Name: Ultrasonografía de alta resolución para el análisis de tumores ATC ortotópicos en un modelo de ratón modificado genéticamente (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-10-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 3 min 41 s
Description: Aprende a utilizar ultrasonografía de alta resolución para monitorear tumores de carcinoma tiroideo anaplásico en modelos murinos modificados genéticamente. Esta técnica no invasiva permite el seguimiento en tiempo real del crecimiento tumoral.

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Esta investigación no recibió ninguna subvención específica de agencias de financiación públicas, comerciales o sin fines de lucro.

El presente estudio se realizó con la aprobación del Comité de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de Sichuan. TPO-cre/ERT2; BrafCA/wt; Trp53 Δex2-10/Δex2-10 ratones transgénicos10 fueron utilizados en este estudio (ver Tabla de Materiales). Los pasos del protocolo se pueden modificar para diferentes especies animales si es necesario. Aquí se utilizaron doce ratones, incluidas seis hembras y seis machos, con una edad media de 93 días.
1. Preparación experimental
<ol><li>Encienda el sistema de ecografía (consulte Tabla de materiales) y cree una nueva carpeta para capturar las imágenes y recopilar los datos. Seleccione la sonda de línea de 40 MHz y haga clic en el patrón de tejido superficial para activar el transductor de tejido superficial . Utilice el "modo B" para obtener imágenes de tiroides (Figura 1A). NOTA: El modo B es el modo básico de imágenes de ultrasonido. La apariencia de las imágenes de ultrasonido se basa en las interacciones físicas del sonido con los tejidos del cuerpo. Las imágenes en modo B se producen como imágenes grises11,12.</li>
	<li>Mantenga a los ratones en jaulas específicas con acceso gratuito a alimentos y agua. Coloque la jaula en un dispositivo de calentamiento suplementario (consulte la Tabla de materiales) para garantizar la termorregulación.</li>
	<li>Asegúrese de que haya suficiente isoflurano en el vaporizador yO2 en el tanque. Si los suministros son insuficientes, cambie los tanques por otros nuevos.</li>
	<li>Limpie la plataforma de imágenes de animales con solución salina estéril y encienda el botón de calefacción. Verifique que la temperatura sea de 38-40 °C antes de colocar al animal en la plataforma (Figura 1C).</li>
</ol>2. Preparación del animal para la obtención de imágenes
<ol><li>Encienda el vaporizador de isoflurano. Transfiera el ratón de la jaula a la caja de anestesia.</li>
	<li>Anestesiar al animal usando una mezcla de 1% -2% de isoflurano del vaporizador y oxígeno que fluye a 0.8 L / min.</li>
	<li>Aplique crema depilatoria desde el pecho hasta el cuello, espere 30 segundos y luego limpie la crema y el pelaje por completo. Enjuague bien el área y el pelaje circundante con solución salina estéril tibia.</li>
	<li>Coloque al animal anestesiado en la plataforma calentada. Cubra el hocico con un cono nasal conectado a la salida de anestesia (Figura 2A, B). NOTA: El ratón debe estar completamente sedado en 1-2 minutos. Si el animal todavía está activo, realice una inducción prolongada de isoflurano hasta que el animal ya no muestre un reflejo de retirada del pedal. Asegúrese de que el animal respire de manera estable.</li>
	<li>Durante la toma de imágenes, controle la frecuencia cardíaca del ratón a través de la plataforma calentada. NOTA: El sistema de imágenes de ecografía está equipado con un monitor de frecuencia cardíaca.</li>
	<li>Use cinta adhesiva para fijar las extremidades del ratón a la plataforma calentada, con el animal en posición supina. Asegúrese de que el cono nasal esté colocado de forma estable con un flujo de gas anestésico constante (1,5 L/min).</li>
	<li>Proteger los ojos aplicando ungüento oftálmico.</li>
</ol>3. Imágenes tumorales
<ol><li>Ajuste el sistema de imágenes para optimizar la resolución. Configure los siguientes parámetros: ganancia bidimensional, 25-30 dB; profundidad de imagen, 10 mm; número de zonas focales, 3; y centro, 3-6 mm. NOTA: Para el presente estudio, se utilizó una sonda de 40 MHz. El modo B se especificó para la adquisición de datos.</li>
	<li>Aplique generosamente gel de ultrasonido (consulte la Tabla de materiales) en el área de la piel desnuda.</li>
	<li>Sostenga la sonda y colóquela en contacto con el gel de ultrasonido en el tórax, y luego escanee desde el tórax hacia el cuello para localizar la tiroides (Figura 2C). NOTA: Aplique presión suavemente mientras escanea; La presión excesiva sobre el cuello del animal puede causar jadeo o apnea. Este protocolo se desarrolló en base al escaneo manual, pero el escaneo mecanizado también se puede realizar utilizando una máquina para guiar la sonda, como una plataforma de imágenes de animales que se mueve a lo largo de los ejes x e y.</li>
	<li>Escanee hacia arriba y hacia abajo para identificar los límites del tumor y evaluar su tamaño y forma. NOTA: Una tiroides sana generalmente aparece como una estructura homogénea hipoecogénica delante de la tráquea. Los tumores anaplásicos hacen que la tiroides parezca mucho más grande, lo que se puede identificar fácilmente mediante la exploración del cuello (Figura 3).</li>
	<li>Identificar los tumores ATC de la tráquea y los músculos de la correa dependiendo de la ubicación anatómica y el eco ecográfico. NOTA: Los músculos de la correa se encuentran delante de la tiroides y la tráquea, así como detrás de la tiroides. El eco ecográfico de los músculos de la correa parece más alto que el del ATC, mientras que existe atenuación detrás de la tráquea13.<ol><li>Según la impresión del tumor total, confirme la sección de imagen con el diámetro tumoral más grande de izquierda a derecha. Presione el botón de congelación y mida los diámetros del tumor anteroposterior y de izquierda a derecha con el calibrador de ultrasonido. NOTA: El diámetro anteroposterior debe medirse perpendicularmente al diámetro tumoral de izquierda a derecha (Figura 4). El tamaño tumoral del ATC se calculó multiplicando el diámetro anteroposterior por el diámetro tumoral de izquierda a derecha14. Como el tamaño de los tumores en los lados izquierdo y derecho era inconsistente, cada lado de los tumores se calculó por separado. El tamaño total de los tumores se obtuvo mediante la adición de los tumores bilaterales. Los tamaños se registraron para observar la curva de crecimiento del ATC.</li>
	</ol></li>
	<li>Guarde la grabación como un bucle de cine, lo que facilita la revisión de las imágenes seleccionadas.</li>
</ol>4. Recuperación animal
<ol><li>Después de escanear, limpie el gel de ultrasonido y retire la cinta de sujeción de las extremidades del animal.</li>
	<li>Coloque el ratón sobre el dispositivo de calentamiento suplementario (paso 1.2). Coloque al animal de lado (Figura 2D).</li>
	<li>Después de que el ratón se recupere (~5 min), transfiéralo de nuevo a la jaula.</li>
	<li>Limpie el sistema de ecografía, la sonda y la plataforma con un paño suave y alcohol isopropílico o toallitas de glutaraldehído.</li>
	<li>Apague el sistema de imágenes.</li>
</ol>

<ol><li>Maniakas, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+overall+survival+in+patients+with+anaplastic+thyroid+carcinoma%2C+2000-2019%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA+Oncology%22%5BJournal%5D)">Evaluation of overall survival in patients with anaplastic thyroid carcinoma, 2000-2019.</a> JAMA Oncology. 6 (9), 1397-1404 (2020).</li>
<li>Molinaro, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anaplastic+thyroid+carcinoma%3A+From+clinicopathology+to+genetics+and+advanced+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Anaplastic thyroid carcinoma: From clinicopathology to genetics and advanced therapies.</a> Nature Reviews Endocrinology. 13 (11), 644-660 (2017).</li>
<li>Champa, D., Di Cristofano, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+anaplastic+thyroid+carcinoma+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Hormones+and+Cancer%22%5BJournal%5D)">Modeling anaplastic thyroid carcinoma in the mouse.</a> Hormones and Cancer. 6 (1), 37-44 (2015).</li>
<li>Vitiello, M., Kusmic, C., Faita, F., Poliseno, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+lymph+node+volume+by+ultra-high-frequency+ultrasound+imaging+in+the+Braf%2FPten+genetically+engineered+mouse+model+of+melanoma%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Analysis of lymph node volume by ultra-high-frequency ultrasound imaging in the Braf/Pten genetically engineered mouse model of melanoma.</a> Journal of Visualized Experiments. (175), e62527(2021).</li>
<li>Wang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low+intensity+focused+ultrasound+%28LIFU%29+triggered+drug+release+from+cetuximab-conjugated+phase-changeable+nanoparticles+for+precision+theranostics+against+anaplastic+thyroid+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials+Science%22%5BJournal%5D)">Low intensity focused ultrasound (LIFU) triggered drug release from cetuximab-conjugated phase-changeable nanoparticles for precision theranostics against anaplastic thyroid carcinoma.</a> Biomaterials Science. 27 (1), 196-210 (2018).</li>
<li>Mohammed, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+detection+and+prevention+of+pancreatic+cancer%3A+Use+of+genetically+engineered+mouse+models+and+advanced+imaging+technologies%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Medicinal+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Early detection and prevention of pancreatic cancer: Use of genetically engineered mouse models and advanced imaging technologies.</a> Current Medicinal Chemistry. 19 (22), 3701-3713 (2012).</li>
<li>Wege, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+resolution+ultrasound+including+elastography+and+contrast-enhanced+ultrasound+%28CEUS%29+for+early+detection+and+characterization+of+liver+lesions+in+the+humanized+tumor+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Hemorheology+and+Microcirculation%22%5BJournal%5D)">High resolution ultrasound including elastography and contrast-enhanced ultrasound (CEUS) for early detection and characterization of liver lesions in the humanized tumor mouse model.</a> Clinical Hemorheology and Microcirculation. 52 (2-4), 93-106 (2012).</li>
<li>Greco, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preclinical+imaging+for+the+study+of+mouse+models+of+thyroid+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Molecular+Sciences%22%5BJournal%5D)">Preclinical imaging for the study of mouse models of thyroid cancer.</a> International Journal of Molecular Sciences. 18 (12), 2731(2017).</li>
<li>Renault, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+ultrasound+imaging+of+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Radiologie%22%5BJournal%5D)">High-resolution ultrasound imaging of the mouse.</a> Journal of Radiologie. 87, 1937-1945 (2006).</li>
<li>McFadden, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((p53+constrains+progression+to+anaplastic+thyroid+carcinoma+in+a+Braf-mutant+mouse+model+of+papillary+thyroid+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">p53 constrains progression to anaplastic thyroid carcinoma in a Braf-mutant mouse model of papillary thyroid cancer.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (16), 1600-1609 (2014).</li>
<li>Garassini, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Basic+principles+of+ultrasonic+diagnosis%5BTitle%5D)+AND+%22GEN%22%5BJournal%5D)">Basic principles of ultrasonic diagnosis.</a> GEN. 39 (4), 283-289 (1985).</li>
<li>Aldrich, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Basic+physics+of+ultrasound+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Critical+Care+Medicine%22%5BJournal%5D)">Basic physics of ultrasound imaging.</a> Critical Care Medicine. 35, 131-137 (2007).</li>
<li>Mancini, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphological+ultrasound+microimaging+of+thyroid+in+living+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Morphological ultrasound microimaging of thyroid in living mice.</a> Endocrinology. 150 (10), 4810-4815 (2009).</li>
<li>Ying, M., Yung, D. M., Ho, K. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-dimensional+ultrasound+measurement+of+thyroid+gland+volume%3A+a+new+equation+with+higher+correlation+with+3-D+ultrasound+measurement%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+in+Medicine+%26+Biology%22%5BJournal%5D)">Two-dimensional ultrasound measurement of thyroid gland volume: a new equation with higher correlation with 3-D ultrasound measurement.</a> Ultrasound in Medicine & Biology. 34 (1), 56-63 (2008).</li>
</ol>

Los autores no tienen conflictos de intereses que declarar.

Este protocolo utiliza ecografía de alta resolución para analizar tumores ATC ortotópicos en un modelo de ratón modificado genéticamente. El modelo transgénico, con un genotipo de TPO-cre/ERT2; BrafCA/wt; Trp53 Δex2-10/Δex2-10, fue desarrollado en nuestro laboratorio. Los animales sobreexpresan BrafV600E y carecen de Trp53; La inyección de tamoxifeno por vía intraperitoneal a los animales conduce al crecimiento del tumor después de aproximadamente 1 mes...

Aunque el carcinoma anaplásico de tiroides (ATC) representa menos del 2% de los cánceres de tiroides, causa más del 50% de las muertes relacionadas con el cáncer de tiroides anualmente. La mediana del tiempo de supervivencia después del diagnóstico con ATC es de sólo unos 6 meses, y no hay tratamientos disponibles que mejoren significativamente la supervivencia 1,2.
La rareza del ATC ha obstaculizado la investigación que estudia cómo comienza la enfermedad y progresa agresivamente. Recientemente se han puesto a disposición modelos de ratón genéticamente modificados que imitan la enfermedad, que proporcionan información sobre la enfermedad y sus respuestas a posibles tratamientos 3,4,5. Tales estudios requieren imágenes tumorales precisas para las mediciones y el monitoreo, que generalmente se realiza mediante imágenes por resonancia magnética, tomografía computarizada o ecografía de alta resolución 6,7. La ecografía ha sido ampliamente utilizada en órganos de ratón. Tiene ventajas sobre la resonancia magnética y la tomografía computarizada, ya que puede realizarse en tiempo real y no expone al sujeto a radiación, y el equipo necesario es lo suficientemente pequeño como para ser portátil 8,9. Sin embargo, los estudios sobre el monitoreo continuo del crecimiento de ATC mediante ultrasonido son raros; Por lo tanto, este trabajo explora la utilidad del ultrasonido en este contexto.
Aquí, se presenta un protocolo para usar ecografía de alta resolución para escanear, monitorear y medir tumores con precisión en un modelo de ratón de ATC.

<table><tbody><tr><td>Cinta adhesiva</td><td>Winner</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sistema de anestesia</td><td>RWDlifescience</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Brafflox/wt ratones</td><td>Colaboración con el Instituto de Ciencias de la Vida, eBond Pharmaceutical Technology Ltd, Chengdu, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cámara de inducción de anestesia</td><td>RWDlifescience</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bastoncillos de algodón</td><td>Winner</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Crema depilatoria</td><td>Veet</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Manta calefactora eléctrica</td><td>Petbee</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vaporizador de isoflurano</td><td>RWDlifescience</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Guantes médicos</td><td>Winner</td> Toallas de papel Breeze <td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td>B914JY</td><td></td></tr><tr><td>Ratones</td> <td>TPO-cre/ERT2Colaboración con el Instituto de Ciencias de la Vida, eBond Pharmaceutical Technology Ltd, Chengdu, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Trp53flox/wt mice</td><td>Colaboración con el Instituto de Ciencias de la Vida, eBond Pharmaceutical Technology Ltd, Chengdu, China</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gel de ultrasonido</td><td>Keppler</td><td>KL-250</td><td></td></tr><tr><td>Máquina de ultrasonido</td><td>VisualSonics</td><td>Vevo 3100</td><td></td></tr></tbody></table>

ultrasonografía de alta resolución para el análisis de tumores atc ortotópicos en un modelo de ratón modificado genéticamente

High-Resolution Ultrasonography for the Analysis of Orthotopic ATC Tumors in a Genetically Engineered Mouse Model

El carcinoma anaplásico de tiroides (ATC) se asocia con un pronóstico precario y una mediana de supervivencia corta, pero ningún tratamiento efectivo mejora significativamente los resultados. Los modelos murinos genéticamente modificados que imitan la progresión del ATC pueden ayudar a los investigadores a estudiar tratamientos para esta enfermedad. Cruzando tres genotipos diferentes de ratones, un TPO-cre/ERT2; BrafCA/wt; Se desarrolló el modelo ATC transgénico Trp53 Δex2-10/Δex2-10. El modelo murino ATC fue inducido por una inyección intraperitoneal de tamoxifeno con sobreexpresión de BrafV600E y deleción de Trp53, y los tumores se generaron dentro de aproximadamente 1 mes. Se aplicó ultrasonido de alta resolución para investigar el inicio y la progresión del tumor, y la curva de crecimiento dinámico se obtuvo midiendo el tamaño del tumor. En comparación con la resonancia magnética (RM) y la tomografía computarizada, el ultrasonido tiene ventajas en la observación del modelo murino ATC, como ser no invasivo, portátil, en tiempo real y sin exposición a la radiación. El ultrasonido de alta resolución es adecuado para mediciones dinámicas y múltiples. Sin embargo, el examen ultrasonográfico de la tiroides en ratones requiere conocimientos anatómicos relevantes y experiencia. Este artículo proporciona un procedimiento detallado para utilizar ultrasonido de alta resolución para escanear tumores en el modelo ATC transgénico. Mientras tanto, se enumeran el ajuste de parámetros ultrasónicos, las habilidades de escaneo de ultrasonido, la anestesia y la recuperación de los animales, y otros elementos que necesitan atención durante el proceso.

El tamaño promedio del ATC derecho al comienzo del estudio fue de 4,867 mm 2, y el tamaño promedio del ATC izquierdo fue de 5,189 mm2. En la cuarta medición, el tamaño promedio del ATC derecho había crecido a 11.844 mm 2, mientras que el tamaño del tumor del lóbulo izquierdo había crecido a 9.280 mm2. El tamaño total del ATC aumentó de 10.057 mm 2 a 15.843 mm2. En la etapa posterior del estudio, el ATC creció rápidamente. En términos del ratón etiquetado c...

El presente protocolo describe la ecografía de alta frecuencia para visualizar toda la glándula tiroides del ratón y monitorear el crecimiento del carcinoma anaplásico de tiroides.

Ultrasonografía de alta resolución para el análisis de tumores ATC ortotópicos en un modelo de ratón modificado genéticamente

Anaplastic thyroid carcinoma (ATC) is associated with a poor prognosis and short median survival time, but no effective treatment improves the outcomes ...

Este protocolo ayuda a los usuarios a utilizar la ecografía de alta resolución para escanear, monitorear y medir tumores en el modelo de ratón de carcinoma anaplásico de tiroides. La ecografía ha demostrado ser confiable en ratones para obtener imágenes de tejidos que ocupan ubicaciones corporales similares a las de los tejidos humanos, incluidos el hígado, la tiroides y el feto. Para comenzar, encienda el sistema de ecografía y cree una nueva carpeta para capturar las imágenes y recopilar datos.Luego, seleccione la sonda de línea de 40 megahercios, haga clic en el patrón de tejido superficial para activar el transductor de tejido superficial y use el modo B resultante para imágenes de tiroides. Limpie la plataforma de imágenes de animales y encienda el botón de calefacción para que la temperatura de la plataforma alcance de 38 a 40 grados centígrados antes de colocar al animal en ella. Anestesia el ratón y colóquelo en la plataforma calentada.Cubra el hocico con un cono nasal conectado a la salida de anestesia. Luego, con el mouse en posición supina, use cinta adhesiva para fijar sus extremidades a la plataforma calentada. Para las imágenes de tumores, ajuste el sistema de imágene

high-resolution-ultrasonography-for-analysis-orthotopic-atc-tumors

Research

Investigación

JoVE Journal

Cancer Research

Investigación del cáncer

El video muestra la técnica de inoculación ortotópica del cáncer de mama en un modelo de ratón. Esta técnica produce una alta tasa de tumorigénesis con menos variabilidad en el tamaño y la forma del tumor en comparación con la inyección subcutánea o no quirúrgica.

Inyección ortotópica: implantación de células cancerosas específicas de tejido en un ratón adulto

Generación de un modelo de ratón ortotópico de carcinoma de tiroides anaplásico se describe aquí. Esta técnica emplea la colocación quirúrgica de las células de cáncer de tiroides anaplásico humanos dentro de la tiroides de los ratones inmunodeficientes, creando así un entorno más clínicamente relevante para estudiar la progresión de la enfermedad, así como de pantalla intervenciones terapéuticas innovadoras.

Un modelo de ratón ortotópico de carcinoma de tiroides anaplásico

La técnica establecida para inocular ortotópico xenoinjertos de cáncer de vejiga invasivos primarios requiere laparotomía y la movilización de la vejiga. Este procedimiento inflige una morbilidad significativa en los ratones, es técnicamente difícil y consume mucho tiempo. Lo tanto, desarrolló una alta precisión, abordaje percutáneo utilizando la guía del ultrasonido.

Mínimamente Invasiva Establecimiento de murino ortotópico xenoinjertos vejiga

Un cáncer de cerebro modelo murino de metástasis de mama se establece con ultrasonido intracardiaco inyección guiada por imágenes de células MDA-MB231/Br-GFP. Desarrollo de las metástasis intracraneales multifocales ha sido supervisado longitudinalmente utilizando alta resolución 9.4 T MRI.

Guiada por imagen de ultrasonido de inyección intracardiaca de desarrollar un modelo de ratón de cáncer de mama metástasis cerebrales Seguido por Longitudinal MRI

Describimos un método para la detección del desarrollo de nódulos tumorales en los pulmones de un modelo de ratón con adenocarcinoma utilizando tomografía microcomputarizada y su uso para monitorear los cambios en el tamaño del nódulo a lo largo del tiempo y en respuesta al tratamiento. La exactitud de la evaluación se confirmó con la cuantificación histológica de punto final.

El uso de la tomografía computarizada-Micro para la evaluación del desarrollo del tumor y Seguimiento de la respuesta al tratamiento en un modelo de ratón de cáncer de pulmón

Este protocolo describe la generación de tumores de vejiga ortotópico murino en ratones C57BL / 6J hembra y el seguimiento del crecimiento del tumor.

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Este artículo describe la utilización de la ecografía de alta resolución en ratones modificados genéticamente el cáncer de páncreas. El objetivo principal es proporcionar una instrucción detallada para la detección y evaluación de los tumores pancreáticos endógenos.

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Aquí, presentamos un protocolo utilizar inyección guiada por ultrasonido de las células de (ES) el sarcoma de Ewing y neuroblastoma (NB) (estableció líneas celulares y células tumorales derivados del paciente) en sitios biológicamente relevantes para crear modelos preclínicos fiables para el cáncer investigación.

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Describimos un protocolo para la implantación guiada por ultrasonido de líneas celulares de adenocarcinoma ductal pancreático derivados de la murino directamente en el sitio del tumor nativo. Este enfoque resultó en tumores pancreáticos detectables por la ecografía dentro de 2-4 semanas de la inyección, y redujo significativamente la proporción de la sesión de células tumorales en la pared peritoneal en comparación con la implantación ortotópica quirúrgica.

Ultrasonido-Guiado Implantación Ortotópica de Adenocarcinoma Ductal Pancreático Murino

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