4 de noviembre de 2025
Los inmunoensayos de fluorescencia multiplex se están convirtiendo en una referencia para las pruebas serológicas. Sin embargo, su aplicación está limitada por la complejidad y los procesos de acoplamiento de perlas-analitos que requieren mucho tiempo. Este informe presenta un protocolo de acoplamiento de microesferas multiplex semiautomatizado y reproducible que es comparable al método estándar y reduce considerablemente el tiempo de obtención de resultados.
En nuestro laboratorio, medimos las respuestas inmunitarias a las enfermedades infecciosas para comprender mejor cómo se transmiten en las poblaciones. Los desarrollos recientes en nuestro campo son los ensayos multiplex, que nos permiten medir muchos anticuerpos diferentes en una sola reacción usando el volumen mínimo. Para empezar, obtengan ocho placas de pozo profundo de 96.
Prepara cada placa añadiendo peines de punta, fosfato de sodio monobásico, solución de Tritón, sulfo-NHS, EDC y solución de antígenos. Para configurar el ciclo de acoplamiento en el procesador automatizado, se enciende la máquina y se configuran los parámetros del protocolo usando el software. Carga las placas en las ranuras asignadas de la máquina, luego selecciona el protocolo y comienza el ciclo tras completarlo, descarga las placas y apaga la máquina según las instrucciones del fabricante.
Comprueba visualmente que la placa ocho contiene las cuentas visibles como una bolita marrón. Transfiere las cuentas de la placa ocho a tubos individuales de 1,5 mililitros para su almacenamiento. Guarda las cuentas acopladas a cuatro grados Celsius hasta su uso.
Para contar las cuentas, haz un vórtice exhaustivo de las cuentas acopladas. Transfiere 10 microlitros a una cámara de conteo celular y luego sigue las instrucciones del fabricante para leer el recuento de perlas por mililitro. Comprueba la agregación visualizando la imagen en el contador de celdas.
Prepara la disposición de la placa. Muestras diluidas, y estándar en el buffer PBT en una placa separada que no se vincule. Haz un vórtice exhaustivo en los vórtices de las perlas acopladas durante 30 segundos y luego sonica durante al menos 60 segundos.
Ahora, transfiere los volúmenes adecuados de antígeno de la perla a un tubo centrífuga y ajusta el volumen con un buffer PBT. Mezcla bien el premezclador. Distribuye 50 microlitros de la premezcla a la microplaca de imagen, luego pipetea 50 microlitros de las muestras diluidas a las perlas de la microplaca de imagen y mezcla en un agitador de placas.
Coloca el plato sobre una rejilla magnética durante 60 segundos a temperatura ambiente. Sujeta el plato firmemente en la rejilla y desecha el sobrenadante. Preparar una solución diluida del anticuerpo secundario con la cantidad adecuada de tampón PBT.
Añade 50 microlitros del anticuerpo a las perlas lavadas en la placa de imagen. Incuba la placa en un agitador durante 15 minutos a temperatura ambiente y realiza tres lavados más con PBT. Después de insertar la placa en el lector de fluorescencia, configura el protocolo y guárdalo.
Se confirmó la linealidad de la respuesta de anticuerpos para antígenos arbovirales seleccionados probados en concentraciones óptimas en el pool estándar de ORPAL. Se observó una linealidad paralela de la respuesta de anticuerpos al comparar los métodos de acoplamiento manual y tres métodos automáticos. Los valores medianos de intensidad de fluorescencia obtenidos de 19 placas diferentes para cada antígeno y control se situaron dentro del rango de la media.
Se observó una fuerte correlación entre los valores medianos de intensidad de fluorescencia obtenidos en ensayos multiplex y singleplex utilizando el pool estándar ORPAL. En la cohorte de Senegal, se observó una distribución bimodal clara en la respuesta de anticuerpos a la VVLP de los pollitos y también se observaron colas bimodales sutiles para DENV1 NS1 y RVFV NP. Hemos demostrado que nuestras pruebas serológicas pueden medir simultáneamente anticuerpos contra muchos arbovirus. Nuestro ensayo validado para medir múltiples respuestas a diferentes arbovirus ayudará en nuestros esfuerzos por comprender la transmisión de estos virus en toda África.
Nuestro protocolo proporciona un enorme ahorro de tiempo y reproducibilidad en la preparación de reactivos para ensayos multiplex.
Este protocolo demuestra un método semiautomatizado de acoplamiento de microesferas multiplex para pruebas serológicas de arbovirus. Aborda los desafíos de los procesos que consumen mucho tiempo en los ensayos tradicionales, mejorando la eficiencia y la reproducibilidad.
Los ensayos serológicos multiplex para arbovirus abordan la necesidad crítica de detección de anticuerpos de alto rendimiento y reproducible en la vigilancia global y la investigación de vacunas. Esta plataforma basada en microperlas permite la cuantificación simultánea de respuestas inmunitarias frente a múltiples antígenos virales, facilitando la toma rápida de decisiones en las fases iniciales del descubrimiento y en los flujos de trabajo traslacionales. La escalabilidad y reproducibilidad del protocolo impactan directamente en la priorización de carteras y en el avance ajustado al riesgo en la I+D de enfermedades infecciosas.
Este ensayo multiplex integra desde el descubrimiento inicial hasta la identificación de candidatos y la validación preclínica, apoyando la vigilancia serológica y la evaluación de inmunogenicidad.