Name: Electromiografía de fibra única estimulada (SFEMG) para evaluar la transmisión de la unión neuromuscular en modelos de roedores (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-03-08T14:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 30 s
Description: Aprende electromiografía de fibra única estimulada para evaluar la transmisión de la unión neuromuscular en modelos de roedores. Este protocolo permite cuantificar jitter y bloqueo potencial en el músculo gastrocnemio de ratas.

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Todos los protocolos fueron aprobados y realizados de acuerdo con las regulaciones establecidas por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de Missouri.
1. Preparación animal y administración de anestesia
<ol><li>Póngase el equipo de protección personal adecuado.</li>
	<li>Antes del procedimiento, mida el peso de la rata para determinar la dosis adecuada para los medicamentos basados en el peso y la configuración del ventilador.</li>
	<li>Inducir la anestesia con isoflurano inhalado al 3%-5%. Una vez que se haya establecido un nivel adecuado de anestesia, coloque a la rata en posición prona y mantenga la anestesia con isoflurano inhalado al 1%-3%.</li>
	<li>Verifique la adecuación de la profundidad de la anestesia presionando suavemente la almohadilla del pie de la extremidad posterior con pinzas para observar la ausencia de una respuesta de retirada.</li>
	<li>Mantener la temperatura corporal a 37 °C.</li>
	<li>Aplique un ungüento a base de petróleo aprobado por un veterinario en los ojos para prevenir la sequedad. Controle la profundidad de la anestesia observando la frecuencia respiratoria y evaluando las respuestas de retirada al aplicar presión sobre la almohadilla para los pies con fórceps.</li>
	<li>Afeitar la extremidad trasera para ser evaluada con una maquinilla. Después de una depilación adecuada, con cinta adhesiva, coloque la extremidad a estudiar con el tobillo fijo a aproximadamente 90° de dorsiflexión, la rodilla en extensión y la cadera en abducción.</li>
	<li>Monitorea continuamente la respiración y la frecuencia cardíaca de la rata durante todo el experimento. NOTA: Un aumento en la frecuencia cardíaca se usa comúnmente como un indicador de una profundidad anestésica inadecuada.</li>
	<li>Administre isoflurano para eutanasiar a la rata, con una dosis de 5% o más, hasta que la respiración haya cesado durante al menos 3 minutos. Confirmar la eutanasia por decapitación.</li>
</ol>2. Colocación y configuración de electrodos
NOTA: La transmisión de la NMJ del nervio ciático y el músculo gastrocnemio se evalúa mediante el sistema de electromiografía (EMG). Consulte la tabla de materiales.
<ol><li>Inserte un par de agujas monopolares aisladas de 28 G para estimular el nervio ciático con el cátodo en la región de la extremidad posterior proximal, mientras que el ánodo está más proximalmente dentro del tejido subcutáneo que recubre el sacro.</li>
	<li>Asegúrese de que los electrodos estimulantes no estén colocados en proximidad inmediata del nervio ciático o excesivamente profundos para evitar daños directos al nervio ciático u otras estructuras adyacentes.</li>
	<li>Coloque un electrodo de tierra desechable en la extremidad posterior contralateral o en la cola.</li>
	<li>Coloque con cuidado un electrodo de aguja de 25 mm de calibre 27 diseñado específicamente para EMG de una sola fibra, con una superficie de grabación hecha de material de platino-iridio en el músculo gastrocnemio derecho. Asegúrese de que los electrodos SFEMG se corten en autoclave antes de cada uso para mantener la esterilidad.</li>
	<li>Inserte el electrodo de aguja SFEMG en paralelo con las fibras musculares gastrocnemias para capturar los potenciales de acción de una sola fibra (SFAP).</li>
	<li>Evite el daño muscular mientras inserta y maniobra la aguja SFEMG dentro del músculo.</li>
</ol>3. Procedimiento de electromiografía de fibra única estimulada (SFEMG)
<ol><li>Aplique estimulación de corriente constante al nervio ciático derecho a una frecuencia de 10 Hz utilizando un rango de intensidad de 0,3-10 mA y una duración de pulso de 0,1 ms.</li>
	<li>Configure los ajustes del filtro dentro de un filtro de baja frecuencia de 1 kHz y un filtro de alta frecuencia de 10 kHz. Ajuste la ganancia de 200 μV a 1000 μV por división para facilitar la visualización de los potenciales. Establezca la velocidad de barrido en 500 μs por división.</li>
	<li>Ajuste la intensidad del estímulo para activar y aislar los SFAP para su registro y posterior análisis.<ol><li>Para identificar y analizar una respuesta como SFAP, asegúrese de que se cumplan los criterios específicos que se mencionan a continuación: Asegúrese de que el tiempo de aumento desde el pico de referencia hasta la fase negativa sea inferior a 500 μs, que la amplitud mínima (pico de referencia a negativo) sea de al menos 200 μV y que la respuesta exhiba sistemáticamente un comportamiento de todo o nada (tamaño y forma estables entre las respuestas). NOTA: Es esencial que las respuestas recurrentes exhiban fases ascendentes consistentes sin muescas ni puntos de inflexión. Tenga en cuenta que el último criterio es crucial para distinguir una señal de calidad de la suma de múltiples señales.</li>
	</ol></li>
	<li>Calcular la fluctuación de fase o la variabilidad de la latencia de la SFAP (tiempo entre la estimulación y la fase ascendente del pico negativo de la SFAP) entre descargas consecutivas, después de al menos 50 estimulaciones (50-100 estimulaciones), y evaluar y cuantificar el bloqueo. NOTA: El bloqueo puede evaluarse como la presencia o ausencia en cada sinapsis o como el porcentaje de estimulaciones que no logran desencadenar la generación de potencial de acción de una sola fibra. La fluctuación de fase se calcula utilizando la siguiente ecuación7 (la fluctuación de fase suele calcularse automáticamente mediante los sistemas de electromiografía clínica): <img alt="Diagrama de fórmula de fluctuación de MCD; Método para calcular la fluctuación de fase en microsegundos utilizando intervalos entre pulsos." src="/files/ftp_upload/66452/66452eq01.jpg" style="margin: auto;" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Equation 1"> MCD = Valor medio de la diferencia consecutiva IPI = Intervalo Interpotencial</li>
	<li>Repita el proceso para obtener respuestas SFAP adicionales. En promedio, evalúe 10 sinapsis de cada animal para calcular el jitter y posteriormente determine los valores promedio por animal.</li>
	<li>Excluir de los análisis los SFAP con fluctuación de fase inferior a 4 μs para evitar la inclusión de potenciales que podrían haber sido evocados por la estimulación muscular directa11.</li>
	<li>Al registrar potenciales que muestran bloqueo intermitente, aumente la intensidad del estímulo para verificar que el fracaso del SFAP no sea atribuible a la estimulación submáxima.</li>
</ol>

<meta charset="utf8"></head><body>SFEMG en roedores: evaluación de la función de NMJ en la salud y la enfermedad

<ol><li>Stalberg, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Propagation+velocity+in+human+muscle+fibers+in+situ%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiol+Scand+Suppl%22%5BJournal%5D)">Propagation velocity in human muscle fibers in situ.</a> Acta Physiol Scand Suppl. 287, 1-112 (1966).</li>
<li>Stålberg, E., Trontelj, J. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+study+of+normal+and+abnormal+neuromuscular+transmission+with+single+fibre+electromyography%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">The study of normal and abnormal neuromuscular transmission with single fibre electromyography.</a> J Neurosci Methods. 74 (2), 145-154 (1997).</li>
<li>Sanders, D. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+for+single+fiber+EMG%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Guidelines for single fiber EMG.</a> Clin Neurophysiol. 130 (8), 1417-1439 (2019).</li>
<li>Chugh, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuromuscular+junction+transmission+failure+is+a+late+phenotype+in+aging+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Aging%22%5BJournal%5D)">Neuromuscular junction transmission failure is a late phenotype in aging mice.</a> Neurobiol Aging. 86, 182-190 (2020).</li>
<li>Padilla, C. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Profiling+age-related+muscle+weakness+and+wasting%3A+Neuromuscular+junction+transmission+as+a+driver+of+age-related+physical+decline%5BTitle%5D)+AND+%22GeroScience%22%5BJournal%5D)">Profiling age-related muscle weakness and wasting: Neuromuscular junction transmission as a driver of age-related physical decline.</a> GeroScience. 43 (3), 1265-1281 (2021).</li>
<li>Selvan, V. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-fiber+EMG%3A+A+review%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Indian+Acad+Neurol%22%5BJournal%5D)">Single-fiber EMG: A review.</a> Ann Indian Acad Neurol. 14 (1), 64-67 (2011).</li>
<li>Sanders, D. B., Kouyoumdjian, J. A., Stålberg, E. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+fiber+electromyography+and+measuring+jitter+with+concentric+needle+electrodes%5BTitle%5D)+AND+%22Muscle+Nerve%22%5BJournal%5D)">Single fiber electromyography and measuring jitter with concentric needle electrodes.</a> Muscle Nerve. 66 (2), 118-130 (2022).</li>
<li>Juel, V. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+fiber+electromyography%5BTitle%5D)+AND+%22Handb+Clin+Neurol%22%5BJournal%5D)">Single fiber electromyography.</a> Handb Clin Neurol. 160, 303-310 (2019).</li>
<li>Chung, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+for+dying-back+axonal+degeneration+in+age-associated+skeletal+muscle+decline%5BTitle%5D)+AND+%22Muscle+Nerve%22%5BJournal%5D)">Evidence for dying-back axonal degeneration in age-associated skeletal muscle decline.</a> Muscle Nerve. 55 (6), 894-901 (2017).</li>
<li>Iyer, C. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Follistatin-induced+muscle+hypertrophy+in+aged+mice+improves+neuromuscular+junction+innervation+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Aging%22%5BJournal%5D)">Follistatin-induced muscle hypertrophy in aged mice improves neuromuscular junction innervation and function.</a> Neurobiol Aging. 104, 32-41 (2021).</li>
<li>Meekins, G. D., Carter, G. T., Emery, M. J., Weiss, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axonal+degeneration+in+the+trembler-j+mouse+demonstrated+by+stimulated+single-fiber+electromyography%5BTitle%5D)+AND+%22Muscle+Nerve%22%5BJournal%5D)">Axonal degeneration in the trembler-j mouse demonstrated by stimulated single-fiber electromyography.</a> Muscle Nerve. 36 (1), 81-86 (2007).</li>
<li>Gooch, C. L., Mosier, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimulated+single+fiber+electromyography+in+the+mouse%3A+Techniques+and+normative+data%5BTitle%5D)+AND+%22Muscle+Nerve%22%5BJournal%5D)">Stimulated single fiber electromyography in the mouse: Techniques and normative data.</a> Muscle Nerve. 24 (7), 941-945 (2001).</li>
<li>Chung, T., Tian, Y., Walston, J., Hoke, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+single-fiber+jitter+level+is+associated+with+reduction+in+motor+function+with+aging%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Phys+Med+Rehabil%22%5BJournal%5D)">Increased single-fiber jitter level is associated with reduction in motor function with aging.</a> Am J Phys Med Rehabil. 97 (8), 551-556 (2018).</li>
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<li>Padua, L., Caliandro, P., Stålberg, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+approach+to+the+measurement+of+motor+conduction+velocity+using+a+single+fibre+emg+electrode%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">A novel approach to the measurement of motor conduction velocity using a single fibre emg electrode.</a> Clin Neurophysiol. 118 (9), 1985-1990 (2007).</li>
<li>Khoo, A., Hay Mar, H., Borghi, M. V., Catania, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrophysiologic+evaluation+of+myasthenia+gravis+and+its+mimics%3A+Real-world+experience+with+single-fiber+electromyography%5BTitle%5D)+AND+%22Hosp+Pract%22%5BJournal%5D)">Electrophysiologic evaluation of myasthenia gravis and its mimics: Real-world experience with single-fiber electromyography.</a> Hosp Pract. 50 (5), 373-378 (2022).</li>
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<li>Alley, D. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Grip+strength+cutpoints+for+the+identification+of+clinically+relevant+weakness%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gerontol+A+Biol+Sci+Med+Sci%22%5BJournal%5D)">Grip strength cutpoints for the identification of clinically relevant weakness.</a> J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 69 (5), 559-566 (2014).</li>
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<li>Kokubun, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reference+values+for+concentric+needle+single+fiber+EMG%5BTitle%5D)+AND+%22Rinsho+Shinkeigaku%22%5BJournal%5D)">Reference values for concentric needle single fiber EMG.</a> Rinsho Shinkeigaku. 52 (11), 1246-1248 (2012).</li>
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<li>Stålberg, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reference+values+for+jitter+recorded+by+concentric+needle+electrodes+in+healthy+controls%3A+A+multicenter+study%5BTitle%5D)+AND+%22Muscle+Nerve%22%5BJournal%5D)">Reference values for jitter recorded by concentric needle electrodes in healthy controls: A multicenter study.</a> Muscle Nerve. 53 (3), 351-362 (2016).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>&nbsp; Electrodo de aguja de fibra única reutilizable de 27 g</td><td>Technomed</td><td>202860-000</td><td>electrodo de registro de fibra única</td></tr><tr><td>Jeringa de vidrio de 2 mL</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SOMNO-2ML</td><td></td></tr><tr><td>Cable desmontable</td><td>Technomed</td><td>202845-0000</td><td>para conectar el electrodo registrador a la máquina de electrodiagnóstico</td></tr><tr><td>Electrodo de disco desechable de 2" x 2" con cables</td><td>Cadwell</td><td>302290-000</td><td>electrodo de tierra</td></tr><tr><td>agujas monopolares desechables 28 G</td><td>Technomed</td><td>202270-000</td><td>electrodos estimulantes de cátodo y ánodo</td></tr><tr><td>Cable de aguja EMG (caja de interruptores Amp/stim)</td><td>Cadwell</td><td>190266-200</td><td>para conectar electrodos monopolares a un estimulador electrodiagnóstico</td></tr><tr><td>Helping Hands pinza de cocodrilo con base de hierro</td><td>Radio Shack</td><td>64-079 Mantenimiento de</td><td>la colocación de electrodos de registro&nbsp;</td></tr><tr><td>Isoflurano (frasco de 250 ml)</td><td>Piramal Healthcare</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>jeringa irrigadora monoyecto de punta curva</td><td>Covidien</td><td>81412012</td><td>utiliza para la aplicación de gel de electrodos Sistema de</td></tr><tr><td>monitoreo fisiológico PhysioSuite con calentamiento homeotérmico RightTemp</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>PS-RT</td><td>Incluye almohadilla de calentamiento infrarrojo, sonda rectal y sonda de temperatura de la almohadilla</td></tr><tr><td>Recortadora Pro Pet Kit de aseo</td><td>Oster</td><td>078577-010-003</td><td>cortapelos para depilación</td></tr><tr><td>Tubos endotraqueales para ratas (16 g)</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bromuro de rocoronio</td><td>Sigma</td><td>PHR2397-500MG</td><td>agente bloqueador neuromuscular</td></tr><tr><td>Sierra Summit Sistema EMG</td><td>Cadwell Industries, Inc., Kennewick, WA</td><td>NA</td><td>sistema de electrodiagnóstico portátil</td></tr><tr><td>SomnoSuite Low-Flow Sistema de anestesia digital</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SOMNO</td><td>Incluye adaptador antiderrame y antivapor para la parte superior de la botella; Tubo adaptador en Y; filtro de limpieza de carbón</td></tr><tr><td>vegetal ungüento oftálmico veterinario a base de petróleo&nbsp;</td><td>Puralube</td><td>26870</td><td>aplicado durante la anestesia para evitar lesiones en la córnea</td></tr></tbody></table>

electromiografía de fibra única estimulada (sfemg) para evaluar la transmisión de la unión neuromuscular en modelos de roedores

Stimulated Single Fiber Electromyography (SFEMG) for Assessing Neuromuscular Junction Transmission in Rodent Models

Para demostrar el aumento de la fluctuación de fase y el bloqueo en el contexto de la falla de la transmisión de NMJ, se realizó SFEMG estimulado con y sin administración intravenosa de rocuronio. El rocuronio es un agente bloqueante neuromuscular no despolarizante de acción intermedia ampliamente utilizado en entornos clínicos para inducir parálisis muscular durante cirugías o procedimientos médicos. Opera uniéndose competitivamente a los receptores nicotínicos de acetilcolina en el NMJ19. Antes de la administración de rocuronio, la rata adulta de tipo salvaje (Sprague Dawley) fue preparada y anestesiada como se describe en la sección 1. Debido a la parálisis inducida por rocuronio, se utilizó soporte ventilatorio invasivo para obtener datos representativos (en contraste con el abordaje típico para la anestesia durante los registros de SFEMG descrito anteriormente en la sección 1). Se colocó un tubo endotraqueal y se mantuvo la ventilación a 60 respiraciones/min utilizando un modo controlado por presión con una presión de 17 mmHg y una presión positiva al final de la espiración de 3 cm H2O mientras se administraba isoflurano al 2%-3%. Una vez logrado el soporte ventilatorio y la anestesia, se registraron los potenciales de acción de una sola fibra con y sin tratamiento con rocuronio (bolo de bromuro de rocuronio de 0,05 mg/kg por vía intravenosa). La Figura 1 muestra tres registros representativos del potencial de acción de una sola fibra del mismo NMJ en una rata adulta. La Figura 1A muestra la morfología típica de un potencial de acción de una sola fibra (después de una sola estimulación) con un tiempo de aumento de menos de 500 μs desde la línea de base hasta el pico negativo y una amplitud mínima (pico a pico) de al menos 200 μV. La Figura 1B muestra características de aumento de la fluctuación de fase y bloqueo intermitente después de la inyección de rocuronio. La Figura 1C muestra la normalización de la fluctuación y el bloqueo de la misma sinapsis después de la resolución del bloque NMJ. Para simplificar la visualización, la Figura 1B,C solo muestra las respuestas después de 9 estimulaciones consecutivas. Además, para una mejor comprensión, la Figura 2 muestra un ejemplo adicional de tres potenciales de acción superpuestos de una sola fibra observados después de 10 estimulaciones consecutivas, lo que revela un aumento de la fluctuación y el bloqueo.
Para cuantificar el impacto del rocuronio en la transmisión de NMJ utilizando SFEMG estimulado, se realizaron registros de 5 NMJ sin ningún tratamiento y de 5 NMJ después de la administración de rocuronio y se analizaron para determinar la fluctuación de fase y el bloqueo (Figura 3). Después del rocuronio, la fluctuación de fase (Figura 3A) y el bloqueo (Figura 3B) aumentaron significativamente.
<img alt="Gráficos de potencial de acción de fibra única que muestran tendencias de latencia y amplitud; Resultados del análisis de fluctuación." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66452/66452fig01.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 1"> Figura 1: Tres registros representativos de electromiografía de una sola fibra de la misma unión neuromuscular (NMJ). (A) Ejemplo de un potencial de acción de una sola fibra después de una sola estimulación nerviosa que muestra los criterios de amplitud (línea de base a amplitud de pico negativo de al menos 200 μV) y tiempo de aumento (línea de base a pico negativo menos de 500 μs) criterios para la aceptación como potencial de fibra única. (B) Ejemplo de potenciales de acción de una sola fibra superpuestos después de 9 estimulaciones consecutivas que muestran un aumento de la fluctuación y el bloqueo que indica una transmisión alterada de NMJ después de la administración de rocuronio (fluctuación: 68,35 μs). (C) Ejemplo de potenciales de acción de una sola fibra superpuestos después de 9 estimulaciones consecutivas que muestran fluctuación reducida y sin bloqueo, lo que indica una normalización de la transmisión de NMJ después de la resolución del tratamiento con rocuronio (fluctuación: 21,7 μs). Las trazas representativas de SFEMG revelan potenciales de acción de fibras musculares individuales registradas a partir de una sinapsis sana sin bloqueo y con fluctuación normal en la vista superpuesta. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66452/66452fig01large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Gráfico de amplitud de potencial de acción de fibra única; latencia vs amplitud; evento de estimulación bloqueado." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66452/66452fig02.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 2"> Figura 2: Tres potenciales de acción de fibra única (SFAP) superpuestos registrados después de estimulaciones consecutivas durante la administración de rocuronio. Se registraron tres potenciales de acción de una sola fibra (SFAP) superpuestos después de 10 estimulaciones consecutivas durante la administración de rocuronio, lo que indica un aumento de la fluctuación y el bloqueo. Los valores de fluctuación de fase para A, B y C fueron de 24,3 μs, 46,9 μs y 88,7 μs, respectivamente. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66452/66452fig02large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Gráficos de barras de bloqueo de transmisión y fluctuación de NMJ; retraso medio, porcentaje de estimulación; datos de investigación." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66452/66452fig03.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 3"> Figura 3: Evaluación electromiográfica de fibra única de la transmisión de la unión neuromuscular (NMJ) después del tratamiento con un agente bloqueante de NMJ no despolarizante. (A) Durante la administración de rocuronio (0,05 mg/kg), SFEMG mostró una mayor variabilidad de la transmisión (fluctuación) en comparación con la condición saludable (sin tratar: 12,9 μs, IC del 95% [7,2-16,9 μs] frente al rocuronio: 40,70 μs, IC del 95% [34,7-70,7 μs]) (prueba de Mann Whitney: p = 0,0079). (B) El porcentaje de estimulaciones con bloqueo de la NMJ de cada sinapsis en SFEMG aumentó en comparación con el estado sano (sin tratar: 0%, IC del 95% [0-0%] frente al rocuronio: 31%, IC del 95% [14,0-59,0%]) (prueba de Mann Whitney: p = 0,0079). Todas las mediciones (fluctuación de fase y porcentajes de estimulaciones con bloqueo de NMJ) se obtuvieron de una sola rata, n = 5 sinapsis no tratadas y n = 5 sinapsis después del tratamiento con rocuronio. Los datos se muestran como mediana ± intervalo de confianza del 95%. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66452/66452fig03large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>

Electromiografía de fibra única estimulada (SFEMG) para evaluar la transmisión de la unión neuromuscular en modelos de roedores

As the final connection between the nervous system and muscle, transmission at the neuromuscular junction (NMJ) is crucial for normal motor function. ...

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