Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.

Article de méthode

Préparation tranche horizontale de la rétine

15.3K vues

DOI :

10.3791/108

20 novembre 2006

Dans cet article

Résumé

Traditionnellement, la tranche verticale et de toute la préparation de montage de la rétine ont été utilisés pour étudier la fonction des circuits de la rétine. Ici, nous décrivons le roman tranchage méthode pour préserver la morphologie dendritique des neurones rétiniens intacte.

Résumé

Traditionnellement, la tranche verticale et de toute la préparation de montage de la rétine ont été utilisés pour étudier la fonction des circuits de la rétine. Cependant, de nombreux neurones de la rétine, telles que les cellules amacrines, d'élargir leurs dendrites horizontalement, de sorte que la morphologie des cellules est censée être gravement endommagés dans les tranches verticales. Dans toute la préparation de montage, notamment pour les enregistrements de patch-clamp, les neurones rétiniens dans la couche intermédiaire ne sont pas facilement accessibles en raison de l'importante couverture des cellules gliales endfeets s (cellule de Mueller). Ici, nous décrivons le roman tranchage méthode pour préserver la morphologie dendritique des neurones rétiniens intacte. La tranche a été faite à l'horizontale à la couche interne de la rétine à l'aide d'une trancheuse vibratome après la rétine a été intégré dans le bas température de fusion gel d'agarose. Dans cette préparation tranche horizontale de la rétine, nous avons étudié la fonction des neurones de la rétine par rapport à leur morphologie, en utilisant patch-clamp, la technique d'imagerie calcique, immunocytochimie, et une seule cellule de RT-PCR.

Protocole

  1. Préparer un bloc de gélose (30 mg / ml, soit 3%, dans l'eau distillée). Dissoudre et micro-ondes c'est d'abord et versez-la dans un plat en verre. Gardez le plat au réfrigérateur à 4 o C.
    Astuce: Le bloc de gélose doivent être préparés à l'avance.

  2. Préparer à basse température de fusion du gel d'agarose (25 mg / ml, soit 2,5%, en moyenne). Dissoudre et micro-ondes qu'elle. Gardez-le dans le bain d'eau chaude à 35 ° C.
    Astuce: Conserver le gel d'agarose pas trop chaud. Si elle est trop chaude, elle prend beaucoup de temps pour être solidifié, et le gel peut tuer la rétine

    .
  3. Euthanasier l'animal, énucléer un globe oculaire et de l'ouvrir comme un œilleton. Pour liquéfier humeur vitrée, l'œilleton ouverture est trempé pendant 10 min dans l'hyaluronidase dans la moyenne (0,07 mg / ml), si nécessairement.

  4. Couper l'agar-agar dans un bloc (par exemple, 1 cm x 1,5 cm pour la rétine de souris) et fermement attaché sur une scène vibratome par de la colle instantanée. Gardez le bloc de gélose humide.

  5. Placez la lame à 5 degrés à la trancheuse. Doucement coupé la surface supérieure du bloc de gélose à la vitesse d'env. 50 um / sec, fréq. 50 Hz.
    Astuce: Assurez-vous que la surface supérieure du bloc d'agar est totalement plat et lisse. Plusieurs coupes (au moins 3 fois) peut être nécessaire pour obtenir la surface lisse et plane du bloc de gélose.

  6. Rincer l'œillère avec le milieu sans hyaluronidase. Isoler la rétine à partir d'un épithélium pigmentaire et la place qu'il photorécepteur vers le bas sur un morceau de papier filtre. Pour fixer solidement la rétine pour le papier-filtre, le vide de la rétine sur le papier filtre à plusieurs reprises.
    Astuce: Assurez-vous que la rétine est attachée à du papier filtre complètement plat. Après avoir mis une rétine sur le papier filtre, couper l'excédent de papier filtre entourant la rétine (Fig.2a). L'excédent de papier filtre empêche souvent d'une lame d'entrer dans la couche appropriée de la rétine.

  7. Essuyez doucement la moyenne supérieure sur le bloc d'agar et placer soigneusement la rétine sur le papier filtre sur le bloc de gélose. Pour placer la fermeté du papier filtre sur le bloc de gélose, joignez colle instantanée sur le bord du papier filtre.
    Astuce: Pour éviter les fissures unexpectable, placer la rétine comme l'avant que possible sur la surface supérieure du bloc de gélose.

  8. Verser délicatement le gel à basse température de fusion d'agarose sur la rétine. Attendre 1 min et versez doucement le support sur elle pour la refroidir. Le gel d'agarose se solidifie rapidement.
    Astuce: Trop chaud en gel d'agarose tue la rétine.

  9. Soulevez la position de la lame à plusieurs centaines um-dessus de la surface supérieure du bloc de gélose et doucement coupé le haut de la solidification du gel d'agarose.

  10. Plus bas sur la position de la lame. Couper la rétine au niveau de l'extrémité proximale d'un tiers de la couche nucléaire interne (environ entre 200 et 250 um-dessus de la surface supérieure du bloc de gélose).
    Astuce: trop de vitesse de la lame d'endommager sévèrement la rétine. Env. 50 um / seconde (50 Hz) est approprié.

  11. Notez que les cellules amacrines sont maintenant face vers le bas. Soigneusement ramasser la tranche de la rétine avec le gel d'agarose solidifié et placez-le face vers le haut dans une chambre ou un plat.
    Astuce: Parce que la rétine de souris est minuscule et ondulés, il est difficile d'obtenir une parfaite tranche horizontale à une couche appropriée. Un "oblique" tranche peut être une méthode alternative pour obtenir la tranche relatifs à plat de la rétine. Pour obtenir la tranche oblique, mettre un autre papier filtre entre la rétine sur le papier filtre et le bloc d'agar comme indiqué dans Fig.2b. Bien que vous ne pouvez espérer une tranche horizontale parfaite, il ya toujours quelques domaines où le soma des cellules amacrines est sur ​​la surface de la tranche.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

Il ya plusieurs avantages importants de la préparation tranche horizontale de la rétine.

Tout d'abord, la morphologie des cellules qui s'étendent horizontalement dendrites, comme les cellules amacrines et les cellules horizontales, est préservée. Il a été démontré qu'il ya plus de 20 types de cellules amacrines dans la rétine (MacNeil et Masland, 1998), de sorte qu'il est très important de comparer la morphologie des cellules avec la propriété physiologique.

Deuxièmement, dans la rétine toute monture, la couv...

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Tous les protocoles expérimentaux ont été menés conformément aux National Institutes of Health des lignes directrices pour l'utilisation des animaux.

Remerciements

Nous remercions les Drs. Richard H. Masland et Akimichi Kaneko de nous donner des conseils et des suggestions utiles pour établir la procédure de la préparation de tranches horizontales de la rétine.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
AgarSigma-AldrichA-1296
Agarose LWako Pure Chemical Industries, Ltd.317-01182Agarose à bas point de fusion
HyaluronidaseSigma-AldrichType I-S, 300 U/mg
Milieuen mM : 102 NaCl, 3,1 KCl, 2,0 CaCl2, 1,0 MgCl2, 23 NaHCO3, et 10 glucose, maintenu à pH 7,8, ou solution d'Ames’ (Sigma)
Micro-ondes
Bain-marie35 °C
Trancheur vibratomeLeica MicrosystemsVT1000S
Filtres à membrane MFEMD MilliporeHAWP01300Papier filtre, taille de pore 0,45 µm
Matériel de dissectionpinces, lame, pince, tweezers, etc.
Colle instantanéepar ex. Alonalpha, Krazy Glue
Seringue de 50 mL
Filtre pour seringueEMD MilliporeSX0001300

Références

  1. Azuma, T., Enoki, R., Iwamuro, K., Kaneko, A., Koizumi, A. Multiple spatiotemporal patterns of dendritic Ca2+ signals in goldfish retinal amacrine cells. Brain Res. , 64-73 (2004).
  2. Koizumi, A., TC, J. akobs, Masland, R. H. Inward rectifying currents stabilize the membrane potential in dendrites of mouse amacrine cells: patch-clamp recordings and single-cell. , 328-340 (2004).
  3. MA, M. acN. eil, RH, M. asland Extreme diversity among amacrine cells: implications for function. Neuron. , 971-982 (1998).

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Étiquettes

Slicing de la r tineVibratomeEnregistrement par patch clampImagerie calciqueImmunocytochimieRT PCR sur cellule uniqueMorphologie dendritiqueNeurones r tiniensEnrobage en gel d agarose