Name: Aislamiento, cultivo e inducción adipogénica de preadipocitos derivados de la fracción vascular estromal a partir de tejido adiposo periaórtico de ratón (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-07-21T12:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 56 s
Description: Aprende a aislar, cultivar e inducir adipogénesis en preadipocitos derivados de la fracción vascular estromal del tejido adiposo periaórtico de ratón. Este protocolo permite estudiar la función del PVAT y sus interacciones con células vasculares in vitro.

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Este trabajo contó con el apoyo de la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (82130012 y 81830010) y los proyectos Nurture para la investigación básica del Hospital del Tórax de Shanghái (número de subvención: 2022YNJCQ03).

Los protocolos con animales fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales del Hospital del Tórax de Shanghái, afiliado a la Facultad de Medicina de la Universidad Jiao Tong de Shanghái (número de aprobación: KS23010) y cumplían con las normas éticas pertinentes. Para este experimento se prefieren ratones machos y hembras C57BL/6 de 4 a 8 semanas de edad.
1. Preparación de herramientas quirúrgicas, tampones y medios de cultivo
<ol><li>Herramientas quirúrgicas de autoclave (p. ej., tijeras quirúrgicas y pinzas estándar) a 121 °C durante 30 min. Desinfectar el instrumental microquirúrgico con alcohol al 75%.</li>
	<li>Prepare solución salina estéril tamponada con fosfato (PBS) suplementada con penicilina-estreptomicina al 1% v/v y otros 10 ml de PBS suplementados con penicilina-estreptomicina v/v al 10%. NOTA: En las siguientes secciones, si no se menciona específicamente, PBS se refiere a PBS estéril regular.</li>
	<li>Prepare el tampón Krebs Ringer HEPES BSA: 1% de albúmina sérica bovina (BSA), 20 mM HEPES disueltos en la solución Krebs Ringer.</li>
	<li>Preparar solución de digestión fresca: colagenasa tipo 1 (1 mg/mL) y dispasa II (4 mg/mL) disueltas en tampón Krebs Ringer HEPES BSA. Esterilice la solución con un filtro de 0,2 μm.</li>
	<li>Prepare un plato de 12 pocillos recubierto de colágeno.<ol><li>Diluir la solución de colágeno (1 mg/mL) con agua desionizada estéril hasta una concentración de 40 μg/mL. Añadir 1 mL de la solución de colágeno diluido en la superficie de cada pocillo para conseguir una concentración de 6-10 μg/cm2. Incubar el recubrimiento durante 1 h a temperatura ambiente.</li>
		<li>Retire la solución restante y enjuague cada pocillo 2 veces con 1 ml de PBS. Utilice la placa inmediatamente o séquela al aire en una campana de flujo laminar de clase II y almacene la placa recubierta a 2-8 °C. Al almacenar, selle las placas recubiertas con parafilm.</li>
	</ol></li>
	<li>Prepare el medio de cultivo: medio Dulbecco-Modified Eagles (DMEM) con alto contenido de glucosa, suero bovino fetal (FBS) al 10%, penicilina-estreptomicina al 1% v/v. Mantener a 4 °C durante un máximo de 2 semanas.</li>
	<li>Prepare el medio de inducción lipogénico: DMEM con alto contenido de glucosa, 10 % de FBS, 1 % v/v de penicilina-estreptomicina, 1 nM de triyodotironina, 1 μM de rosiglitazona, 1 μM de insulina, 0,5 mM de 3-isobutil-1-metilxantina (IBMX) y 1 μM de dexametasona. Mantener a 4 °C durante un máximo de 2 semanas.</li>
	<li>Prepare el medio de mantenimiento: DMEM con alto contenido de glucosa, 10 % de FBS, 1 % v/v de penicilina-estreptomicina, 1 nM de triyodotironina, 1 μM de rosiglitazona y 1 μM de insulina. Mantener a 4 °C durante un máximo de 2 semanas.</li>
</ol>2. Disección y aislamiento del tejido adiposo perivascular (PVAT)
<ol><li>Eutanasia del ratón por luxación cervical bajo anestesia con isoflurano al 2% o con sobredosis de dióxido de carbono. Pulverizar con alcohol al 75% para la desinfección de la piel.</li>
	<li>Coloque el ratón en posición supina (mirando hacia arriba).</li>
	<li>Levante la piel, haga una pequeña incisión y separe sin rodeos la piel y los músculos abdominales con unas tijeras quirúrgicas a lo largo de la línea media ventral desde la pelvis hasta el cuello. Exponga el corazón y los pulmones cortando el diafragma y las costillas a lo largo de ambos lados de la línea media.</li>
	<li>Extirpe con cuidado el hígado, el bazo, los intestinos y el riñón. Evite cortar la pared intestinal.</li>
	<li>Extirpar los pulmones y el esófago.</li>
	<li>Levante suavemente el corazón con fórceps en una mano y separe la aorta de la columna vertebral con unas tijeras quirúrgicas en la otra mano. Luego, coloque el corazón y la aorta en una placa de Petri de 60 mm con PBS que contenga 1% v/v de penicilina-estreptomicina.</li>
	<li>Retire las pinzas microquirúrgicas y las tijeras microquirúrgicas del alcohol y enjuague con 25 ml de PBS para eliminar el exceso de alcohol. Bajo un microscopio estereoscópico, extirpe el timo y otros tejidos del corazón y la aorta, luego extirpe el corazón, dejando la aorta con los PVAT.</li>
	<li>Transfiera la aorta con los PVAT a una placa de Petri limpia de 60 mm con PBS que contenga penicilina-estreptomicina al 1% v/v.</li>
	<li>Use pinzas microquirúrgicas para extirpar los PVAT, con un par de pinzas fijando la aorta y el otro tirando del tejido adiposo. Extirpar el tejido de la vasculatura tanto como sea posible mientras se minimiza el daño al tejido adiposo perivascular.</li>
	<li>Recoja el PVAT que rodea la aorta torácica en el tubo de microcentrífuga de 2 ml que contiene DMEM con alto contenido de glucosa suplementado con penicilina-estreptomicina al 1% v/v colocado en hielo.</li>
</ol>3. Aislamiento de la fracción vascular estromal (SVF)
<ol><li>Enjuague los tejidos recolectados secuencialmente con PBS que contenga 10% v/v de penicilina-estreptomicina y PBS que contenga 1% v/v de penicilina-estreptomicina. NOTA: A partir de este paso, todos los experimentos deben llevarse a cabo en condiciones estériles en una campana de flujo laminar de clase II.</li>
	<li>Transfiera los tejidos a una placa de Petri estéril de 60 mm, agregue 200 μL de solución de digestión y píquelos entrozos de 1 mm 3 con unas tijeras estériles.</li>
	<li>Transfiera la mezcla a un tubo de centrífuga de 15 ml con una punta de pipeta de plástico, el extremo ensanchado por un corte de tijera estéril, y agregue 6 ml de solución de digestión para iniciar la reacción de digestión. NOTA: Una reacción de digestión (3 ml de solución de digestión) es suficiente para los depósitos de PVAT de seis ratones.</li>
	<li>Incubar los tejidos a 37 °C en una incubadora con agitador orbital (frecuencia de 150 rpm para una mezcla eficaz) durante 30-45 min. Ata los tubos en una rejilla para que se agiten horizontalmente. Agitar vigorosamente hacia arriba y hacia abajo con la mano durante 10 s cada 5-10 min. NOTA: La digestión se puede interrumpir cuando se observa un líquido digestivo homogéneo y amarillento sin fragmentos de tejido.</li>
	<li>Cuele los tejidos digeridos a través de un colador celular de 70 μm en un tubo de centrífuga de 50 ml. Enjuague el filtro celular con un volumen igual de medio de cultivo para maximizar el rendimiento celular y detener la digestión.</li>
	<li>Transfiera el filtrado a un nuevo tubo de centrífuga de 15 ml y centrifugue a 1.800 × g durante 10 minutos. Invierta el tubo para desechar el sobrenadante y vuelva a suspender los gránulos en 5 mL de PBS. Centrifugar a 1.800 × g durante 5 min.</li>
	<li>Deseche el sobrenadante invirtiendo el tubo y vuelva a suspender los gránulos en un volumen adecuado de medio de cultivo. NOTA: Los gránulos celulares recolectados de cada seis ratones se resuspenden en 1 ml de medio de cultivo y se siembran en un pocillo de una placa de 12 pocillos.</li>
	<li>Siembre las células en una placa de 12 pocillos recubierta de colágeno e incube a 37 °C en una atmósfera húmeda con 5% deCO2 durante la noche.</li>
	<li>Al día siguiente, aspirar el medio de cultivo, lavar las células con PBS precalentado (37 °C) que contenga penicilina-estreptomicina al 1% v/v para eliminar los restos celulares y los glóbulos rojos, y volver a agregar 1 ml de medio de cultivo fresco en cada pocillo.</li>
</ol>4. Inducción adipogénica de preadipocitos derivados de SVF a partir de tejido adiposo periaórtico
<ol><li>Cambie el medio de cultivo cada dos días hasta que las células alcancen ~60-70% de confluencia. NOTA: Por lo general, las células tardan entre 3 y 4 días en alcanzar el 60-70% de confluencia.</li>
	<li>Cuando las células alcancen el 60-70% de confluencia, aspire el medio de cultivo y reemplácelo con un medio de inducción adipogénico marrón. Considere el día de inducción de la diferenciación adipogénica como el día 0 de la diferenciación.</li>
	<li>Después de 72 h (día 3 de diferenciación), refresque el medio con medio de mantenimiento. Cambie el medio de mantenimiento cada 2 días hasta que las células se utilicen para experimentos.</li>
	<li>Analice las células adipogénicas de manera adecuada, como la tinción Oil Red O14 y la Western blot15.</li>
</ol>

Cultivo de preadipocitos aislados de tejido adiposo perivascular murino

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<li>Huang, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thoracic+perivascular+adipose+tissue+inhibits+VSMC+apoptosis+and+aortic+aneurysm+formation+in+mice+via+the+secretome+of+browning+adipocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Pharmacologica+Sinica%22%5BJournal%5D)">Thoracic perivascular adipose tissue inhibits VSMC apoptosis and aortic aneurysm formation in mice via the secretome of browning adipocytes.</a> Acta Pharmacologica Sinica. 44 (2), 345-355 (2023).</li>
<li>Xia, N., Li, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+perivascular+adipose+tissue+in+obesity-induced+vascular+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Pharmacology%22%5BJournal%5D)">The role of perivascular adipose tissue in obesity-induced vascular dysfunction.</a> British Journal of Pharmacology. 174 (20), 3425-3442 (2017).</li>
<li>Brown, N. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perivascular+adipose+tissue+in+vascular+function+and+disease%3A+a+review+of+current+research+and+animal+models%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+and+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">Perivascular adipose tissue in vascular function and disease: a review of current research and animal models.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 34 (8), 1621-1630 (2014).</li>
<li>Ferrero, R., Rainer, P., Deplancke, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toward+a+consensus+view+of+mammalian+adipocyte+stem+and+progenitor+cell+heterogeneity%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Toward a consensus view of mammalian adipocyte stem and progenitor cell heterogeneity.</a> Trends in Cell Biology. 30 (12), 937-950 (2020).</li>
<li>Angueira, A. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defining+the+lineage+of+thermogenic+perivascular+adipose+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Metabolism%22%5BJournal%5D)">Defining the lineage of thermogenic perivascular adipose tissue.</a> Nature Metabolism. 3 (4), 469-484 (2021).</li>
<li>Boucher, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rab27a+regulates+human+perivascular+adipose+progenitor+cell+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+Drugs+and+Therapy%22%5BJournal%5D)">Rab27a regulates human perivascular adipose progenitor cell differentiation.</a> Cardiovascular Drugs and Therapy. 32 (5), 519-530 (2018).</li>
<li>Saxton, S. N., Withers, S. B., Heagerty, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Emerging+roles+of+sympathetic+nerves+and+inflammation+in+perivascular+adipose+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+Drugs+and+Therapy%22%5BJournal%5D)">Emerging roles of sympathetic nerves and inflammation in perivascular adipose tissue.</a> Cardiovascular Drugs and Therapy. 33 (2), 245-259 (2019).</li>
<li>Ferroni, L., De Francesco, F., Pinton, P., Gardin, C., Zavan, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+to+isolate+adipose+tissue-derived+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Methods to isolate adipose tissue-derived stem cells.</a> Methods in Cell Biology. 171, 215-228 (2022).</li>
<li>Senesi, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+and+enzymatic+procedures+to+isolate+the+stromal+vascular+fraction+from+adipose+tissue%3A+preliminary+results%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Cell+and+Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Mechanical and enzymatic procedures to isolate the stromal vascular fraction from adipose tissue: preliminary results.</a> Frontiers in Cell and Developmental Biology. 7, 88(2019).</li>
<li>Andia, I., Maffulli, N., Burgos-Alonso, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stromal+vascular+fraction+technologies+and+clinical+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Opinion+on+Biological+Therapy%22%5BJournal%5D)">Stromal vascular fraction technologies and clinical applications.</a> Expert Opinion on Biological Therapy. 19 (12), 1289-1305 (2019).</li>
<li>Suh, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adipose-derived+cellular+and+cell-derived+regenerative+therapies+in+dermatology+and+aesthetic+rejuvenation%5BTitle%5D)+AND+%22Ageing+Research+Reviews%22%5BJournal%5D)">Adipose-derived cellular and cell-derived regenerative therapies in dermatology and aesthetic rejuvenation.</a> Ageing Research Reviews. 54, 100933(2019).</li>
<li>Bellei, B., Migliano, E., Picardo, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Therapeutic+potential+of+adipose+tissue-derivatives+in+modern+dermatology%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Dermatology%22%5BJournal%5D)">Therapeutic potential of adipose tissue-derivatives in modern dermatology.</a> Experimental Dermatology. 31 (12), 1837-1852 (2022).</li>
<li>Kraus, N. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+assessment+of+adipocyte+differentiation+in+cell+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Adipocyte%22%5BJournal%5D)">Quantitative assessment of adipocyte differentiation in cell culture.</a> Adipocyte. 5 (4), 351-358 (2016).</li>
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<li>Li, X., Ballantyne, L. L., Yu, Y., Funk, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perivascular+adipose+tissue-derived+extracellular+vesicle+miR-221-3p+mediates+vascular+remodeling%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">Perivascular adipose tissue-derived extracellular vesicle miR-221-3p mediates vascular remodeling.</a> FASEB Journal. 33 (11), 12704-12722 (2019).</li>
<li>Ruan, C. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perivascular+adipose+tissue-derived+complement+3+is+required+for+adventitial+fibroblast+functions+and+adventitial+remodeling+in+deoxycorticosterone+acetate-salt+hypertensive+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+and+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">Perivascular adipose tissue-derived complement 3 is required for adventitial fibroblast functions and adventitial remodeling in deoxycorticosterone acetate-salt hypertensive rats.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 30 (12), 2568-2574 (2010).</li>
<li>Adachi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Beiging+of+perivascular+adipose+tissue+regulates+its+inflammation+and+vascular+remodeling%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Beiging of perivascular adipose tissue regulates its inflammation and vascular remodeling.</a> Nature Communications. 13 (1), 5117(2022).</li>
<li>Ye, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+and+functional+characteristics+of+the+thoracic+aorta+perivascular+adipocyte%5BTitle%5D)+AND+%22Cellular+and+Molecular+Life+Sciences%22%5BJournal%5D)">Developmental and functional characteristics of the thoracic aorta perivascular adipocyte.</a> Cellular and Molecular Life Sciences. 76 (4), 777-789 (2019).</li>
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</ol>

Los autores no tienen conflictos de intereses, financieros o de otro tipo, que declarar.

Proponemos un enfoque práctico y factible para el aislamiento y la inducción adipogénica de preadipocitos derivados de la FVS a partir de tejido adiposo periaórtico de ratón. Las ventajas de este protocolo son que es sencillo y económico. Un número adecuado de ratones es fundamental para un aislamiento exitoso, ya que un tejido insuficiente puede dar lugar a una baja densidad de SVF y a un mal estado de crecimiento, lo que en última instancia afecta a la eficiencia lipogénica. Además, la edad del ratón es un factor impor...

Se cree que el tejido adiposo perivascular (PVAT), una estructura perivascular compuesta por una mezcla de adipocitos maduros y una fracción vascular estromal (SVF), interactúa con la pared del vaso adyacente a través de su secretoma paracrino1. Como regulador crítico de la homeostasis vascular, la disfunción de PVAT está implicada en la patogénesis de las enfermedades cardiovasculares 2,3,4. La SVF del tejido adipocito está formada por varias poblaciones celulares esperadas, entre las que se incluyen las células endoteliales, las células inmunitarias, las células mesoteliales, las células neuronales y las células madre y progenitoras adiposas (ASPC)5,6. Es bien sabido que las ASPC que residen en la SVF del tejido adiposo pueden dar lugar a adipocitos maduros5. Se infiere que la SVF es una fuente crítica de adipocitos maduros en PVAT. Varios estudios han demostrado que el PVAT-SVF puede diferenciarse en adipocitos maduros en condiciones específicas de inducción 6,7,8.
Actualmente, existen dos sistemas de aislamiento para aislar la SVF del tejido adiposo, uno es la digestión enzimática y el otro es no enzimático9. Los métodos enzimáticos suelen dar lugar a un mayor rendimiento de células progenitoras nucleadas10. Hasta la fecha, los beneficios de la SVF en la promoción de la regeneración vascular y la neovascularización en la cicatrización de heridas, enfermedades urogenitales y cardiovasculares han sido ampliamente demostrados11, especialmente en dermatología y cirugía plástica12,13. Sin embargo, las perspectivas de aplicación clínica de la SVF derivada de PVAT no han sido bien exploradas, lo que puede atribuirse a la falta de un método estandarizado para el aislamiento de SVF de PVAT. El objetivo de este protocolo es establecer un enfoque estandarizado para el aislamiento, cultivo e inducción adipogénica de preadipocitos derivados de la FVSP a partir de la PVAT de ratón que rodea la aorta torácica, lo que permite una mayor investigación de la función de la PVAT. Este protocolo optimiza el procesamiento de tejidos y las técnicas de diferenciación celular para el cultivo de adipocitos periaórticos obtenidos de ratones jóvenes.

<table><tbody><tr><td>0.2 &mu; m filtros de jeringa</td><td>PALL</td><td>4612</td><td></td></tr><tr><td>placa de 12 pocillos&nbsp;</td><td>Labselect</td><td>11210</td><td></td></tr><tr><td>Tubo de centrífuga de 15 mL</td><td>Labserv</td><td>310109003</td><td></td></tr><tr><td>3,3',5-triyodo-L-tironina (T3)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T-2877</td><td>1 nM</td></tr><tr><td>50 mL tubo de centrífuga</td><td>Labselect</td><td>CT-002-50A</td><td></td></tr><tr><td>anti-adiponectina</td><td>Abcam</td><td>ab22554</td><td>1:1.000 concentración</td></tr><tr><td>de trabajo anti-COX IV</td><td>CST</td><td>4850</td><td>1:1.000 concentración</td></tr><tr><td>de trabajo anti-FABP4</td><td>CST</td><td>2120</td><td>1:1.000 concentración</td></tr><tr><td>de trabajo anti-PGC1 y alfa;</td><td>Abcam</td><td>ab191838</td><td>1:1.000 concentración de trabajo</td></tr><tr><td>anti-PPAR&gamma;</td><td>Invitrogen</td><td>MA5-14889</td><td>1:1.000 concentración de trabajo</td></tr><tr><td>anti-UCP1</td><td>Abcam</td><td>ab10983</td><td>1:1.000 concentración de trabajo</td></tr><tr><td>anti-&alpha;-Actinina</td><td>CST</td><td>6487</td><td>1:1.000 concentración de trabajo</td></tr><tr><td>BSA</td><td>Beyotime</td><td>ST023-200g</td><td>1%</td></tr><tr><td>C57BL/6 ratones de 4-8 semanas de ambos sexos</td><td>Shanghai Model Organisms Center, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Filtro de celdas 70 &micro; m, nylon</td><td>Falcon</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>Colágeno de piel de becerro</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C8919</td><td></td></tr><tr><td>Colagenasa, Tipo 1</td><td>Worthington</td><td>LS004196</td><td>1 mg/mL</td></tr><tr><td>Dexametasona</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D1756</td><td>1 &mu; </td></tr><tr><td>M Dispasa II</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D4693-1G</td><td>4 mg/mL</td></tr><tr><td>Suero fetal bovino&nbsp;</td><td>Gibco</td><td>16000-044</td><td>10%</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H4034-25G</td><td>20 mM</td></tr><tr><td>Hidroclona DMEM de alta glucosa</td><td></td><td>SH30022.01</td><td></td></tr><tr><td>IBMX&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I7018</td><td>Incubadora de 0,5 mM</td></tr><tr><td>con agitador orbital</td><td>Shanghai longyue Instrument Eruipment Co., Ltd.</td><td>LYZ-103B</td><td></td></tr><tr><td>Insulina (bovino)&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>11070-73-8</td><td>1 y mu; M</td></tr><tr><td>isoflurano</td><td>RWD</td><td>R510-22-10</td><td></td></tr><tr><td>Krebs-Ringer's Solution</td><td>Pricella&nbsp;</td><td>PB180347</td><td>proteger de la luz&nbsp;</td></tr><tr><td>pinza microquirúrgica</td><td>Beyotime</td><td>FS233</td><td></td></tr><tr><td>tijera microquirúrgica</td><td>Beyotime</td><td>FS217</td><td></td></tr><tr><td>Aceite Rojo O&nbsp;</td><td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd</td><td>A600395-0050</td><td></td></tr><tr><td>PBS (solución salina tamponada con fosfato)</td><td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd</td><td>B548117-0500</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina-estreptomicina</td><td>Gibco</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>Peroxidasa AffiniCabra pura Anti-Ratón IgG (H + L)</td><td>Jackson ImmunoResearch&nbsp;</td><td>115-035-146 concentración de</td><td>trabajo 1:5.000</td></tr><tr><td>Peroxidasa AffiniCabra Pura Anti-Conejo IgG (H + L)</td><td>Jackson ImmunoResearch&nbsp;</td><td>111-035-144</td><td>1:5.000 concentración de trabajo</td></tr><tr><td>Rosiglitazona</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>R2408</td><td>1 &mu; M</td></tr><tr><td>Pinza estándar</td><td>Beyotime</td><td>FS225</td><td></td></tr><tr><td>Tijera quirúrgica</td><td>Beyotime</td><td>FS001</td><td></td></tr></tbody></table>

aislamiento, cultivo e inducción adipogénica de preadipocitos derivados de la fracción vascular estromal a partir de tejido adiposo periaórtico de ratón

Isolation, Culture, and Adipogenic Induction of Stromal Vascular Fraction-derived Preadipocytes from Mouse Periaortic Adipose Tissue

El tejido adiposo perivascular (PVAT) es un depósito de tejido adiposo que rodea los vasos sanguíneos y exhibe los fenotipos de los adipocitos blancos, beige y marrones. Descubrimientos recientes han arrojado luz sobre el papel central de la PVAT en la regulación de la homeostasis vascular y en la participación en la patogénesis de las enfermedades cardiovasculares. Una comprensión integral de las propiedades y la regulación de PVAT es de gran importancia para el desarrollo de futuras terapias. Los cultivos primarios de adipocitos periaórticos son valiosos para estudiar la función de PVAT y la diafonía entre los adipocitos periaórticos y las células vasculares. En este trabajo se presenta un protocolo económico y factible para el aislamiento, cultivo e inducción adipogénica de preadipocitos derivados de la fracción vascular estromal a partir de tejido adiposo periaórtico de ratón, que puede ser útil para modelar la adipogénesis o lipogénesis in vitro. El protocolo describe el procesamiento de tejidos y la diferenciación celular para el cultivo de adipocitos periaórticos de ratones jóvenes. Este protocolo proporcionará la piedra angular tecnológica en el banco para la investigación de la función de PVAT.

Utilizando este protocolo descrito anteriormente, aislamos cuidadosamente las PVAT que rodean las aortas torácicas de ratón (Figura 1A-D). Después de lavar y picar los PVAT en trozos pequeños con unas tijeras estériles (Figura 1E, F), los fragmentos de tejido se digirieron en una solución de digestión que contenía colagenasa tipo 1 (1 mg/mL) y dispasa II (4 mg/mL) y se incubaron a 37 °C en un agitador durante 30...

En este trabajo se describe el aislamiento, cultivo e inducción adipogénica de preadipocitos derivados de la fracción vascular estromal a partir de tejido adiposo periaórtico de ratón, lo que permite estudiar la función del tejido adiposo perivascular y su relación con las células vasculares.

Aislamiento, cultivo e inducción adipogénica de preadipocitos derivados de la fracción vascular estromal a partir de tejido adiposo periaórtico de ratón

Perivascular adipose tissue (PVAT) is an adipose tissue depot that surrounds blood vessels and exhibits the phenotypes of white, beige, and brown ...

Nuestro objetivo es establecer un enfoque estandarizado para el cultivo de aislamiento y la inducción adipogénica de preadipocitos derivados de la fracción vascular estromal a partir de PVAT masivo. Este protocolo nos permite llevar a cabo más investigaciones sobre la función de PVAT y sobre la comunicación entre los adipocitos periaórticos y las células vasculares in vitro. Los principales retos a los que nos enfrentamos actualmente en nuestros experimentos incluyen la disponibilidad restringida de PVAT y los requisitos de recursos humanos y materiales adicionales en comparación con el uso de preadipocitos inmortalizados.Nuestro protocolo permite el estudio de la función del tejido adiposo perivascular y su relación con las células vasculares. También ofrecemos una base para estudiar el anillo y los genes de PVAT, y la heterogeneidad, y proporciona una plataforma para explorar el importante regulador de la diferenciación de PVAT y la adipogénesis in vitro.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Biology

Biología

Este video demuestra una técnica para aislar y cultivar células madre adiposas (ADSC) derivadas de la cresta neural marcadas con fluorescencia a partir de tejido adiposo del arco periaórtico murino. Tras el aislamiento, las NCADSC se detectan, se clasifican mediante la clasificación celular activada por fluorescencia y, posteriormente, se cultivan en una placa, lo que promueve la proliferación celular.

Aislamiento de células madre derivadas del tejido adiposo periaórtico murino

En 2001, investigadores de la UCLA describen el aislamiento de una población de células madre adultas, denominada células madre o las ASC derivadas de tejido adiposo, a partir de tejido adiposo. En este artículo se describe el aislamiento de las ASC de lipoaspirates utilizando un protocolo de digestión manual, enzimática utilizando colagenasa.

Aislamiento Manual de células madre derivadas de tejido adiposo de Lipoaspirates Humanos

Este protocolo describe el aislamiento de células madre derivadas del tejido adiposo de cerdo (pADSC) de tejidos adiposos subcutáneos con examen de multipotencia. Los pADSC multipotentes se utilizan para delinear procesos de diferenciación de adipocitos y estudiar la transdiferenciación en múltiples linajes celulares de mesénquima mesodérmico o linajes adicionales de ectodermo y endodermo para estudios regenerativos.

El aislamiento y la diferenciación de células madre derivadas de tejido adiposo subcutáneo de la especie porcina tejidos adiposos

Aquí se informa un método para el aislamiento de las poblaciones de células progenitoras de adipocitos (APC) de tejido adiposo perivascular (PVAT) utilizando clasificación de células activadas magnéticamente (MCS). Este método permite un mayor aislamiento de APC por gramo de tejido adiposo cuando se compara con la Clasificación de Células Activadas por Fluorescencia (FACS).

Expansión y Adipogénesis Inducción de Progenitores Adipocíticos de Tejido Adiposo Perivascular Aislado por Clasificación de Células Magnéticas Activadas

Presentamos un protocolo para el aislamiento, el cultivo y la inducción adipogénica de células madre derivadas de cresta neural derivadas de la cresta adiposa (NCADSC) del tejido adiposorio periaortico de Wnt-1 Cre+/-; Ratones Rosa26RFP/+. Los NCADSC pueden ser una fuente de aXenatos de fácil acceso para modelar adipogénesis o lipogénesis in vitro.

Aislamiento, cultivo e inducción adipogénica de células madre originales adiposas de raíz de la cresta neuronal del tejido adiposorio

Este protocolo describe el enfoque técnico para aislar subpoblaciones de células estromales adipogénicas y fibroinflamatorias de depósitos murinos de tejido adiposo blanco intraabdominal (WAT) mediante clasificación celular activada por fluorescencia o separación inmunomagnética de perlas.

Aislamiento de subpoblaciones de células estromales adipogénicas y fibroinflamatorias de depósitos adiposos intraabdominales murinos

Este protocolo describe el aislamiento semiautomático de la fracción vascular estromal (SVF) del tejido adiposo murino para obtener preadipocitos y lograr la diferenciación de los adipocitos in vitro. El uso de un disociador de tejidos para la digestión de la colagenasa reduce la variación experimental y aumenta la reproducibilidad.

Aislamiento semiautomático de la fracción vascular estromal del tejido adiposo blanco murino utilizando un disociador tisular

El tamaño y la fragilidad de los adipocitos maduros han limitado las técnicas y herramientas disponibles para su estudio y aislamiento. En este trabajo se describe un protocolo para el aislamiento de adipocitos murinos maduros, que puede adaptarse fácilmente a diferentes depósitos de adiposo y dietas de ratones.

Aislamiento y cultivo de adipocitos murinos primarios de ratones delgados y obesos

Aquí presentamos un método estándar para aislar de forma eficiente células madre y adipocitos derivados del adiposo, caracterizado por una reducción del &gt; del 90% en el tiempo de procesamiento, alta viabilidad celular y amplia compatibilidad.

Aislamiento eficiente de células madre y adipocitos derivados del adiposo a partir de tejido adiposo porcino

Preadipocitos primarios blancas aisladas de tejidos adiposos blancos en ratones se pueden diferenciar en células beige / brite. Se presenta aquí un sistema fiable modelo celular para estudiar la regulación molecular de "color" de la grasa blanca.

Aislamiento y diferenciación de las células del estroma vascular a células Beige / Brite

Aprende a aislar, cultivar e inducir adipogénesis en preadipocitos derivados de la fracción vascular estromal del tejido adiposo periaórtico de ratón. Este protocolo permite estudiar la función del PVAT y sus interacciones con células vasculares in vitro.

Aislamiento, cultivo e inducción adipogénica de preadipocitos derivados de la fracción vascular estromal a partir de tejido adiposo periaórtico de ratón (Video) | JoVE Journal

Aislamiento, cultivo e inducción adipogénica de preadipocitos derivados de la fracción vascular estromal a partir de tejido adiposo periaórtico de ratón

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