January 19th, 2024
Este protocolo describe un procedimiento para la impresión tridimensional (3D) de colonias bacterianas para estudiar su motilidad y crecimiento en matrices complejas de hidrogel poroso en 3D que son más parecidas a sus hábitats naturales que los cultivos líquidos convencionales o las placas de Petri.
Las bacterias son ubicuas en entornos complejos, tridimensionales y porosos, como los tejidos y geles biológicos, y los suelos y sedimentos del subsuelo. Aquí desarrollamos un método para imprimir en 3D densas colonias de bacterias en matrices de hidrogel granular atascadas para estudiar su crecimiento y motilidad en entornos complejos. Los estudios han revelado diferencias previamente desconocidas en las características de propagación de las bacterias que habitan en ambientes porosos en comparación con las de los cultivos líquidos en superficies planas.
El desarrollo del uso de matrices de hidrogel granulares compuestas por partículas de hidrogel biocompatibles atascadas hinchadas en cultivo bacteriano líquido como placas de Petri porosas para confinar células en 3D. Los estudios anteriores se limitaron a pequeños volúmenes de muestra de aproximadamente un ml y, por lo tanto, a escalas de tiempo experimentales cortas, y también estaban limitados en su capacidad para definir geometrías de inóculos con alta resolución espacial. Hemos establecido que las características de propagación celular de las bacterias dependen del tamaño de los poros y de la motilidad de la célula.
Este protocolo describe un método para la impresión 3D de colonias bacterianas dentro de matrices de hidrogel poroso para investigar su motilidad y crecimiento en entornos que imitan los hábitats naturales. El estudio destaca las diferencias en el comportamiento bacteriano en entornos 3D complejos en comparación con los cultivos líquidos tradicionales.
Understanding bacterial motility and growth in physiologically relevant 3D porous environments is critical for translational microbiology and infection modeling. This 3D printing protocol enables precise spatial confinement and visualization of bacterial colonies in tunable hydrogel matrices, supporting predictive confidence in early discovery and mechanistic de-risking. The approach addresses a key gap in modeling complex tissue-like microenvironments for biopharma R&D pipelines.
This method bridges early discovery and preclinical research by enabling hypothesis testing in 3D environments that mimic in vivo conditions.