Induction chirurgicale d'hydrops endolymphatique par oblitération du canal endolymphatique

Résumé

Cette vidéo montre comment chirurgicalement obstruction conduit endolymphatique le cochon de Guinée pour produire hydrops endolymphatique.

Résumé

L'induction chirurgicale d'hydrops endolymphatique (ELH) dans le cochon Guinée par l'oblitération et l'obstruction du canal endolymphatique est un modèle animal bien accepté de l'état et une importante corrélation entre la maladie humaine de Ménière. En 1965, Robert Kimura et Harold Schuknecht décrite pour la première une approche intradurale d'obstruction du canal endolymphatique (Kimura 1965). Bien qu'efficace, cette technique, qui nécessite la pénétration du revêtement protecteur du cerveau, engagés un niveau indésirable de la morbidité et de mortalité chez les sujets animaux. Par conséquent, Andrews et Bohmer développé une approche extradural, qui produit moins de façon prévisible des complications associées au système nerveux central (SNC) la pénétration. (Andrews et Bohmer 1989)

L'approche décrite ici extradural exige d'abord une incision médiane dans la région de l'occiput pour exposer la couche musculaire sous-jacent. Nous intervenons uniquement sur le côté droit. Après rétraction du tissu appropriés sus-jacente, une incision horizontale est pratiquée dans la musculature de l'occiput droit d'exposer la ligne de suture temporo-occipital droit. Les os immédiatement inferio-latérale de la ligne de suture (Fig. 1) est ensuite percé avec une perceuse otologiques jusqu'à ce que le sinus sigmoïde devient visible. Rétraction médiale du sinus sigmoïde révèle l'opercule du conduit endolymphatique, qui abrite le sac endolymphatique. Forage en dedans de l'opercule dans la région du sac endolymphatique révèle le canal endolymphatique, qui est ensuite emballée avec de la cire osseuse à produire une obstruction et finalement ELH.

Dans les semaines suivantes, l'animal montrent le développement progressif, la perte d'audition fluctuante et la preuve histologique d'ELH.

Protocole

Partie 1: Anesthésie et préparation à la chirurgie

1. Un adulte, femelle Duncan-Hartley de porc Guinée auprès de Charles River Laboratories international, Inc (Wilmington, MA) est anesthésié à la kétamine 60 mg / kg et de xylazine à 12 mg / kg par voie intramusculaire.
2. Lubrifiant Petroleum est appliqué sur les yeux afin de protéger l'animal de lésion cornéenne due à la dessiccation.
3. L'animal est rasé par le haut de la tête sur les épaules et entre les oreilles.
4. La zone rasée est préparée de façon stérile, d'abord avec 7,5% de povidone-iode suivie par 70% d'alcool éthylique.
5. L'animal est placé sur une table d'opération avec couverture chauffante et sur une plate-forme qui élève la tête et du cou fléchit. La tête de l'animal est dirigé loin de l'opérateur. La flexion de la nuque adéquate est requise afin de répondre adéquatement exposer la crête occipitale.
6. L'animal est drapé d'une façon stérile.

Partie 2: L'incision et l'exposition de l'occiput osseuse

1. La bupivacaïne, plus d'adrénaline (marcaïne) 0,25% est appliquée le long du site d'incision prospective (ligne médiane dorsale incision de la peau le long de la protubérance occipitale). Cela provoque une vasoconstriction locale, limitant saignements, et fournit une durée analgésie postopératoire après que l'animal se réveille.
2. Incision médiane peau dorsale est faite sur le cuir chevelu le long de la protubérance occipitale.
   
   Figure 1: L'incision cutanée est faite le long de la ligne médiane dorsale, comme indiqué ci-dessus.
3. Pour obtenir une exposition adéquate, la peau est écarté en dehors en plaçant une petite pince hémostatique courbe sur chaque côté de l'incision.
4. Une incision horizontale est pratiquée le long du muscle du cou pour exposer l'occiput osseux. A ce stade, l'animal peut contraction, malgré une anesthésie adéquate en raison de section transversale du nerf grand occipital. Section de la moelle épinière est un danger avec incision horizontale dans la région sous-occipitale. Cette complication peut être évitée en veillant à ce que l'os sous-jacent est toujours senti sous le bistouri.
5. Avec la musculature sous-occipitale incisées à l'os, un hémostatique troisième est utilisé pour rétracter le bord du muscle de qualité supérieure. Cette hémostatique est maintenu en place par l'assistant en chirurgie.
6. Un Lempert rugine est utilisée pour exposer la suture temporo-occipitale.

Partie 3: Forage de la suture temporo-occipitale

1. Lors de l'exposition de la suture temporo-occipital (figure 2), une perceuse otologiques avec 1,5 mm de bavures diamant est utilisée pour forer inferio-latéralement à la suture.
2. Ci-dessous la table externe du crâne, la texture spongieuse du diploé (L'os spongieux intervenant entre les tables du crâne) va devenir visible. Une fois le diploé a été foré loin, la table interne du crâne apparaît, avec une teinte bleu pâle qui est le sinus sigmoïde.
3. Les marges du sinus sigmoïde sont définies sans pénétrer dans le navire.
4. Une fois l'os recouvrant le sinus sigmoïde a été suffisamment éclaircis, plus fort grossissement est utilisée et un choix de droite est utilisé pour enlever soigneusement l'os recouvrant le sinus sigmoïde.

Figure 2 La zone à être forés partie recouvre la suture temporo-occipitale.

Partie 4: l'obstruction du canal

1. Le sinus sigmoïde squelette est rentré dedans pour révéler l'opercule.
2. Un diamant de 0,5 mm bavure est utilisée pour forer dedans de l'opercule et dans le sac endolymphatique et le canal.
3. Le canal endolymphatique est ensuite emballé avec de la cire d'os à l'aide un pick droite.
4. Le défaut crâne est ensuite renforcée avec Gelfoam (Pfizer, New York, NY).
5. 4-0 POLYSORB (United States Surgical, Norwalk, CT) de suture est utilisée pour amener le muscle ensemble. Il ya donc une transition en douceur à une technique de suture sous-cutanée pour la fermeture de l'incision cutanée. Avec cette fermeture il n'est pas nécessaire d'enlever les sutures après et il n'ya aucun risque que l'animal griffe sur le site et tirez un fil de suture.

Partie 5: Soins postopératoires

Le cochon de Guinée est mis dans un incubateur pour maintenir la température du corps et vérifié à intervalles de 30 minutes jusqu'à ce éveillé et capable de maintenir une position sternale. L'animal est inspecté pour le taux de respiration et de la couleur du corps. Ce centre utilise l'enrofloxacine (0,2 mL à 22,7 mg / ml, sous-cutanée) et la buprénorphine (0,05 ml à 0.3mg/mL, sous-cutanée) pour la prophylaxie des infections post-opératoires et contrôle de la douleur, respectivement. Analgésique est administré une fois le jour de la chirurgie et deux fois le jour post-opératoire un et deux. Bien que les antibiotiques ne sont pas nécessaires pour su aseptiquesrgery, une durée de cinq jours, deux fois par jour bien sûr des antibiotiques à titre prophylactique peut être givenonce sur le post-opératoire de trois jours.

Complications et de gestion

1. La dépression respiratoire Le chirurgien doit toujours être conscient de la respiration de l'animal s. Si la respiration ralentit ou s'arrête, arrêter la chirurgie et d'inspecter visuellement le mouvement thoracique. Si l'animal éprouve de la difficulté respiratoire ou une respiration laborieuse, vérifier que la bouche et des voies respiratoires ne sont pas obstruées.
2. Utilisez des sinus sigmoïde Gelfoam pénétration et de compression ainsi que la pointe d'aspiration jusqu'à ce saignement est arrêté.
3. Pénétration de Dural couvrir le défaut d'Gelfoam.
4. Lésions vestibulaires Ne pas percer plus de 1 mm latéral du sinus sigmoïde. Cela risque en blessant le canal semi-circulaire postérieur, ce qui invaliderait toutes les données pour le cochon de Guinée.

Discussion

Dans les semaines qui suivent l'obstruction chirurgicale du canal endolymphatique, le sujet des expériences animales fluctuant perte auditive neurosensorielle telle que mesurée par la réponse évoquée auditive évoquée. Un échantillon de auditifs du tronc cérébral (ABR) l'enregistrement est montré dans la figure 3. L'oreille gauche sert de contrôle non opérés.
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