27 de febrero de 2026
El objetivo de este protocolo es proporcionar un enfoque estandarizado para evaluar cuantitativamente la integridad de la barrera epitelial gingival murina mediante la aplicación tópica de dextranos marcados con fluorescencia de diferentes tamaños moleculares sobre la superficie gingival in vivo, seguido de imágenes ex vivo mediante un sistema de microscopía de fotón único.
Este es un protocolo estandarizado para evaluar cuantitativamente la integridad de la barrera epitelial gingiva. Este protocolo es útil para estudiar enfermedades por disfunción de barrera y probar fármacos restauradores de barreras en la encía. Para empezar, dividir a ratones machos salvajes tipo C57BL/6J en tres grupos: un grupo de control no tratado, un grupo de periodontitis inducida por ligadura y un grupo de periodontitis inducida por Porphyromonas gingivalis.
Selecciona trazadores fluorescentes con espectros no solapados, como dextrano marcado con FITC y rodamina B marcado con dextran. Para diluir los trazadores, mezcla un gramo por litro de FD40 y RD70 en gel de carboximetilcelulosa al 2%. Guarda la mezcla preparada en hielo.
Tras confirmar la profundidad anestésica mediante el reflejo de pellizco del dedo, utiliza un mordaza bucal para mantener abierta la cavidad oral del ratón anestesiado. Aplicar 50 microlitros de la mezcla trazadora preparada tópicamente en la superficie gingival labial de la región molar. Deja la mezcla en su sitio durante 30 minutos y vuelve a aplicarla si la tragas.
Tras 30 minutos de aplicación del trazador, coloca al ratón en posición supina sobre cartón y asegura las extremidades con cinta para inmovilizar al animal. A continuación, abre la cavidad oral del ratón sacrificado y aísla el maxilar. Retira suavemente los tejidos circundantes y enjuaga bien la muestra con PBS.
Coloca el maxilar aislado sobre un portaobjetos de cristal. Luego coloca plastilina a ambos lados para estabilizar y asegurar la capa de cubierta sobre la muestra. Coloca cuidadosamente el maxilar diseccionado sobre el soporte de muestras diseñado a medida para asegurar una colocación estable para la imagen.
Utilizando un microscopio vertical de fotón único equipado con un objetivo de inmersión en agua de 25X. Enfoca en la zona de soporte montada bajo el maxilar y adquiere imágenes. Selecciona la región de interés en la superficie bucal del segundo molar dentro del maxilar y comienza la imagen rápidamente.
Adquiere imágenes en pila Z con un tamaño de paso de un micrómetro, comenzando desde la superficie gingival hasta una profundidad de 100 a 200 micrómetros para la reconstrucción tridimensional. En el software, haz clic en archivo y selecciona nueva carpeta para crear una nueva carpeta para el conjunto de datos y asignar un nombre descriptivo. En la pestaña de adquisición, ajusta el formato XY a 512 por 512 con una resolución de 0,99 micrómetros por píxel.
Luego pon el factor de zoom en uno. A continuación, ajusta las longitudes de onda de excitación a 488 nanómetros y 561 nanómetros. Configura ventanas de emisión a 500 a 550 nanómetros y de 570 a 620 nanómetros respectivamente.
Para la serie Z e imagen tridimensional, selecciona el modo de adquisición ND. Ajusta el paso Z a un micrómetro y ajusta si es necesario. Tras configurar los parámetros, selecciona el modo en vivo para visualizar el área gingival en canales de fluorescencia individuales y fusionados.
Luego haz clic en ejecutar ahora para empezar la adquisición de la imagen. Para medir la permeabilidad, separa la intensidad de fluorescencia de FD40 y RD70 en diferentes canales. Fusiona las secciones del eje Z sin resta de fondo.
Luego utiliza el software ImageJ para cuantificar la intensidad de fluorescencia y así evaluar la permeabilidad de la barrera epitelial. Haz clic en archivo y selecciona abrir para abrir la imagen del maxilar en ImageJ. Luego pulsa imagen y cambia el tipo de imagen a formato de 8 bits para el análisis.
Haz clic en analizar, selecciona establecer medidas. Luego comprueba el área, la media y la densidad integrada, y haz clic en aceptar para confirmar. Luego selecciona el canal deseado y ajusta el umbral haciendo clic en imagen, eligiendo ajustar y seleccionando umbral.
Activa la opción de fondo oscuro para tener en cuenta los fondos negros. Haz clic en analizar y selecciona establecer medidas. Luego comprueba el valor gris medio y el límite hasta el umbral, y confirma haciendo clic en aceptar.
Utilizando la herramienta de selección a mano alzada, traza manualmente el contorno de la región de la señal fluorescente en el lado del tejido gingival. Haz clic en analizar y seleccionar medir para obtener valores de intensidad de fluorescencia donde la densidad integrada representa la intensidad de fluorescencia. Copia los resultados de las mediciones en una hoja de cálculo para cálculos y gráficos.
Calcula la intensidad media de fluorescencia del grupo de control en la hoja de cálculo. Divide el valor de intensidad de fluorescencia de cada grupo experimental entre el promedio del grupo de control para obtener la intensidad relativa de fluorescencia. En el grupo de control, ambos trazadores fluorescentes estaban en gran medida confinados a la superficie gingival.
En ambos grupos tratados con ligadura y Porphyromonas gingivalis, se observó una extravasación significativa tanto de FD40 como de RD70 en el epitelio gingival. El análisis semicuantitativo demostró un aumento significativo de la intensidad de fluorescencia tanto de FD40 como de RD70 en los grupos tratados con ligadura y Porphyromonas gingivalis. La imagen 3D reveló una distribución de fluorescencia de trazadores más extensa y difusa alrededor de la vasculatura gingival en la ligadura y los grupos tratados por Porphyromonas gingivalis en comparación con los controles.
Este protocolo cuantifica la permeabilidad e integridad de la barrera paracelular gingival del ratón. Este protocolo puede combinarse con micro-CT para el análisis de imágenes multimodales. Estudios posteriores pueden explorar fármacos reparadores de barreras y mecanismos moleculares en enfermedades orales.
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La barrera epitelial gingival actúa como una defensa primaria crítica en la inmunidad y la homeostasis bucal. Una barrera epitelial intacta previene eficazmente la penetración de sustancias nocivas desde el entorno oral, mientras que su alteración está estrechamente asociada con la patogénesis de afecciones como la periodontitis y el liquen plano oral. Aquí, establecimos un método basado en la aplicación tópica para evaluar la integridad de la barrera epitelial gingival en ratones. Primero, se aplicó tópicamente una mezcla de dextranos marcados con fluorescencia de diferentes pesos moleculares (40 o 70 kDa) en una solución al 2% de carboximetilcelulosa sódica sobre la superficie gingival labial de la región molar. Tras un periodo de incubación de 30 minutos, se diseccionó el maxilar y se fijó en un soporte personalizado para su inmediata obtención de imágenes mediante un sistema de microscopía de un solo fotón. Este enfoque permite la visualización y cuantificación de trazadores de diferentes tamaños a través de las capas epiteliales, proporcionando una lectura funcional de la integridad de la barrera epitelial gingival aplicable a estudios de inflamación oral, cicatrización de heridas y modelado de enfermedades.
La barrera epitelial gingival actúa como una defensa crítica en primera línea en la inmunidad oral, y su alteración está asociada con enfermedades orales inflamatorias como la periodontitis. Este método proporciona una lectura funcional y cuantitativa de la integridad de la barrera mediante la penetración de trazadores dependiente del tamaño, permitiendo la reducción de riesgos mecanicistas en modelos de enfermedades orales. Además, apoya la validación de dianas y el desarrollo de ensayos para terapias dirigidas a la inmunidad mucosal y la cicatrización de heridas.
El método se integra en la continuidad desde el descubrimiento hasta la etapa preclínica, permitiendo la evaluación temprana de la función de la barrera mucosa antes de avanzar a estudios de eficacia y seguridad en modelos de enfermedades orales.