Division cellulaire

NotionsPréparation de l'instructeurProtocole étudiant
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  1. Observation du cycle cellulaire dans une pointe racine
    • Hypothèses : L’hypothèse expérimentale est que dans les tranches d’extrémités de racines qui ont été traitées avec du nocodazole, un produit chimique qui interfère avec la polymérisation microtubulaire, toutes les cellules seront arrêtées au même stade du cycle cellulaire et que dans les tranches de pointe d’oignon non traitées, toutes les différentes étapes du cycle cellulaire seront visualisées. L’hypothèse nulle est qu’il n’y aura pas de différences de mitose entre les deux groupes et que les différentes étapes du cycle cellulaire seront visualisées.
    • Pour vous préparer à cette expérience, vous utiliserez un oignon qui a été placé dans l’eau pendant plusieurs jours jusqu’à ce que de nouvelles pointes de racines blanches aient commencé à germer. À l’aide d’une lame de rasoir, coupez un morceau de 1 cm à l’extrémité de l’une des pointes de la racine.
    • Placez la tranche d’oignon dans un tube de microcentrifugation étiqueté « N » pour la condition nocodazole.
    • Ensuite, coupez un deuxième morceau de 1 cm de pointe de racine d’oignon et placez-le dans un tube de microcentrifugation étiqueté « C » pour la condition de contrôle.
    • Ajoutez 2 μL de nocodazole à 5 mg/mL à 1 mL d’eau dans le tube de microcentrifugation étiqueté N et 1 mL d’eau uniquement dans le tube étiqueté C.
    • Laissez les tubes contenant les pointes des racines incuber pendant 12 heures et essuyez l’espace de travail avec de l’éthanol à 70 %.
    • Lorsque l’incubation est terminée, réglez un bloc de chaleur à 60 ºC.
    • Lavez les pointes traitées au nocodazole avec de l’eau, puis aspirez le liquide.
    • Répétez ce lavage deux fois de plus, pour un total de trois lavages.
    • Remplissez les deux tubes avec 1 mL d’un acide chlorhydrique normal. Incuber les tubes dans un bloc thermique à 60 ºC pendant 12 à 15 min, puis jeter l’acide dans une fiole usagée.
    • Maintenant, ajoutez 1 mL d’eau distillée goutte à goutte dans les tubes au moins trois fois pour rincer les échantillons.
    • Ajoutez maintenant un microlitre de colorant DAPI à 10 mL de solution saline tamponnée au phosphate (PBS).
    • Placez ensuite 50 μL de ce colorant DAPI dilué dans chaque tube et laissez-les incuber à température ambiante pendant 12 min.
    • Après cela, préformez trois lavages à l’eau distillée comme à l’étape 10.
    • Étiquetez une lame de microscope comme 'Contrôle' et une autre comme 'Nocodazole'.
    • Transférez les racines colorées sur leurs lames de microscope respectives et ajoutez une goutte d’eau sur la lame de contrôle et une goutte de nocodazole sur la lame de nocodazole.
    • Utilisez la lame de rasoir pour retirer les parties non tachées de chaque extrémité de racine et placez une lamelle en verre sur chaque échantillon.
    • Appuyez soigneusement sur chaque lamelle avec un doigt ganté, puis laissez reposer les lames pendant 10 min.
    • Enfin, visualisez les lames sous l’objectif 40X d’un microscope à fluorescence et capturez des images de vos préparations de cellules de pointe de racine.
  2. Comprendre la perte de contrôle du cycle cellulaire
    • REMARQUE : Avant que les cellules puissent passer par toutes les étapes du cycle cellulaire, elles doivent passer par plusieurs points de contrôle. Ces points de contrôle sont régulés par les cyclines et les protéines kinases dépendantes des cyclines, ou CDK. Si les cyclines et les CDK déterminent que les événements cellulaires précédents n’ont pas été correctement terminés, ils arrêteront les cellules à cette étape et les empêcheront de proliférer. Dans les cellules cancéreuses, une ou plusieurs de ces contraintes moléculaires pour réguler la division cellulaire sont perdues, ce qui permet aux cellules endommagées d’échapper au contrôle de la prolifération cellulaire. Ces cellules anormales se transforment en tumeurs qui sont des masses de cellules proliférantes incontrôlées qui interfèrent avec les fonctions normales du corps. Remarquez comment, avant de se diviser, cette cellule cancéreuse arrondit et réfracte la lumière très fortement sous le microscope optique. En effet, toutes les cellules cancéreuses ne se divisent pas avec succès en cellules filles après chaque cycle de mitose. Cela signifie qu’ils contiennent souvent un excès d’organites et d’ADN et cette augmentation du contenu cellulaire signifie qu’ils réfracteront la lumière plus intensément que les cellules normales.
  3. Résultats ul class="lab-items">
  4. Examinez vos images collectées et notez dans le Tableau 1 les différentes structures cellulaires et étapes qui ont pu être identifiées dans la tranche de pointe d’oignon qui a été traitée avec du nocodazole. Cliquez ici pour télécharger le Tableau 1
  5. S’il y a des cellules en mitose, notez les étapes de division cellulaire que vous voyez.
  6. Enregistrez le pourcentage de cellules à chaque étape de la mitose dans le tableau 1.
  7. Ensuite, examinez les images de la tranche de pointe d’oignon non traitée et notez les structures cellulaires que vous pouvez identifier.
  8. S’il y a des cellules en mitose, considérez les étapes de la division cellulaire que vous voyez et notez les pourcentages de cellules à chaque étape de la mitose dans le tableau 1.

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