October 4th, 2024
Aquí, describimos un método integral para medir la fosforilación oxidativa mitocondrial en fibras de músculo esquelético permeabilizadas frescas a partir de músculo humano o de ratón. Este método permite la cuantificación en tiempo real de la respiración mitocondrial y la evaluación de la preferencia de combustible y la flexibilidad metabólica, al tiempo que preserva las redes mitocondriales existentes y la integridad de la membrana.
Nuestra investigación se centra en la intersección del metabolismo y las respuestas al estrés en las enfermedades metabólicas, un tema importante del programa NORD de la Universidad de Washington. A través de las sinergias entre nuestros núcleos NORD, somos capaces de abordar cuestiones complejas sobre el metabolismo nutricional y las enfermedades a través de un enfoque interdisciplinario y colaborativo. Los ensayos tradicionales de respiración mitocondrial examinaron mitocondrias aisladas.
El aislamiento de las mitocondrias lleva mucho tiempo y puede comprometer la integridad de la membrana mitocondrial externa. Además, las mitocondrias no funcionan solas, sino que forman parte de una red dinámica de adaptación metabólica celular. Nuestro protocolo mantiene esta red para proporcionar una evaluación fisiológicamente relevante de la función mitocondrial.
Nuestro enfoque se ha extendido a la identificación de reguladores de la adaptación metabólica que son importantes en la salud y la enfermedad. Las preguntas clave que nos hacemos incluyen: ¿son estos reguladores, como la proteasa del sitio-1, igualmente importantes en diferentes tipos de tejidos? ¿Y cuál es su significado fisiológico?
Este estudio presenta un protocolo integral para medir la fosforilación oxidativa mitocondrial en fibras musculares esqueléticas permeabilizadas frescas de modelos humanos o de ratón. El método permite la cuantificación en tiempo real de la respiración mitocondrial, la preferencia de combustible y la flexibilidad metabólica, al tiempo que preserva las redes mitocondriales y la integridad de la membrana.
High-resolution respirometry in permeabilized skeletal muscle fibers enables precise, physiologically relevant measurement of mitochondrial oxidative phosphorylation, a critical determinant of cellular energy metabolism. This approach supports early discovery and target validation for metabolic disease portfolios by providing robust, quantitative insights into mitochondrial function and metabolic flexibility. Integrating these measurements enhances predictive confidence at key inflection points in metabolic and muscle health R&D pipelines.
This high-resolution respirometry protocol bridges early discovery, lead identification, and preclinical research by enabling robust mitochondrial function assessment in both human and mouse muscle fibers.