorales circulantes, de sangre total.

Separación y recolección automáticas de sustancias relacionadas con el cáncer a partir de muestras clínicas

Recently, liquid biopsies have been used to diagnose various diseases, including cancer. Body fluids contain many substances, including cells, proteins, ...

Nuestro protocolo es fácil de usar. Usando esta técnica, cualquier persona puede aislar fácilmente el componente de la sangre. La contaminación se puede minimizar y los materiales se pueden separar con precisión.Con la automatización y el establecimiento de este protocolo, los investigadores pueden obtener fácilmente sustancias relacionadas con el cáncer con alta pureza, lo que es útil para varios estudios posteriores. En particular, se espera que proporcione importantes ventajas para la investigación del usuario final. Demostrando su procedimiento estará Jay Jeong, investigador principal y gerente asistente del Instituto de Investigación Genómica del Cáncer.Para comenzar, cargue el cartucho LBx 1 seleccionando el tipo de cartucho en el panel de la pantalla táctil del instrumento. Pulse el botón de flecha para cambiar el número de muestras. Luego, abra la puerta del instrumento e inserte todos los cartuchos que se utilizarán en orden de número en el soporte del cartucho.Para un total de cuatro cartuchos, coloque el cartucho ficticio en el espacio vacío del portacartuchos. Utilice la rueda de soporte para montar el cartucho y apriete la tuerca de bloqueo para asegurarlo. Cierre la puerta y pulse el botón de ejecución en la pantalla del panel táctil.El instrumento cierra las válvulas de los cartuchos, lo que tarda aproximadamente 30 segundos. Siga el mensaje para abrir la puerta. Retire la rueda de soporte y retire el cartucho cerrado con la válvula del soporte del cartucho.Pipetear un máximo de 10 mililitros de una muestra de sangre entera utilizando una pipeta serológica. Inserte la punta de la pipeta profundamente en la entrada de muestras del cartucho e inyecte lentamente toda la muestra de sangre. Después de insertar los cartuchos en el instrumento, cierre la puerta del instrumento y pulse el botón OK.El plasma y las capas leucocitarias se separan automáticamente de la sangre total, lo que tarda aproximadamente 30 minutos. Una vez separados el plasma y la capa leucocitaria, aparecerá un mensaje en pantalla acompañado de un sonido de alarma. Detenga la alarma abriendo la puerta o presionando el botón de parada.Abre la puerta. Retire el cartucho y colóquelo sobre la mesa. Recupere tres mililitros de plasma de la salida de plasma utilizando una punta de pipeta de un mililitro.A continuación, recupera tres mililitros de la capa leucocitaria de la salida de la capa leucocitaria con una punta de pipeta de un mililitro. A continuación, cargue el cartucho LBx 2 seleccionando el nombre del cartucho en el panel de la pantalla táctil del instrumento. Pulse el botón de flecha para cambiar el número de muestras y siga el mismo procedimiento que se muestra para que el cartucho LBx 1 inserte el cartucho en el soporte del cartucho.Después de insertar el cartucho y cerrar la puerta, presione el botón de ejecución en la pantalla del panel táctil. Siga el procedimiento indicado anteriormente para extraer el cartucho con válvula cerrada del soporte del cartucho y colocarlo sobre la mesa. Pipetear la solución de gradiente de densidad utilizando una pipeta serológica.Inserte la punta de la pipeta profundamente en la entrada del cartucho e inyecte lentamente la solución. Luego, pipetear la muestra de sangre entera e inyectarla lentamente en la entrada de muestra. Después de insertar y asegurar el cartucho, cierre la puerta y pulse el botón OK.Una vez que el plasma y PBMC se separan automáticamente de la sangre total, aparecerá un mensaje acompañado de un sonido de alarma. Abra la puerta y retire el cartucho. Recupere tres mililitros de plasma de la salida de plasma usando una punta de pipeta de un mililitro, y luego, recupere tres mililitros de PBMC de la salida de PBMC.Del mismo modo, para el cartucho FAST-auto, después de retirar el cartucho cerrado con la válvula del soporte del cartucho, inyecte seis mililitros de la solución de PBS en la entrada de PBS del cartucho. A continuación, pipetear tres mililitros de sangre entera o capa leucocitaria obtenida de LBx 1, o muestra PBMC obtenida de LBx 2, e inyectar lentamente la muestra en la entrada de muestras del cartucho. Después de insertar el cartucho y asegurarlo, cierre la puerta y pulse el botón OK.Una vez que se complete el enriquecimiento automático de CTC, detenga la alarma. Retire el cartucho e inserte el removedor de placa posterior, o BPR, en los cuatro orificios de la parte frontal del cartucho. Presione el ala azul oscuro con los pulgares de ambas manos y luego, presione el cuerpo azul claro hasta que haga clic.Retire con cuidado el cuerpo del cartucho levantándolo. Muy suavemente, levante la membrana del filtro por el borde con una pinza y coloque la membrana en un tubo de 1.5 mililitros para la preparación de ácido nucleico, o en un vidrio deslizante para la tinción. Si es necesario, recupere la sangre filtrada a la salida de sangre con una punta de pipeta de un mililitro.Los cfDNAs extraídos se evaluaron utilizando Bioanalyzer, y se utilizaron cintas de cribado de cfDNA junto con una escalera electrónica. La línea verde se utilizó para alinear la escalera y la muestra. Las marcas triangulares indican la banda de ADN.La mayoría del cfDNA tiene una longitud de 166 pares de bases y algunos existen en múltiplos enteros de longitud. Por lo general, la concentración de cfDNA mide hasta el tamaño de 50 a 700 pares de bases. Aunque hay una diferencia en la cantidad obtenida de cada muestra individual, como 8,47 nanogramos por mililitro y 5,2 nanogramos por mililitro, los resultados de la extracción de cfDNA fueron buenos tanto para la concentración como para la distribución del tamaño en todos los casos.Estos resultados indican que el método LBx 1 separa con precisión el plasma que contiene cfDNA. En FAST-auto, la membrana se retiró y se tiñó con anticuerpos fluorescentes para detectar CTC y glóbulos blancos. La membrana teñida, colocada sobre portaobjetos de vidrio, se observó bajo un microscopio de fluorescencia.Después de la tinción de membrana, las células muestran señales DAPI o positivas nucleares en azul, mientras que EpCAM y CK o CTC positivas se resaltan en verde, y CD45 o WBC positivo se resaltan en rojo. No es difícil quitar la membrana. Sin embargo, es necesario tener cuidado con la pérdida y contaminación de CTC.Sangre entera, PBMC y pelaje leucocitario están disponibles. En su lugar, solo necesita configurar todo el volumen. También se pueden usar otros líquidos, aunque se requerirán pruebas.Esta técnica se puede operar directamente en los hospitales y la sustancia se puede obtener rápidamente.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Cancer Research

Investigación del cáncer

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Rápido aislamiento de células tumorales viables de circulación de muestras de sangre del paciente

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