Name: Evaluación de las actividades antimicrobianas de nanopartículas y superficies nanoestructuradas in vitro (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-04-21T14:40:00.000+00:00
Duration: 11 min 52 s
Description: Aprenda a evaluar actividades antimicrobianas de nanopartículas y superficies nanoestructuradas in vitro. Estos métodos producen resultados consistentes y comparables para diversas especies microbianas.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Los autores aprecian el apoyo financiero de la Fundación Nacional de Ciencias de los Estados Unidos (premio NSF CBET 1512764 y NSF PIRE 1545852), los Institutos Nacionales de Salud (NIH NIDCR 1R03DE028631), la Beca de Desarrollo Docente Regentes de la Universidad de California (UC), la Subvención Semilla del Comité de Investigación (Huinan Liu) y la Beca del Programa de Mentoría de Investigación de Posgrado de UC-Riverside otorgada a Patricia Holt-Torres. Los autores aprecian la asistencia proporcionada por la Instalación Central de Microscopía y Microanálisis Avanzados (CFAMM) en UC-Riverside para el uso de SEM / EDS y el Dr. Perry Cheung para el uso de XRD. Los autores también desean agradecer a Morgan Elizabeth Nator y Samhitha Tumkur por su ayuda con los experimentos y análisis de datos. Todas las opiniones, hallazgos, conclusiones o recomendaciones expresadas en este artículo son las de los autores y no reflejan necesariamente los puntos de vista de la National Science Foundation o los Institutos Nacionales de Salud.

<ol><li>Haque, M., Sartelli, M., McKimm, J., Abu Bakar, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Health+care-associated+infections+-+An+overview%5BTitle%5D)+AND+%22Infection+and+Drug+Resistance%22%5BJournal%5D)">Health care-associated infections - An overview.</a> Infection and Drug Resistance. 11, 2321-2333 (2018).</li>
<li>O'Connell, K. M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combating+multidrug-resistant+bacteria%3A+Current+strategies+for+the+discovery+of+novel+antibacterials%5BTitle%5D)+AND+%22Angewandte+Chemie%22%5BJournal%5D)">Combating multidrug-resistant bacteria: Current strategies for the discovery of novel antibacterials.</a> Angewandte Chemie. 52 (41), 10706-10733 (2013).</li>
<li>Li, B., Webster, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacteria+antibiotic+resistance%3A+New+challenges+and+opportunities+for+implant-associated+orthopedic+infections%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Bacteria antibiotic resistance: New challenges and opportunities for implant-associated orthopedic infections.</a> Journal of Orthopaedic Research. 36 (1), 22-32 (2018).</li>
<li>Yung, D. B. Y., Sircombe, K. J., Pletzer, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Friends+or+enemies%3F+The+complicated+relationship+between+Pseudomonas+aeruginosa+and+Staphylococcus+aureus%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Friends or enemies? The complicated relationship between Pseudomonas aeruginosa and Staphylococcus aureus.</a> Molecular Microbiology. 116 (1), 1-15 (2021).</li>
<li>Adams, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rifamycin+antibiotics+and+the+mechanisms+of+their+failure%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Antibiotics%22%5BJournal%5D)">Rifamycin antibiotics and the mechanisms of their failure.</a> The Journal of Antibiotics. 74 (11), 786-798 (2021).</li>
<li>Harding, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((WHO+global+progress+report+on+tuberculosis+elimination%5BTitle%5D)+AND+%22The+Lancet.+Respiratory+Medicine%22%5BJournal%5D)">WHO global progress report on tuberculosis elimination.</a> The Lancet. Respiratory Medicine. 8 (1), 19(2020).</li>
<li>Baptista, P. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nano-strategies+to+fight+multidrug+resistant+bacteria-%26%2334%3BA+battle+of+the+titans%26%2334%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Nano-strategies to fight multidrug resistant bacteria-&#34;A battle of the titans&#34.</a> Frontiers in Microbiology. 9, 1441(2018).</li>
<li>Seong, M., Lee, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silver+nanoparticles+against+Salmonella+enterica+serotype+typhimurium%3A+Role+of+inner+membrane+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Silver nanoparticles against Salmonella enterica serotype typhimurium: Role of inner membrane dysfunction.</a> Current Microbiology. 74 (6), 661-670 (2017).</li>
<li>Dasgupta, N., Ramalingam, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silver+nanoparticle+antimicrobial+activity+explained+by+membrane+rupture+and+reactive+oxygen+generation%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Chemistry+Letters%22%5BJournal%5D)">Silver nanoparticle antimicrobial activity explained by membrane rupture and reactive oxygen generation.</a> Environmental Chemistry Letters. 14, 477-485 (2016).</li>
<li>Su, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+disruption+of+bacterial+membrane+integrity+through+ROS+generation+induced+by+nanohybrids+of+silver+and+clay%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The disruption of bacterial membrane integrity through ROS generation induced by nanohybrids of silver and clay.</a> Biomaterials. 30 (30), 5979-5987 (2009).</li>
<li>Cui, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+molecular+mechanism+of+action+of+bactericidal+gold+nanoparticles+on+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The molecular mechanism of action of bactericidal gold nanoparticles on Escherichia coli.</a> Biomaterials. 33 (7), 2327-2333 (2012).</li>
<li>Ranjan, S., Ramalingam, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Titanium+dioxide+nanoparticles+induce+bacterial+membrane+rupture+by+reactive+oxygen+species+generation%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Chemistry+Letters%22%5BJournal%5D)">Titanium dioxide nanoparticles induce bacterial membrane rupture by reactive oxygen species generation.</a> Environmental Chemistry Letters. 14, 487-494 (2016).</li>
<li>Kadiyala, U., Turali-Emre, E. S., Bahng, J. H., Kotov, N. A., VanEpps, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unexpected+insights+into+antibacterial+activity+of+zinc+oxide+nanoparticles+against+methicillin+resistant+Staphylococcus+aureus+%28MRSA%29%5BTitle%5D)+AND+%22Nanoscale%22%5BJournal%5D)">Unexpected insights into antibacterial activity of zinc oxide nanoparticles against methicillin resistant Staphylococcus aureus (MRSA).</a> Nanoscale. 10 (10), 4927-4939 (2018).</li>
<li>Zhang, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antimicrobial+bioresorbable+Mg-Zn-Ca+alloy+for+bone+repair+in+a+comparison+study+with+Mg-Zn-Sr+alloy+and+pure+Mg%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Biomaterials+Science+and+Engineering%22%5BJournal%5D)">Antimicrobial bioresorbable Mg-Zn-Ca alloy for bone repair in a comparison study with Mg-Zn-Sr alloy and pure Mg.</a> ACS Biomaterials Science and Engineering. 6 (1), 517-538 (2020).</li>
<li>Lock, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Degradation+and+antibacterial+properties+of+magnesium+alloys+in+artificial+urine+for+potential+resorbable+ureteral+stent+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Materials+Research.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Degradation and antibacterial properties of magnesium alloys in artificial urine for potential resorbable ureteral stent applications.</a> Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 102 (3), 781-792 (2014).</li>
<li>Lin, J., Nguyen, N. -Y. T., Zhang, C., Ha, A., Liu, H. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antimicrobial+properties+of+MgO+nanostructures+on+magnesium+substrates%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Omega%22%5BJournal%5D)">Antimicrobial properties of MgO nanostructures on magnesium substrates.</a> ACS Omega. 5 (38), 24613-24627 (2020).</li>
<li>Nguyen, N. -Y. T., Grelling, N., Wetteland, C. L., Rosario, R., Liu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antimicrobial+activities+and+mechanisms+of+magnesium+oxide+nanoparticles+%28nMgO%29+against+pathogenic+bacteria%2C+yeasts%2C+and+biofilms%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Antimicrobial activities and mechanisms of magnesium oxide nanoparticles (nMgO) against pathogenic bacteria, yeasts, and biofilms.</a> Scientific Reports. 8 (1), 16260(2018).</li>
<li>Bindhu, M. R., Umadevi, M., Micheal, M. K., Arasu, M. V., Al-Dhabi, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+morphological+and+optical+properties+of+MgO+nanoparticles+for+antibacterial+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Materials+Letters%22%5BJournal%5D)">Structural morphological and optical properties of MgO nanoparticles for antibacterial applications.</a> Materials Letters. 166, 19-22 (2016).</li>
<li>He, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Study+on+the+mechanism+of+antibacterial+action+of+magnesium+oxide+nanoparticles+against+foodborne+pathogens%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Nanobiotechnology%22%5BJournal%5D)">Study on the mechanism of antibacterial action of magnesium oxide nanoparticles against foodborne pathogens.</a> Journal of Nanobiotechnology. 14 (1), 54(2016).</li>
<li>Zhang, K., An, Y., Zhang, L., Dong, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+controlled+nano-MgO+and+investigation+of+its+bactericidal+properties%5BTitle%5D)+AND+%22Chemosphere%22%5BJournal%5D)">Preparation of controlled nano-MgO and investigation of its bactericidal properties.</a> Chemosphere. 89 (11), 1414-1418 (2012).</li>
<li>Hayat, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+antibiofilm+and+anti-adhesion+effects+of+magnesium+oxide+nanoparticles+against+antibiotic+resistant+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Microbiology+and+Immunology%22%5BJournal%5D)">In vitro antibiofilm and anti-adhesion effects of magnesium oxide nanoparticles against antibiotic resistant bacteria.</a> Microbiology and Immunology. 62 (4), 211-220 (2018).</li>
<li>Dong, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigation+of+Mg%28OH%292+nanoparticles+as+an+antibacterial+agent%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Nanoparticle+Research%22%5BJournal%5D)">Investigation of Mg(OH)2 nanoparticles as an antibacterial agent.</a> Journal of Nanoparticle Research. 12, 2101-2109 (2010).</li>
<li>Halbus, A. F., Horozov, T. S., Paunov, V. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlling+the+antimicrobial+action+of+surface+modified+magnesium+hydroxide+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Biomimetics%22%5BJournal%5D)">Controlling the antimicrobial action of surface modified magnesium hydroxide nanoparticles.</a> Biomimetics. 4 (2), 41(2019).</li>
<li>Pan, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigation+of+antibacterial+activity+and+related+mechanism+of+a+series+of+Nano-Mg%28OH%292%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Applied+Materials+and+Interfaces%22%5BJournal%5D)">Investigation of antibacterial activity and related mechanism of a series of Nano-Mg(OH)2.</a> ACS Applied Materials and Interfaces. 5 (3), 1137-1142 (2013).</li>
<li>Ipe, D. S., Kumar, P. T. S., Love, R. M., Hamlet, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silver+nanoparticles+at+biocompatible+dosage+synergistically+increases+bacterial+susceptibility+to+antibiotics%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Silver nanoparticles at biocompatible dosage synergistically increases bacterial susceptibility to antibiotics.</a> Frontiers in Microbiology. 11, 1074(2020).</li>
<li>Parvekar, P., Palaskar, J., Metgud, S., Maria, R., Dutta, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+minimum+inhibitory+concentration+%28MIC%29+and+minimum+bactericidal+concentration+%28MBC%29+of+silver+nanoparticles+against+Staphylococcus+aureus%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterial+Investigations+in+Dentistry%22%5BJournal%5D)">The minimum inhibitory concentration (MIC) and minimum bactericidal concentration (MBC) of silver nanoparticles against Staphylococcus aureus.</a> Biomaterial Investigations in Dentistry. 7 (1), 105-109 (2020).</li>
<li>Loo, Y. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+antimicrobial+activity+of+green+synthesized+silver+nanoparticles+against+selected+gram-negative+foodborne+pathogens%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Microbiology%22%5BJournal%5D)">In vitro antimicrobial activity of green synthesized silver nanoparticles against selected gram-negative foodborne pathogens.</a> Frontiers in Microbiology. 9, 1555(2018).</li>
<li>Ali, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microwave+accelerated+green+synthesis+of+stable+silver+nanoparticles+with+Eucalyptus+globulus+leaf+extract+and+their+antibacterial+and+antibiofilm+activity+on+clinical+isolates%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Microwave accelerated green synthesis of stable silver nanoparticles with Eucalyptus globulus leaf extract and their antibacterial and antibiofilm activity on clinical isolates.</a> PLoS One. 10 (7), e0131178(2015).</li>
<li>Al-Jumaili, A., Alancherry, S., Bazaka, K., Jacob, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Review+on+the+antimicrobial+properties+of+carbon+nanostructures%5BTitle%5D)+AND+%22Materials%22%5BJournal%5D)">Review on the antimicrobial properties of carbon nanostructures.</a> Materials. 10 (9), 1066(2017).</li>
<li>MTI Corporation. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%2280L+NTRL+Certified+Convection+Drying+Oven+%2818%22x16%22x18%22%2C+250%C2%B0C%29+with+Digital+Temperature+Controller+%28SSP%29+-+BPG-7082%22">80L NTRL Certified Convection Drying Oven (18"x16"x18", 250°C) with Digital Temperature Controller (SSP) - BPG-7082</a>. , https://www.mtixtl.com/BPG-7082.aspx (2022).</li>
<li>CHEBI. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Tris+%28CHEBI%3A9754%29%22">Tris (CHEBI:9754)</a>. , https://www.ebi.ac.uk/chebi/searchId.do;?chebiId=CHEBI:9754 (2023).</li>
<li>Cold Spring Harbor Protocols. Phosphate buffer. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Cold+Spring+Harbor+Laboratory+Press%22">Cold Spring Harbor Laboratory Press</a>. , (2016).</li>
<li>Barat, R., Montoya, T., Seco, A., Ferrer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modelling+biological+and+chemically+induced+precipitation+of+calcium+phosphate+in+enhanced+biological+phosphorus+removal+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Research%22%5BJournal%5D)">Modelling biological and chemically induced precipitation of calcium phosphate in enhanced biological phosphorus removal systems.</a> Water Research. 45, 3744-3752 (2011).</li>
<li>Carlsson, H., Aspegren, H., Lee, N., Hilmer, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calcium+phosphate+precipitation+in+biological+phosphorus+removal+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Research%22%5BJournal%5D)">Calcium phosphate precipitation in biological phosphorus removal systems.</a> Water Research. 31 (5), 1047-1055 (1997).</li>
<li>Gonzalez, J., Hou, R. Q., Nidadavolu, E. P. S., Willumeit-Römer, R., Feyerabend, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnesium+degradation+under+physiological+conditions+-+Best+practice%5BTitle%5D)+AND+%22Bioactive+Materials%22%5BJournal%5D)">Magnesium degradation under physiological conditions - Best practice.</a> Bioactive Materials. 3 (2), 174-185 (2018).</li>
<li>Oyane, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+and+assessment+of+revised+simulated+body+fluids%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Materials+Research.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Preparation and assessment of revised simulated body fluids.</a> Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 65 (2), 188-195 (2003).</li>
<li>Xia, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amyloid+histology+stain+for+rapid+bacterial+endospore+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Amyloid histology stain for rapid bacterial endospore imaging.</a> Journal of Clinical Microbiology. 49 (8), 2966-2975 (2011).</li>
<li>Pankey, G. A., Sabath, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+relevance+of+bacteriostatic+versus+bactericidal+mechanisms+of+action+in+the+treatment+of+Gram-positive+bacterial+infections%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Clinical relevance of bacteriostatic versus bactericidal mechanisms of action in the treatment of Gram-positive bacterial infections.</a> Clinical Infectious Diseases. 38 (6), 864-870 (2004).</li>
<li>Ribeiro, M., Monteiro, F. J., Ferraz, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Infection+of+orthopedic+implants+with+emphasis+on+bacterial+adhesion+process+and+techniques+used+in+studying+bacterial-material+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Biomatter%22%5BJournal%5D)">Infection of orthopedic implants with emphasis on bacterial adhesion process and techniques used in studying bacterial-material interactions.</a> Biomatter. 2 (4), 176-194 (2012).</li>
</ol>

Los autores no tienen conflictos de intereses.

Hemos presentado cuatro métodos in vitro (A-D) para caracterizar las actividades antibacterianas de nanopartículas y superficies nanoestructuradas. Si bien cada uno de estos métodos cuantifica el crecimiento bacteriano y la viabilidad a lo largo del tiempo en respuesta a los nanomateriales, existe cierta variación en los métodos utilizados para medir la densidad de siembra bacteriana inicial, el crecimiento y la viabilidad a lo largo del tiempo. Tres de estos métodos, el método de cocultivo directo (A)<sup class...

Solo en los Estados Unidos, 1.7 millones de personas desarrollan una infección adquirida en el hospital (HAI) anualmente, y una de cada 17 de estas infecciones resulta en la muerte1. Además, se estima que los costos de tratamiento de las IRAS oscilan entre $ 28 mil millones y $ 45 mil millones anuales 1,2. Estas IRAS están predominadas por Staphylococcus aureus resistente a meticilina (SARM)3,4 y Pseudomonas aeruginosa4, que comúnmente se aíslan de infecciones crónicas de heridas y generalmente requieren un tratamiento extenso y tiempo para producir un resultado favorable para el paciente.
En las últimas décadas, se han desarrollado múltiples clases de antibióticos para tratar infecciones relacionadas con estas y otras bacterias patógenas. Por ejemplo, los análogos de la rifamicina se han utilizado para tratar MRSA, otras infecciones grampositivas y gramnegativas, y Mycobacterium spp.infecciones 5. En la década de 1990, para tratar eficazmente un número creciente de infecciones por M. tuberculosis, se combinaron medicamentos adicionales con análogos de rifamicina para aumentar su efectividad. Sin embargo, aproximadamente el 5% de los casos de M. tuberculosis siguen siendo resistentes a larifampicina5,6, y existe una creciente preocupación con respecto a las bacterias resistentes a múltiples fármacos7. Actualmente, el uso de antibióticos solos puede no ser suficiente en el tratamiento de las IRAS, y esto ha provocado una búsqueda continua de terapias antimicrobianas alternativas1.
Los metales pesados, como la plata (Ag)8,9,10 y el oro (Au)11, y la cerámica, como el dióxido de titanio (TiO2)12 y el óxido de zinc (ZnO)13, en forma de nanopartículas (NP) (AgNP, AuNP, TiO2NP y ZnONP, respectivamente) han sido examinados por sus actividades antimicrobianas y han sido identificados como posibles alternativas antibióticas. Además, los materiales biorreabsorbibles, como las aleaciones de magnesio (aleaciones de Mg)14,15,16, las nanopartículas de óxido de magnesio 17,18,19,20,21 y las nanopartículas de hidróxido de magnesio [nMgO y nMg(OH)2, respectivamente]22,23,24, también se han examinado. Sin embargo, los estudios antimicrobianos previos de nanopartículas utilizaron materiales y métodos de investigación inconsistentes, lo que resultó en datos que son difíciles o imposibles de comparar y a veces son de naturaleza contradictoria18,19. Por ejemplo, la concentración inhibitoria mínima (CMI) y la concentración bactericida mínima (CMM) de las nanopartículas de plata variaron significativamente en diferentes estudios. Ipe et al.25 evaluaron las actividades antibacterianas de AgNPs con un tamaño de partícula promedio de ~26 nm para determinar las CMI contra bacterias grampositivas y gramnegativas. Las CMI identificadas para P. aeruginosa, E. coli, S. aureus y SARM fueron 2 μg/mL, 5 μg/mL, 10 μg/mL y 10 μg/mL, respectivamente. En contraste, Parvekar et al.26 evaluaron AgNPs con un tamaño de partícula promedio de 5 nm. En este caso, se encontró que la CMI AgNP y un MBC de 0,625 mg/ml eran efectivos contra S. aureus. Además, Loo et al.27 evaluaron AgNPs con un tamaño de 4,06 nm. Cuando E. coli fue expuesta a estas nanopartículas, la CMI y MBC fueron reportadas a 7.8 μg/mL. Finalmente, Ali et al.28 investigaron las propiedades antibacterianas de AgNPs esféricas con un tamaño promedio de 18 nm. Cuando P. aeruginosa, E. coli y MRSA fueron expuestos a estas nanopartículas, la CMI se identificó en 27 μg/mL, 36 μg/mL, 27 μg/mL y 36 μg/mL, respectivamente, y la MBC se identificó en 36 μg/mL, 42 μg/mL y 30 μg/mL, respectivamente.
Aunque la actividad antibacteriana de las nanopartículas ha sido ampliamente estudiada e informada durante las últimas décadas, no existe un estándar para los materiales y métodos de investigación utilizados para permitir comparaciones directas entre estudios. Por esta razón, presentamos dos métodos, el método de cocultivo directo (método A) y el método de exposición directa (método B), para caracterizar y comparar las actividades antimicrobianas de las nanopartículas manteniendo los materiales y métodos consistentes.
Además de las nanopartículas, las superficies nanoestructuradas también se han examinado para detectar actividades antibacterianas. Estos incluyen materiales a base de carbono, como nanoláminas de grafeno, nanotubos de carbono y grafito29, así como aleaciones puras de Mg y Mg. Cada uno de estos materiales ha exhibido al menos un mecanismo antibacteriano, incluido el daño físico impuesto a las membranas celulares por materiales a base de carbono y el daño a los procesos metabólicos o al ADN a través de la liberación de especies reactivas de oxígeno (ROS) cuando Mg se degrada. Además, cuando el zinc (Zn) y el calcio (Ca) se combinan en la formación de aleaciones de Mg, se mejora el refinamiento del tamaño de grano de la matriz de Mg, lo que conduce a una reducción de la adhesión bacteriana a las superficies del sustrato en comparación con las muestras de solo Mg14. Para demostrar la actividad antibacteriana, presentamos el método de cultivo directo (método C), que determina la adhesión bacteriana sobre y alrededor de materiales nanoestructurados a lo largo del tiempo a través de la cuantificación de unidades formadoras de colonias bacterianas (UFC) con contacto superficial directo e indirecto.
La geometría de las nanoestructuras en las superficies, incluyendo el tamaño, la forma y la orientación, podría influir en las actividades bactericidas de los materiales. Por ejemplo, Lin et al.16 fabricaron diferentes capas nanoestructuradas de MgO en las superficies de sustratos de Mg mediante anodización y deposición electroforética (EPD). Después de un período de exposición a la superficie nanoestructurada in vitro, el crecimiento de S. aureus se redujo sustancialmente en comparación con el Mg no tratado. Esto indicó una mayor potencia de la superficie nanoestructurada contra la adhesión bacteriana en comparación con la superficie metálica de Mg no tratada. Para revelar los diferentes mecanismos de las propiedades antibacterianas de varias superficies nanoestructuradas, en este artículo se discute un método de exposición de contacto enfocado (método D) que determina las interacciones célula-superficie dentro del área de interés.
El objetivo de este artículo es presentar cuatro métodos in vitro que son aplicables a diferentes nanopartículas, superficies nanoestructuradas y especies microbianas. Discutimos las consideraciones clave para cada método para producir datos consistentes y reproducibles para la comparabilidad. Específicamente, el método de cocultivo directo17 y el método de exposición directa se utilizan para examinar las propiedades antimicrobianas de las nanopartículas. A través del método de cocultivo directo, las concentraciones mínimas inhibitorias y bactericidas mínimas (CMI y MBC90-99.99, respectivamente) se pueden determinar para especies individuales, y la concentración más potente (MPC) se puede determinar para múltiples especies. A través del método de exposición directa, los efectos bacteriostáticos o bactericidas de las nanopartículas a concentraciones inhibitorias mínimas pueden caracterizarse mediante lecturas de densidad óptica en tiempo real a lo largo del tiempo. El método de cultivo directo14 es adecuado para examinar bacterias directa e indirectamente en contacto con superficies nanoestructuradas. Finalmente, se presenta el método de exposición de contacto focalizado16 para examinar la actividad antibacteriana de un área específica en una superficie nanoestructurada mediante la aplicación directa de bacterias y la caracterización del crecimiento bacteriano en la interfaz célula-nanoestructura. Este método se ha modificado de la norma industrial japonesa JIS Z 2801:200016, y está destinado a centrarse en las interacciones microbio-superficie y excluir los efectos de la degradación de muestras a granel en el cultivo microbiano sobre las actividades antimicrobianas.

<table><tbody><tr><td>Tubo de microcentrífuga de 1,5 mL</td><td>Milipore Sigma</td><td>Z336777</td><td></td></tr><tr><td>80 L Horno de secado por convección con certificación NTRL&nbsp;</td><td>MTI Corporation</td><td>BPG-7082 tampón de</td><td>https://www.mtixtl.com/BPG-7082.aspx</td></tr><tr><td>(hidroximetil) aminometano pH 8.5; Tampón Tris&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich&nbsp;</td><td>42457</td><td></td></tr><tr><td>AnaSpec&nbsp; TIOFLAVINA T GRADO ULTRAPURO</td><td>Fisher Scientific</td><td>50-850-291</td><td></td></tr><tr><td>Dispositivo de carga acoplada multiplicadora de electrones cámara digital&nbsp;</td><td>Hamamatsu</td><td>C9100-13</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 15 mL tubos cónicos</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-959-49B</td><td></td></tr><tr><td>Gluteraldehído</td><td>Sigma-Aldrich&nbsp;</td><td>G5882</td><td></td></tr><tr><td>Hemocitómetro</td><td>Brightline, Hausser Scientific</td><td>1492</td><td></td></tr><tr><td>Plasma acoplado inductivamente - espectrometría de emisión óptica (ICP-OES)</td><td>PerkinMicroscopio inverso Elmer</td><td>8000</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Nikon</td><td>Eclipse Ti-S</td><td></td></tr><tr><td>Luria Bertani Caldo</td><td>Sigma Ciencias de la Vida&nbsp;</td><td>L3022</td><td></td></tr><tr><td>Caldo Luria Bertani + agar</td><td>Sigma Ciencias de la Vida&nbsp;</td><td>L2897</td><td></td></tr><tr><td>MacroTube 5.0&nbsp; &nbsp;</td><td>Benchmark Scientific</td><td>C1005-T5-ST</td><td></td></tr><tr><td>Nanopartículas de óxido de magnesio</td><td>US Research Nanomaterials, Inc</td><td>Stock #:&nbsp; US3310&nbsp; &nbsp; &nbsp; M</td><td>MgO, 99+%, 20 nm</td></tr><tr><td>MS Semi-Micro Balance</td><td>Mettler Toledo</td><td>MS105D</td><td></td></tr><tr><td>Papel nitrocelulósico</td><td>Fisherbrand</td><td>09-801A</td><td></td></tr><tr><td>Placa de poliestireno de 12 pocillos sin tratamiento tisular</td><td>Marca Falcon Corning&nbsp;</td><td></td><td></td>351143</tr><tr><td>Placa de poliestireno de 48 pocillos sin tratamiento tisular</td><td>Marca Falcon Corning&nbsp;</td><td></td><td></td>351178</tr><tr><td>Placa de poliestireno de 96 pocillos sin tratamiento tisular</td><td>Marca Falcon Corning&nbsp;</td><td></td><td></td>351172</tr><tr><td>Placa de Petri de 100 mm</td><td>VWR</td><td>470210-568</td><td></td></tr><tr><td>Placa de Petri, 15 mm</td> Medidor de pH de <td>FB0875713A</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Fisherbrand VWR</td><td>SP70P</td><td></td></tr><tr><td>Microscopía electrónica de barrido (SEM)</td><td>TESCAN&nbsp;</td><td>Vega3 SBH</td><td></td></tr><tr><td>Sonicator</td><td>VWR</td><td>97043-936</td><td></td></tr><tr><td>Centrífuga de sobremesa</td><td>Fisher Scientific</td><td>accuSpin Micro 17</td><td></td></tr><tr><td>Centrífuga de sobremesa&nbsp;</td><td></td><td>Centrífuga Eppendorf 5430</td><td></td></tr><tr><td>Agar de soja tríptico</td><td>MP</td><td>1010617</td><td></td></tr><tr><td>Caldo de soja tríptico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>22092-500G</td><td></td></tr><tr><td>espectrofotómetro UV-Vis&nbsp;</td><td>Tecan</td><td>Infinite 200 PRO</td><td>https://lifesciences.tecan.com/plate_readers/infinite_200_pro</td></tr><tr><td>VWR Benchmark Incu-shaker 10L</td><td>VWR</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Defracción de potencia de rayos X</td><td>&nbsp; Panalytical</td><td>N/A</td><td>PANalytical Empyrean Series 2</td></tr></tbody></table>

evaluación de las actividades antimicrobianas de nanopartículas y superficies nanoestructuradas in vitro

Evaluation of Antimicrobial Activities of Nanoparticles and Nanostructured Surfaces In Vitro

Las actividades antimicrobianas de nanopartículas y superficies nanoestructuradas, como plata, óxido de zinc, dióxido de titanio y óxido de magnesio, se han explorado previamente en entornos clínicos y ambientales y en productos alimenticios consumibles. Sin embargo, la falta de consistencia en los métodos experimentales y materiales utilizados ha culminado en resultados contradictorios, incluso entre estudios de los mismos tipos de nanoestructuras y especies bacterianas. Para los investigadores que desean emplear nanoestructuras como aditivo o recubrimiento en el diseño de un producto, estos datos contradictorios limitan su utilización en entornos clínicos. 
Para enfrentar este dilema, en este artículo, presentamos cuatro métodos diferentes para determinar las actividades antimicrobianas de nanopartículas y superficies nanoestructuradas, y discutimos su aplicabilidad en diferentes escenarios. Se espera que la adaptación de métodos consistentes conduzca a datos reproducibles que puedan compararse entre estudios e implementarse para diferentes tipos de nanoestructuras y especies microbianas. Introducimos dos métodos para determinar las actividades antimicrobianas de las nanopartículas y dos métodos para las actividades antimicrobianas de las superficies nanoestructuradas. 
Para las nanopartículas, el método de cocultivo directo se puede utilizar para determinar las concentraciones bactericidas mínimas inhibitorias y mínimas de nanopartículas, y el método de cultivo de exposición directa se puede utilizar para evaluar la actividad bacteriostática en tiempo real frente a la actividad bactericida resultante de la exposición a nanopartículas. Para superficies nanoestructuradas, el método de cultivo directo se utiliza para determinar la viabilidad de las bacterias indirectamente y directamente en contacto con superficies nanoestructuradas, y el método de exposición de contacto enfocado se utiliza para examinar la actividad antimicrobiana en un área específica de una superficie nanoestructurada. Discutimos las variables experimentales clave a considerar para el diseño del estudio in vitro al determinar las propiedades antimicrobianas de nanopartículas y superficies nanoestructuradas. Todos estos métodos son relativamente de bajo costo, emplean técnicas que son relativamente fáciles de dominar y repetibles para la consistencia, y son aplicables a una amplia gama de tipos de nanoestructuras y especies microbianas.

La identificación de la actividad antibacteriana de nanopartículas de óxido de magnesio y superficies nanoestructuradas se ha presentado utilizando cuatro métodos in vitro que son aplicables a diferentes tipos de materiales y especies microbianas.
El método A y el método B examinan las actividades bacterianas cuando se exponen a nanopartículas en una fase de retraso (método A) y fase logarítmica (método B) durante una duración de 24 h o más. El método A proporciona resultados con resp...

Presentamos cuatro métodos para evaluar las actividades antimicrobianas de nanopartículas y superficies nanoestructuradas utilizando técnicas in vitro . Estos métodos se pueden adaptar para estudiar las interacciones de diferentes nanopartículas y superficies nanoestructuradas con una amplia gama de especies microbianas.

Evaluación de las actividades antimicrobianas de nanopartículas y superficies nanoestructuradas in vitro

The antimicrobial activities of nanoparticles and nanostructured surfaces, such as silver, zinc oxide, titanium dioxide, and magnesium oxide, have been ...

Los protocolos proporcionan un método para examinar las actividades antimicrobianas de las nanopartículas y las superficies nanoestructuradas desde las investigaciones de la etapa preliminar hasta los exámenes de superficie más complejos. A diferencia de los métodos descritos anteriormente que dieron como resultado datos incomparables en todos los estudios, estos métodos producen resultados consistentes y comparables en diferentes materiales de nanopartículas, materiales nanoestructurados y especies microbianas. Mantener una distribución homogénea de nanopartículas en los métodos A y B puede ser difícil.El vórtice de muestras a fondo asegurará la suspensión de nanopartículas, y el pipeteo de tres a cuatro veces entre alícuotas mantendrá las suspensiones Comience a recolectar bacterias cultivadas alícuotas un mililitro del cultivo bacteriano cultivado durante la noche en tubos de microcentrífuga de 1.5 mililitros. Después de crear un número suficiente de alícuotas, centrifugarlas para alcanzar la densidad de asientos deseada. Recoja el sobrenadante en un recipiente de recolección.Y vuelva a suspender el pellet celular en 0,5 mililitros de medio de crecimiento fresco. Combine la suspensión de dos tubos y repita la centrifugación. Después de la centrifugazización, dar un segundo lavado con medio de crecimiento fresco y repetir la combinación del contenido de dos tubos en uno antes de centrifugar los tubos.Dé el tercer lavado con 0,33 mililitros de tampón tris o tampón hidroxietil aminometano. Combine las tres suspensiones, cada una de 0,33 mililitros de volumen, en una microcentrífuga de 1,5 mililitros. Después de la centrifugazización, retire el sobrenadante de las células peletizadas y vuelva a suspender el pellet celular en un mililitro de tampón tris fresco que se conocerá como suspensión celular o cultivo de siembra bacteriana en fase de retraso.Para formar los cultivos de bacterias y nanopartículas, alícuota los dos mililitros del cultivo de siembra bacteriana en cada pocillo de una placa de poliestireno no tratado con tejido de 12 pocillos. Por cada tubo de microcentrífuga de cinco mililitros que contenga partículas de óxido de magnesio previamente pesadas, agregue tres mililitros del cultivo de siembra bacteriana. Y vortex el tubo brevemente para mezclar las nanopartículas de óxido de magnesio con las bacterias.Después de mezclar, alícuota un mililitro de la suspensión de nanopartículas de óxido de magnesio en tres pocillos separados para crear las muestras triplicadas de cada peso premedido de nanopartículas de óxido de magnesio. Incubar la muestra durante la noche a 37 grados centígrados y 120 rpm. Y transfiera una muestra de tres mililitros a un tubo cónico individual de 15 mililitros usando una pipeta.Luego realice una dilución en serie de uno a 10 en una placa de 96 pocillos agregando 180 microlitros de tampón tris a cada pocillo en la fila B a la fila G para el número apropiado de columnas. Brevemente vortex un tubo cónico de 15 mililitros que contenga muestras bacterianas, y agregue 50 microlitros de muestra bacteriana a un pocillo individual en la fila A.A continuación, desde la fila A, transfiera 20 microlitros de muestra bacteriana al pozo correspondiente de la fila B con una breve mezcla. Con una punta de pipeta estéril, transfiera 20 microlitros del pocillo de la fila B al pocillo correspondiente de la fila C.Continúe hasta la fila G para completar la dilución en serie de 10 a la negativa de la fila B a la de 10 a la seis negativa de la fila G.Una vez hecho esto, pipetear 100 microlitros de cada pocillo en una placa de agar de crecimiento adecuada, y se extienden a través de la placa para dispersar el cultivo celular.Coloque las placas del pozo en una coctelera de incubadora durante la noche a 37 grados centígrados, e incube las placas de agar a 37 grados centígrados durante 24 horas. Examine la placa y cuente las placas que tienen aproximadamente de 25 a 300 colonias. Si es posible, elija placas del mismo valor de dilución.Para cada material a analizar, diluir las muestras bacterianas durante la noche agregando tres alícuotas de 200 microlitros al medio de crecimiento en tres pocillos, y tres alícuotas de 200 microlitros del cultivo bacteriano en pocillos adicionales. Coloque la placa de 96 pocillos en el lector de placas y escanéela. Si es necesario, continúe agregando caldo o cultivo bacteriano durante la noche hasta que la densidad óptica a 600 nanómetros, o OD 600, alcance aproximadamente 0.01.Para preparar suspensiones de nanopartículas bacterianas y suspensiones de nanopartículas de medios estériles, retire un mililitro de cultivo bacteriano o medio de un conjunto triplicado de tubos cónicos de 15 mililitros. Y agréguelo a un tubo de centrífuga de cinco mililitros que contenga nanopartículas premedidas. Vortex los tubos para mezclar la solución.Distribuir las nanopartículas homogéneamente transfiriendo alícuotas de un mililitro del tubo centrífugo de cinco mililitros al tubo cónico de 15 mililitros. Una vez hecho esto, alícuota 200 microlitros de cada muestra en los pocillos individuales de una placa de 96 pocillos. Después de determinar la densidad de asientos descrita anteriormente, agregue las muestras y el control en los pocillos individuales de una placa de poliestireno no tratado con tejido de 48 pocillos.A continuación, alícuota los 0,75 mililitros de la suspensión celular en cada pocillo que contiene las muestras y los controles. Coloque la placa de 48 pocillos en una incubadora agitadora durante 24 horas a 37 grados centígrados, agitando a 120 RPM. Después de la incubación, recoja dos muestras de cada grupo y transfiéralas individualmente a tubos de microcentrífuga de cinco mililitros marcados.Agregue dos mililitros de fluido corporal simulado revisado, o RSBF, a cada tubo. Prepare papeles esterilizados de celulosa nitrosa recortándolos en un centímetro de diámetro. Coloque el papel de nitrocelulosa cortado en una placa de agar que contenga el medio apropiado.A continuación, agregue 50 microlitros del cultivo bacteriano diluido en el papel de filtro antes de agregar 50 microlitros de un medio apropiado al centro de cada superficie de muestra. Usando pinzas esterilizadas, recoja el papel de celosa nítrica de la superficie de la barrena. Voltea con cuidado el papel de celulosa nítrica y colócalo sobre la superficie de la muestra para que las bacterias estén en contacto con los 50 microlitros de medio y la superficie nanoestructurada de interés.Si la muestra es degradable en cultivo, coloque un soporte debajo de ella para levantarla y evitar el contacto con el tampón tris. Mantenga la humedad agregando un mililitro de tampón de tris a una muestra que contenga pozo. Después de la incubación durante la noche, recoja el papel de nitrocelulosa de cada superficie de muestra y colóquelos en cinco mililitros de tampón tris.Vortex los papeles de filtro recolectados y las muestras de material de nanosuperficie durante cinco segundos. Recoja las suspensiones tampón tris de la muestra y colóquelas en tubos de recolección frescos individuales. Los efectos antimicrobianos utilizando el método A identificaron una concentración mínima e inhibitoria, o CMI, de un miligramo por mililitro de nanopartículas de óxido de magnesio, y concentraciones bactericidas mínimas, o MBC 99.9, de 1.0 y 1.6 miligramos por mililitro de nanopartículas de óxido de magnesio para Escherichia coli gramnegativa y pseudomonas aeruginosa respectivamente.El estafilococo grampositivo de la epidermis, S.Aureus, y el Staphylococcus aureus resistente a la meticilina, o SARM, demostraron los valores de la CMI de 0,5, 0,7 y un miligramo por mililitro de nanopartículas de óxido de magnesio, respectivamente. Se identificaron valores NBC 99.99 de 1.6 y 1.2 miligramos por mililitro para S.epidermis y S.aureus respectivamente. Mientras que MRSA no se redujo más allá de NBC 90.Se identificaron CMI de 1,2 y un miligramo por mililitro en especies de cándida sensibles a los medicamentos y resistentes a los medicamentos, C albicans y C albicans resistentes al fluconazol, o FR, respectivamente. En contraste, las nanopartículas de óxido de magnesio demostraron valores de CMI de uno y 0,7 miligramos por mililitro, o C.glabrata y C glabrata echinocandina resistentes, o ER respectivamente. Cada especie candidata alcanzó un NBC 90 de 0.7 a 1.2 miligramos por mililitro, pero solo C.glabrata ER se redujo a NBC 99.9 a 1.2 miligramos por mililitro.En el método B, MRSA expuesto a nanopartículas creció exponencialmente a un OD de 0,85. La exposición a 1,2 miligramos por mililitro de nanopartículas de óxido de magnesio y 6,25 miligramos por mililitro de trimetoprima dio lugar a un 80,2% y un 81,6% de reducción del crecimiento bacteriano, respectivamente. Del mismo modo, 2,9 miligramos por mililitro de nanopartículas de hidróxido de magnesio redujeron el crecimiento bacteriano al 70,3%La exposición a un microlitro por mililitro de vancomicina resultó en una reducción del 99,99% en el crecimiento de MRSA, lo que sugiere la actividad bacteriostática del óxido de magnesio y las nanopartículas de hidróxido de magnesio.El método C no mostró inhibición del crecimiento bacteriano con contacto indirecto. Los resultados indicaron que ZC21 tenía la actividad antibacteriana más fuerte contra la adhesión y el crecimiento de MRSA, para todas las muestras analizadas. En el Método D, no se identificó ningún estafilococo áureo viable en las muestras de 1.9A, 1.9 AA y EPD, o sus papeles de filtro emparejados.Sin embargo, la exposición a las muestras de EPD después de arrodillarse redujo el crecimiento bacteriano a unas pocas células en la superficie nanoestructurada y el papel de filtro recortado. La identificación de las actividades antimicrobianas de nanopartículas y superficies nanoestructuradas ha llevado a investigaciones adicionales en aplicaciones de bioingeniería, incluidas las relacionadas con heridas crónicas e infecciones relacionadas con implantes.

evaluation-antimicrobial-activities-nanoparticles-nanostructured

Research

Investigación

JoVE Journal

Bioengineering

Bioingeniería

Tomemos tubos con un medio que contiene un compuesto de nanopartículas, diseñado a partir de una combinación de metales de transición y carbono.Introducir bacterias patógenas Gram-positivas y Gramnegativas resistentes a los antibióticos en tubos separados como muestras de prueba.Incluye bacterias no tratadas como control negativo y bacterias tratadas con antibióticos como control positivo.Incuba las muestras agitándolas.En bacterias Gramnegativas, la membrana externa porosa y la fina capa de...

Evaluación de la actividad antimicrobiana de un compuesto de nanopartículas contra bacterias patógenas

Source: Holt-Torres, P. S. et al. Evaluation of Antimicrobial Activities of Nanoparticles and Nanostructured Surfaces In Vitro. J. Vis. Exp. (2023)This video demonstrates the use of the focused-contact exposure method to evaluate the antibacterial activity of nanostructured surfaces. It outlines the steps involved in establishing direct contact between bacteria and the nanostructured surface, incubation, bacterial collection, and colony counting to assess viability.

Assessing the Antibacterial Activity of Nanostructured Surfaces Using a Focused-Contact Exposure Method

Aquí, presentamos protocolos para cribar y caracterizar rápidamente la actividad antimicrobiana de las enzimas. El ensayo de difusión de microportaobjetos y el ensayo de liberación de colorante utilizan sustratos bacterianos objetivo para la evaluación cualitativa y cuantitativa de la actividad enzimática.

Los ensayos cualitativos y cuantitativos para la detección y caracterización de proteínas de antimicrobianos

En este estudio, nanomateriales antimicrobianos fueron sintetizados por oxidación ácida de nanotubos de carbono pirólisis y posterior deposición reductiva de nanopartículas de plata. Se realizaron pruebas de actividad y la citotoxicidad antimicrobianas con los nanomateriales como preparado.

Síntesis de nanotubos de carbono multipared modificados con nanopartículas de plata y la evaluación de sus actividades antibacterianas y propiedades citotóxicas

Presentamos un protocolo para la caracterización antimicrobiana de materiales avanzados. Aquí, la actividad antimicrobiana en superficies de material se mide mediante dos métodos que se complementan: uno se basa en la prueba de difusión de discos de agar, y el otro es un procedimiento estándar basado en la norma ISO de 22196:2007.

Caracterización antimicrobiana de materiales avanzados para aplicaciones de bioingeniería

Aquí, presentamos métodos detallados para la preparación y evaluación de la vacuna nasal autoensamblada para tumores de nanoemulsión in vitro e in vivo.

Preparación, características, toxicidad y evaluación de la eficacia de la vacuna nasal autoensamblada para tumores de nanoemulsión in vitro e in vivo

El presente protocolo prepara y evalúa las propiedades físicas, la respuesta inmune y el efecto protector in vivo de una nueva vacuna adyuvante de nanoemulsión.

Evaluación de la respuesta inmune de una vacuna adyuvante de nanoemulsión contra la infección por Staphylococcus aureus resistente a la meticilina (SARM)

Las batas de laboratorio antimicrobianas evitan la contaminación cruzada de la acumulación de patógenos y los bioderrames accidentales. Aquí, describimos el protocolo para desarrollar un tejido antimicrobiano amigable con la piel utilizando encapsulación nano-herbal y pruebas estándar modificadas para evaluar con precisión la eficacia y la idoneidad para el uso típico de la bata de laboratorio.

Un tejido antimicrobiano que utiliza nano-herbal encapsulación de aceites esenciales

En este estudio, se sintetizaron nanopartículas de óxido de zinc utilizando un método de precipitación. El efecto antibacteriano de las partículas sintetizadas se probó contra cepas bacterianas de Staphylococcus aureus (SARM) y Pseudomonas aeruginosa resistentes a múltiples fármacos.

Preparación de nanopartículas de óxido de zinc y evaluación de sus efectos antibacterianos

Este protocolo proporciona un marco sistemático para evaluar cómo los fitoquímicos pueden potenciar los efectos bactericidas de los biocidas tradicionales utilizando modelado de actividad bactericida y ensayos de interacción combinatoria, que buscan identificar mezclas sinérgicas que mejoren el control microbiano y reduzcan el uso global de biocidas.

In Vitro Evaluación de los efectos potenciadores de moléculas de origen vegetal sobre biocidas convencionales

Aprenda a evaluar actividades antimicrobianas de nanopartículas y superficies nanoestructuradas in vitro. Estos métodos producen resultados consistentes y comparables para diversas especies microbianas.

Evaluación de las actividades antimicrobianas de nanopartículas y superficies nanoestructuradas in vitro

Explorar más videos