-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

ES

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

Spanish

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Técnica de ventana craneal crónica para registros corticales repetidos durante la anestesia en ce...
Técnica de ventana craneal crónica para registros corticales repetidos durante la anestesia en ce...
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Chronic Cranial Window Technique for Repeated Cortical Recordings During Anesthesia in Pigs

Técnica de ventana craneal crónica para registros corticales repetidos durante la anestesia en cerdos

Full Text
443 Views
07:19 min
June 6, 2025

DOI: 10.3791/67931-v

Suzan Meijs1, Felipe R. Andreis1, Benedict Kjærgaard2, Taha A. M. Janjua1, Winnie Jensen1

1Center for Neuroplasticity and Pain, Department of health, science and technology,Aalborg University, 2Department of Cardiovascular Surgery, Department of Clinical Medicine,Aalborg University Hospital

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a scalable and reliable method for chronic cortical recordings in a porcine model, addressing the challenges of device failure and tissue response. The technique is particularly relevant for pain research and diagnostics in neurological diseases.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Electrophysiology
  • Pain research

Background

  • Chronic cortical recordings are crucial for understanding brain dynamics.
  • Traditional techniques often face complications from device failure and tissue reactions.
  • Stable interfaces between electrodes and brain tissue are essential for high-fidelity recordings.
  • Electrocorticography and intracranial recordings are commonly used but problematic over time.

Purpose of Study

  • To develop a method that improves recording fidelity and reduces device-related risks.
  • To ensure consistent neural signals over extended periods of recording.
  • To enhance animal welfare while conducting neuroscience research.

Methods Used

  • Detailed surgical procedures were performed to create a cranial window for electrode positioning.
  • The model used was a porcine brain, allowing extensive and repetitive recordings.
  • No multiomics analyses were reported in the study.
  • Critical steps included proper electrode placement and ensuring stable neural interfaces.
  • Electrical stimulation techniques were applied to examine evoked brain responses.

Main Results

  • The method demonstrated high reproducibility with stable peak amplitudes across recording sessions.
  • Event-related potentials showed consistent waveforms, indicating reliable signal quality.
  • High-frequency stimulation enhanced specific neuroplastic changes related to pain sensitivity.
  • The study concluded that this method diminishes risks from permanent implants and device failures.

Conclusions

  • This research validates an effective approach for chronic brain recordings in large animal models.
  • The findings enable more dependable data acquisition in neuroscience related to pain and disease models.
  • The implications suggest improvements in both research methodology and animal welfare standards.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using a porcine model for chronic recordings?
Pigs share anatomical and physiological similarities with humans, making them an ideal model for studying brain functions related to pain and neurological disorders.
How is the cranial window technique implemented?
The technique involves precise surgical steps, including drilling a hole for a cranial window, which allows electrodes to access the brain while minimizing tissue damage.
What types of data can be obtained from this method?
Data obtained includes electrical signals representing neural activity, specifically examining event-related potentials that reflect brain responses to stimuli.
How can this method be adapted for different studies?
The technique could be modified to study other brain regions or species by adjusting surgical approaches and electrode placement strategies.
What are the limitations of this approach?
While providing reliable data, the procedures require expert surgical skills, and the potential for tissue response still exists, which may affect long-term recording quality.
What improvements does this method offer over traditional techniques?
It reduces risks of device failure and enhances signal integrity, thus enabling more consistent and high-quality recordings across multiple sessions.
What implications does this research have for future neuroscience studies?
The findings offer a pathway to improve data collection methods in pain research and diagnostics, potentially leading to better therapeutic strategies for neurological conditions.

Este estudio presenta un método escalable, confiable y reproducible para registros corticales crónicos repetidos en un modelo porcino. El método tiene aplicaciones en varios campos de la neurociencia, incluida la investigación del dolor y el diagnóstico de enfermedades neurológicas.

Esta investigación tiene como objetivo desarrollar un método escalable y confiable para registros corticales crónicos en cerdos, abordando los desafíos de falla del dispositivo y las respuestas tisulares, mejorando la neurociencia, el diagnóstico y la investigación. Para extraer información del cerebro durante períodos prolongados, las tecnologías actuales se centran en crear una interfaz estable y confiable entre el electrodo y el cerebro, asegurando señales consistentes de la misma población neuronal. La electrocorticografía y los registros intracraneales se utilizan normalmente para registros cerebrales prolongados.

Estos electrodos permanecen en la misma ubicación, pero la interfaz del tejido del electrodo cambia debido a las respuestas tisulares y la falla del dispositivo. Para comenzar, identifique el punto de bregma dibujando líneas rectas entre cada oreja y el ojo contralateral. El punto de bregma está en la intersección de esas líneas.

Haga una incisión ligeramente lateral al punto de bregma con un bisturí. Con un cauterizador, continúe la incisión a través de la piel. Después de colocar el paño estéril, haga la incisión inicial en el lado marcado de la dermis con un bisturí.

Con un cauterizador, continúe la incisión a través de la piel. Después de colocar el retractor, levante la piel con fórceps y corte el tejido conectivo avascular entre el periostio y el subcúter para proporcionar flexibilidad para suturar más tarde. Coloque un retractor más para acomodar la flexibilidad adicional de la piel.

Taladre un orificio de 10 milímetros de diámetro frontal a la línea de sutura sagital y lateral a la sutura de la línea media con una broca redondeada. Una vez que la duramadre se vuelva visible, cambie a una broca más pequeña para lograr el ancho máximo del orificio al nivel de la duramadre. Recorta los bordes del agujero con rongeurs.

Confirme que la ventana craneal encaje completamente en el orificio perforado, llegando al fondo sin espacios y determine la profundidad adecuada. Mientras sostiene la ventana craneal en su lugar, marque las posiciones de los orificios de los tornillos con un taladro manual. Retire la ventana craneal y taladre los agujeros marcados a una profundidad de al menos cuatro milímetros.

Luego vuelva a colocar la ventana craneal. Después de retirar la aguja del equipo de infusión de mariposa, mida la profundidad del orificio del tornillo a través de la ventana craneal con la mariposa roma. Inserte y apriete un tornillo con una longitud correspondiente en el orificio.

Coloque un conector en U debajo del tornillo que perfora el cráneo y toca la duramadre. Inserte dos agujas perpendiculares al curso del nervio aproximadamente a dos centímetros de distancia. Perfore la piel nuevamente, aproximadamente a tres centímetros del punto de inserción.

Pase los alambres Cooner a través de las agujas y retire las agujas, dejando los alambres parcialmente debajo de la piel. Después de sumergir el electrodo de micro electrocorticografía en alcohol, colóquelo en el zócalo de cabeza ZIF-Clip. Usando un micromanipulador y guiándolo suavemente con un bastoncillo de algodón, coloque el electrodo de micro electrocorticografía en su lugar.

Conecte los cables de tierra del electrodo al tornillo de tierra mediante un conector de cocodrilo. Coloque una gasa estéril en el electrodo para mantener un contacto firme con los tejidos. Gotea solución salina a temperatura corporal sobre la gasa para evitar que el tejido se seque.

Luego aplique estimulación eléctrica al nervio cubital a través del cable periférico para evocar pequeños movimientos en la extremidad anterior. Vista previa de señales cerebrales espontáneas y evocadas. Coloque la tapa de la ventana craneal para cerrar la ventana craneal, asegurándose de que encaje con precisión en la ventana craneal y no requiera sujeción adicional.

Coloque una bolsa de antibióticos en la parte superior de la tapa de la ventana craneal. Cierre la piel por vía subcutánea utilizando la técnica del colchón vertical enterrado con suturas reabsorbibles individuales colocándolas a una distancia de cinco a 10 milímetros. Ate las últimas tres suturas después de que se hayan colocado todas las suturas.

A continuación, coloque las suturas intradérmicas de manera continua, comenzando de uno a dos centímetros laterales al sitio de la incisión y tunelizando debajo de la piel hasta la capa dérmica, pero debajo de su superficie. Haga un nudo en el extremo lateral para evitar la irritación o el aflojamiento de la sutura. Luego coloque la sutura continua entre las suturas subcutáneas hasta llegar al otro lado de la incisión.

Haga una nueva incisión en la dermis con un bisturí ligeramente lateral a la línea media. Con un cauterizador, continúe la incisión a través de la piel. Luego, haga una incisión en el periostio para que el implante sea visible.

Finalmente, con suaves movimientos circulares con un bastoncillo de algodón, retire cualquier tejido conectivo de la abertura hasta que la duramadre se vuelva visible. Esta figura muestra la estabilidad y modulación de los potenciales relacionados con eventos o ERP registrados en diferentes puntos de tiempo y bajo diferentes condiciones de estimulación. Los ERP registrados en tres puntos de tiempo mostraron formas de onda casi idénticas que demuestran la alta reproducibilidad de la técnica de ventana craneal a lo largo del tiempo.

Las amplitudes de cresta y la variabilidad entre canales permanecen estables en todas las sesiones, lo que indica una calidad de señal constante, mientras que un ligero retraso en la primera sesión probablemente refleja cambios en el desarrollo. La estimulación de alta frecuencia mejoró significativamente la amplitud máxima de N1, lo que confirma la sensibilidad de la ERP a los cambios neuroplásticos relacionados con una mayor sensibilidad al dolor. Este enfoque reduce los riesgos asociados con los implantes permanentes al eliminar la falla del dispositivo y las reacciones en el electrodo.

Esto, a su vez, aumenta la fidelidad de la grabación y da como resultado grabaciones altamente confiables. Este método también reduce los costos de investigación y mejora el bienestar animal. Además, se puede implementar en otras especies o para acceder a otras áreas del cerebro.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Neurociencia Número 220

Related Videos

Un procedimiento de cirugía craneotomía para imágenes cerebrales crónicas

09:25

Un procedimiento de cirugía craneotomía para imágenes cerebrales crónicas

Related Videos

65.7K Views

Medición de los niveles de glutamato cerebral bajo anestesia en lechones neonatos utilizando una guía de microelectrodos

04:01

Medición de los niveles de glutamato cerebral bajo anestesia en lechones neonatos utilizando una guía de microelectrodos

Related Videos

478 Views

Implante subdural de un array de electrocorticografía blanda para el registro de electrofisiología cortical en minipigs

04:00

Implante subdural de un array de electrocorticografía blanda para el registro de electrofisiología cortical en minipigs

Related Videos

520 Views

In vivo de dos fotones de imágenes de dependientes Experience-Los cambios moleculares en las neuronas corticales

10:07

In vivo de dos fotones de imágenes de dependientes Experience-Los cambios moleculares en las neuronas corticales

Related Videos

22.2K Views

Grabación concurrente de electroencefalografía Co localizada y potencial de campo Local en roedores

08:31

Grabación concurrente de electroencefalografía Co localizada y potencial de campo Local en roedores

Related Videos

12.8K Views

Adaptación de la tecnología de matriz de microelectrodos para el estudio de la neurotoxicidad inducida por la anestesia en el cerebro intacto cochinillo

08:23

Adaptación de la tecnología de matriz de microelectrodos para el estudio de la neurotoxicidad inducida por la anestesia en el cerebro intacto cochinillo

Related Videos

9.9K Views

Implantación crónica de todo cortical matriz electrocorticográfica en el tití común

04:43

Implantación crónica de todo cortical matriz electrocorticográfica en el tití común

Related Videos

10.2K Views

Implantación de una ventana craneal para imágenes repetidas in vivo en ratones despiertos

06:33

Implantación de una ventana craneal para imágenes repetidas in vivo en ratones despiertos

Related Videos

8.6K Views

Implantación de matrices de electrocorticografía blanda subdural (ECoG) y registro cortical a largo plazo en minipigs

08:30

Implantación de matrices de electrocorticografía blanda subdural (ECoG) y registro cortical a largo plazo en minipigs

Related Videos

3.5K Views

Acceso al cerebro porcino a través de una craneectomía con taladro neumático de alta velocidad

04:26

Acceso al cerebro porcino a través de una craneectomía con taladro neumático de alta velocidad

Related Videos

886 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code