Name: Limpieza y cuidado apropiado del microscopio (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2008-08-11T18:42:00.000+00:00
Duration: 4 min 57 s
Description: Aprende técnicas de limpieza y almacenamiento apropiado para mantener los componentes ópticos del microscopio en óptimas condiciones. Este protocolo garantiza imágenes de alta calidad y prolonga la vida útil del equipo.

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El protocolo de texto completo de este enfoque experimental está disponible en <a class="jove_content" href="http://www.mrw.interscience.wiley.com/emrw/9780471143031/cp/cpcb/article/cb0401/current/abstract ">protocolos actuales en Biología Celular.</a>

Los autores no tienen nada que revelar.

limpieza y cuidado apropiado del microscopio

Proper Care and Cleaning of the Microscope

Mantener el microscopio óptico limpio es importante para la imagen de alta calidad. Polvo, huellas dactilares, aceite de inmersión en exceso, o en medio de montaje o en un microscopio produce una reducción en el contraste y resolución. DIC es especialmente sensible a la contaminación y los arañazos en la superficie de las lentes. Este protocolo se detalla el procedimiento para mantener limpio el microscopio.

Limpieza y cuidado apropiado del microscopio

Mantener limpias las ópticas del microscopio es fundamental para obtener imágenes de alta calidad. El polvo, las huellas dactilares, el exceso de aceite de inmersión o el medio de montaje sobre o dentro de un...

Mantener limpios los componentes ópticos del microscopio es importante para obtener imágenes de alta calidad; el polvo, las huellas dactilares, el exceso de aceite de inmersión o los medios de montaje sobre o dentro del microscopio provocan una reducción del contraste y la resolución. Hoy les mostraremos los pasos importantes para mantener el microscopio limpio. Hola, soy Victoria San Frolic del Servicio Central de Imagen Óptica del Centro de Ciencias de la Salud de la Universidad de Texas en San Antonio.Hoy les mostraré cómo limpiar y cuidar adecuadamente la óptica del microscopio. Así que comencemos. El almacenamiento adecuado de los componentes del microscopio es fundamental para su durabilidad.Si los objetivos no están en el microscopio, guárdelos en recipientes con tapa roscada. Mantenga los portaobjetos, cubreobjetos y otros accesorios. Las cajas cubiertas se guardan en bolsas de plástico.Si los componentes ópticos se vuelven polvorientos o se recubren con residuos de aceite, es importante limpiarlos cuidadosamente. Es recomendable tener un juego de herramientas ubicado cerca del microscopio con los materiales de limpieza comúnmente utilizados. Como mínimo, el kit debe contener un pincel suave y un soplador para eliminar suavemente las partículas, papel para lentes, toallitas ópticas y soluciones de limpieza.Otros artículos que podrían incluirse son hisopos, pinzas de goma y herramientas pequeñas para el microscopio. Primero, examine la superficie de la lente. Un ocular retirado del microscopio y girado boca abajo es una lupa práctica.Si solo hay partículas en la superficie, primero intente eliminarlas con una perilla de aire. Si persisten, intente desprenderlas cepillando suavemente la superficie con un pincel muy suave de pelo de camello. A la hora de limpiar realmente las lentes, evite usar toallitas químicas o papel facial comercial, que contiene rellenos a base de silicona y puede estropearlas.Se debe utilizar únicamente papel para lentes de objetivo en los objetivos del microscopio. Los contaminantes solubles en agua deben eliminarse respirando suavemente sobre la superficie del lente y limpiando con un papel para lentes doblado que haya sido roto en un extremo. Si persisten contaminantes no solubles en agua, entonces se necesitan soluciones de limpieza adicionales para aplicar la solución de limpieza.Primero, cubra la lente con una hoja limpia de papel para lentes. Coloque una o dos gotas de solución sobre el papel y extiéndalas por toda la superficie de la lente. Este procedimiento debe repetirse utilizando una pieza limpia de papel para lentes hasta que la superficie de la lente esté limpia y libre de manchas.Puede ser necesaria una limpieza final con metanol para eliminar residuos. No frote la lente y evite que ninguna parte del papel para lentes toque la lente dos veces al limpiar elementos frontales empotrados de objetivos secos o para eliminar suciedad persistente. Envuelva el extremo de un aplicador de madera con papel para lentes, coloque unas gotas de solución de limpieza sobre el papel y aplique suavemente el aplicador sobre la superficie de la lente.Es muy importante no aplicar presión excesiva y también utilizar un trozo limpio de tejido para cada pasada. A la hora de limpiar los oculares, puede usar la solución para lentes o etanol al 50%. Recuerde usar la misma técnica que emplea para limpiar el objetivo, con el fin de evitar rayar la lente.Cuando haya terminado, cubra el microscopio y manténgalo cubierto. Cuando no esté en uso, acaba de aprender los fundamentos del mantenimiento y la limpieza del microscopio. Recuerde utilizar únicamente papel para lentes al limpiar los componentes ópticos.Y recuerde, es importante almacenar adecuadamente sus componentes ópticos cuando no estén en uso, incluyendo cubrir su microscopio. Eso es todo. Gracias por ver este video y buena suerte con su microscopía. Corte.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Biology

Biología

El microscopio de luz es una herramienta básica para el biólogo celular, que debe tener un conocimiento profundo de cómo funciona, cómo debe ser alineado para diferentes aplicaciones, y cómo se debe mantener como sea necesario para obtener la máxima capacidad de formación de imagen y resolución. Los componentes del microscopio se describen en detalle aquí.

Los componentes principales del microscopio de luz

Demostramos un método de microscopía de campo oscuro, sobre la base de Gabor-como el filtrado para medir la dinámica subcelulares dentro de células vivas individuales. La técnica es sensible a las alteraciones en la estructura de los orgánulos, como la fragmentación de las mitocondrias.

Microscopía óptica de dispersión basado en dos dimensiones filtros Gabor

De alta resolución de imagen intravital con mejor contraste de hasta 120 m de profundidad en los ganglios linfáticos de ratones adultos se consigue modular espacialmente el patrón de excitación de un multi-focal del microscopio de dos fotones. En 100 m de profundidad se midió resoluciones de 487 nm (laterales) y 551 nm (axial), eludiendo así los límites de dispersión y difracción.

Muy resuelto Microscopía intravital rayas-iluminación de centros germinales

Los microtúbulos son polímeros inherentemente inestables, y su conmutación entre el crecimiento y acortamiento es estocástico y difícil de controlar. Aquí se describen los protocolos que utilizan microtúbulos segmentados con tapones estabilizadores fotoescindible. La despolimerización de los microtúbulos segmentados puede ser activado con una alta resolución temporal y espacial, ayudando de este modo el análisis de los movimientos con los extremos de los microtúbulos desmontaje.

Preparación de segmentados microtúbulos para estudiar las mociones impulsadas por las que desmontan microtúbulos Ends

Este protocolo describe el funcionamiento de un soporte de la muestra de flujo de líquido para la digitalización de microscopía electrónica de transmisión de AuNPs en agua, tal como se utiliza para la observación de procesos dinámicos a nanoescala.

El estudio de procesos dinámicos de nano-objetos de tamaño en el líquido de utilizar el escaneado Microscopía Electrónica de Transmisión

Aquí, presentamos un procedimiento para la realización de gran escala Ca 2 + imágenes con resolución celular a través de múltiples capas corticales en los ratones que se mueven libremente. Cientos de células activas se pueden observar simultáneamente usando un microscopio en miniatura montado en la cabeza acoplado con una sonda de prisma implantada.

Ca Cortical Multi-capa<sup&gt; 2+</sup&gt; Imágenes en ratones con movimientos libres con sondas de prisma y microscopía de fluorescencia miniaturizada

Este protocolo de imágenes celulares de células bacterianas vivas permite visualizar las interacciones entre múltiples especies bacterianas a nivel de una sola célula a lo largo del tiempo. Las imágenes de lapso de tiempo permiten la observación de cada especie bacteriana en monocultivo o cocultura para interrogar las interacciones entre especies en comunidades bacterianas multiespecies, incluida la motilidad celular individual y la viabilidad.

Visualización cinética de interacciones bacterianas entre especies de una sola célula

Aquí se presenta el protocolo de la técnica Conpokal, que combina la microscopía de fuerza confocal y atómica en una sola plataforma de instrumento. Conpokal proporciona la misma célula, misma región, cerca de imágenes confocales simultáneas y caracterización mecánica de muestras biológicas vivas.

Microscopía de Fuerza Atómica y Confocal de Escaneo Láser Casi Simultánea (Conpokal) en Células Vivas

Este protocolo demuestra cómo obtener imágenes de muestras criopreservas biológicas utilizando microscopía de iluminación crioestructurada. Demostramos la metodología mediante la obtención de imágenes del citoesqueleto de las células U2OS.

Recopilación de datos microscópicos de iluminación crioestructurada de células preservadas criogénicamente

Este protocolo describe en detalle cómo construir un microscopio de fluorescencia de hoja de luz de un solo objetivo y su uso para visualizar redes de citoesqueletos.

Diseño y construcción de un microscopio de fluorescencia de lámina de luz personalizable de un solo objetivo para la visualización de redes de citoesqueletos

Aprende técnicas de limpieza y almacenamiento apropiado para mantener los componentes ópticos del microscopio en óptimas condiciones. Este protocolo garantiza imágenes de alta calidad y prolonga la vida útil del equipo.

Limpieza y cuidado apropiado del microscopio

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