5 de julio de 2024
Aquí, se presenta un protocolo para analizar las enzimas metabolizadoras de ácidos nucleicos, utilizando ejemplos de enzimas ligasa, nucleasa y polimerasa. El ensayo utiliza oligonucleótidos marcados con fluorescencia y sin marcar que pueden combinarse para formar dúplex que imitan el ARN y/o los daños en el ADN o los intermediarios de la vía, lo que permite la caracterización del comportamiento de las enzimas.
Así que mi grupo de investigación está realmente interesado en las enzimas involucradas en la replicación y reparación del ADN. En particular, estamos estudiando enzimas de microorganismos extremófilos y también de patógenos porque queremos entender cómo estas enzimas permiten que esos organismos sobrevivan a los desafíos ambientales. Estamos interesados tanto en la función biológica de las enzimas como en las aplicaciones biotecnológicas.
Así que trabajamos mucho con ligasas de ADN y ARN, y recientemente hemos establecido el papel de un tipo mínimo de ADN ligasa que parece ser traficada hacia el exterior de la célula bacteriana. Y hemos determinado que esto desempeña un papel en la formación de biopelículas en el patógeno Neisseria gonorrhoeae. También, junto con nuestros colaboradores de ArcticZymes, hemos caracterizado una nueva ligasa de ARN a ADN que es capaz de unir adaptadores de ADN a cualquiera de los extremos de un fragmento de ARN.
Por lo tanto, nuestros colaboradores de ArcticZymes, que también han contribuido a este protocolo, están caracterizando diferentes enzimas metabolizadoras de ADN y ARN que tienen aplicaciones potenciales en biología molecular. Por lo tanto, están utilizando este tipo de protocolo como un primer paso para comprender el espectro de actividades que tienen estas enzimas y compararlas en relación con lo que ya está disponible en el mercado. El protocolo ofrece una alternativa más fácil y segura para analizar las enzimas metabolizadoras de ácidos nucleicos en comparación con el uso de sustratos radiomarcados.
Los sustratos de ADN o ARN marcados con fluorescencia hacen que nuestro enfoque sea más eficiente, ya que podemos mezclar y combinar los oligonucleótidos para crear una variedad de sustratos. Así que, en este momento, estamos realmente centrados en comprender la función biológica de algunas nucleasas nuevas que hemos descubierto en un genoma ambiental antártico. Estas nucleasas tienen homólogos en otros organismos extremófilos, por lo que estamos tratando de comprender qué papel desempeñan para permitir que estos microbios sobrevivan.
También estamos muy interesados en la actividad de algunas de nuestras nuevas enzimas en análogos de ácidos nucleicos no naturales y sus posibles usos como parte de un conjunto de herramientas de biología molecular con sustratos de ADN y ARN no naturales.
Este artículo presenta un protocolo para ensayar enzimas que metabolizan ácidos nucleicos, centrándose en enzimas ligasa, nucleasa y polimerasa. El ensayo emplea oligonucleótidos marcados y no marcados con fluorescencia para crear dúplex que imitan daños en el ARN y el ADN, facilitando la caracterización del comportamiento enzimático.
Ensayos con oligonucleótidos sintéticos modificados permiten la caracterización rápida y no radiactiva de enzimas que metabolizan ácidos nucleicos, apoyando la validación temprana de dianas y la reducción de riesgos mecanicistas en la I+D de biofármacos&D. La marcación fluorescente y la personalización de sustratos facilitan la evaluación cuantitativa de alta capacidad sobre la especificidad enzimática, la preferencia de cofactores y la compatibilidad de sustratos. Estas capacidades agilizan la evaluación de ligasas, nucleasas y polimerasas novedosas, acelerando la selección de carteras y reduciendo la incertidumbre biológica en las líneas de descubrimiento.
Estos ensayos basados en oligonucleótidos sitúan la caracterización enzimática en la interfaz entre el descubrimiento inicial, la identificación de compuestos activos y la investigación preclínica, apoyando la comprobación iterativa de hipótesis y la validación mecanicista.