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drosophile Collecte et déchorionnation des œufs : une méthode pour éliminer la couche d’œuf la plus externe

30 avril 2023

Dans cet article

Résumé

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Source : Koyle, M. L., et al. Élevage de la mouche des fruits Drosophila melanogaster dans des conditions axéniques et gnotobiotiques. J. Vis. Exp. (2016).

L’embryon de drosophile est entouré de membranes externes protectrices. Pour accéder à l’embryon, le chorion – la plus externe des membranes – est souvent retiré. Cette vidéo décrit une méthode de déchorionisation couramment utilisée à l’aide d’hypochlorite de sodium. L’exemple de protocole illustre la procédure tout en utilisant des techniques stériles nécessaires à l’élevage d’animaux axéniques ou gnotobiotiques.

Protocole

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Ce protocole est un extrait de Koyle et al., Rearing the Fruit Fly Drosophila melanogaster Under Axenic and Gnotobiotic Conditions, J. Vis. Exp.(2016).

1. Préparer les cages de ponte

  1. Préparez des assiettes d'agar au jus de raisin en faisant cuire au micro-ondes 100 ml d'eau, 10 g de levure de bière, 10 g de glucose et 1 g d'agar. Portez à ébullition 3 fois à l’étape 1.1 et ajoutez 10 g de concentré de jus de raisin congelé pour augmenter la visibilité des œufs sur la plaque de gélose.
  2. Lorsque la gélose a refroidi à 55 °C, verser 20 ml dans des boîtes de Pétri de 100 mm et laisser se solidifier.
  3. Recouvrez la surface des plaques de gélose d'une pâte de levure en mélangeant 1 g de levure de bière avec 15 g d'eau. Versez la pâte de levure sur la plaque de gélose en vous assurant que la surface est couverte, puis videz l’excédent en laissant un mince résidu de levure. Si plusieurs plaques sont utilisées, la pâte peut être versée séquentiellement sur plusieurs plaques.
  4. Transférez les plaques de gélose au fond d’une cage.
    REMARQUE : Un contenant de charcuterie de 32 oz est un bon substitut aux cages à mouches en acrylique.
    1. Faites des couvercles pour les contenants de charcuterie de 32 oz en découpant un trou dans le haut et en collant un filet respirant sur le trou avec de la colle non toxique. Si la colle est soluble dans l’eau, évitez l’exposition de l’eau au couvercle.
  5. Transférez 200 à 300 mouches dans le récipient et couvrez avec un couvercle. Couvrez le trou protégé par un filet avec un couvercle de boîte de Pétri vide pour éviter l’évaporation de la surface de la gélose et ajoutez un papier de soie humide à l’intérieur du couvercle si vous le souhaitez. Incuber les mouches à 25 °C pendant la nuit pendant 16 à 20 heures.

2. Collecter les œufs

  1. Préparez un tamis pour la collecte des œufs en plaçant un treillis de nylon dans une douille en plastique.
  2. Pour récupérer la plaque avec des œufs dessus, retirez les mouches de la cage en les transférant dans un récipient vide. Si les mêmes mouches sont utilisées le lendemain, transférez-les immédiatement dans une nouvelle cage contenant une plaque de gélose au jus de raisin fraîchement levée. Les mouches peuvent être utilisées pendant 3 à 5 jours consécutifs
  3. Retirez les mouches mortes de l’agar avec un pinceau propre, en faisant attention de ne pas briser l’agar.
  4. Récupérez les œufs en rinçant la plaque de gélose avec de l’eau distillée, en brossant doucement les œufs de la surface de la gélose et en versant la bouillie sur le grillage. Répétez 3 à 4 fois jusqu’à ce que tous les œufs ou la plupart aient été retirés de la plaque de gélose.

3. Déchorionner les œufs et les transférer à un régime stérile

  1. Préparez l’enceinte de biosécurité en vaporisant l’intérieur (y compris les côtés) avec de l’éthanol à 70 %. Essuyez le fond avec un mouchoir de laboratoire et stérilisez la cagoule avec une lumière UV pendant ~15 min. Stérilisez toutes les fournitures non biologiques (gobelets à échantillons, pinceau, pinces, récipient à déchets, 400 ml d’eau stérilisée et 100 ml d’hypochlorite de sodium à 0,6 %) en les vaporisant de l’éthanol et en les plaçant immédiatement dans l’enceinte de sécurité biologique. Stériliser à la lumière UV pendant 15 min.
  2. Commencez le premier des 2 lavages à l’hypochlorite de sodium en plaçant la douille avec les œufs dans un gobelet à échantillons de 120 ml ou un autre récipient stérile. Versez lentement ~90 ml de solution d’hypochlorite de sodium à 0,6 % dans la douille jusqu’à juste en dessous du rebord.
  3. Rincer les œufs pendant 2,5 min. Remettre périodiquement les œufs en suspension à l’aide d’une pince pour déplacer la douille de haut en bas dans la solution d’hypochlorite.
  4. Transférez la douille directement dans un deuxième gobelet d’échantillon, pré-rempli de 90 ml d’eau de Javel, à l’intérieur de l’enceinte de biosécurité.
  5. Répétez l’étape 3.3 à l’intérieur de l’enceinte de sécurité biologique. À la fin du deuxième traitement à l’eau de Javel, les œufs doivent commencer à adhérer aux côtés de la bague.
  6. Effectuez les étapes 3.7-3.8 dans l’enceinte de biosécurité.
  7. Jetez l’eau de Javel et lavez la douille à l’eau stérile 3 fois. Remettez les œufs en suspension plusieurs fois lors de chaque lavage en déplaçant la douille à l’aide d’une pince. À la fin du troisième lavage, la plupart des œufs doivent être attachés sur le côté de la bague.
  8. À l’aide d’un pinceau stérilisé à l’éthanol, transférez les œufs du côté de la douille à la ration stérile. Transférez les œufs individuellement ou en petits lots. Visez 30 à 50 œufs par flacon. Laissez les capuchons desserrés pour permettre à l’oxygène de pénétrer dans le tube.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Levure de bièreMP Biomedicals, LLC.903312http://www.mpbio.com/product.php?pid=02903312
glucoseSigma Aldrich158968-3KGhttp://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/aldrich/158968?lang=en®ion=US
agar-agarFisher--Lab ScientificFLY802010https://www.fishersci.com/shop/products/drosophila-agar-8-100mesh-10kg/nc9349177
Concentré de jus de raisin 100 % Welch'sWalmart ou autre épicerie9116196http://www.walmart.com/ip/Welch-s-Frozen-100-Grape-Juice-Concentrate-11.5-oz/10804406
Cage : Récipient de charcuterie rond translucide de 32 ozBoutique WebstaurantRéférence 999L5032Yhttp://www.webstaurantstore.com/newspring-delitainer-sd5032y-32-oz-translucent-round-deli-container-24-pack/999L5032Y.html
Couvercle de récipient de charcuterie rond translucideBoutique Webstaurant999YNL500http://www.webstaurantstore.com/newspring-delitainer-ynl500-translucent-round-deli-container-lid-60-pack/999YNL500.html
Bouteilles en stockGenesee Scientific32 à 130https://geneseesci.com/shop-online/product-details/?product=32-130
Droso-PlugsGenesee Scientific49 à 101https://geneseesci.com/shop-online/product-details/?product=49-101
Maille de nylonGenesee Scientific57 à 102https://geneseesci.com/shop-online/product-details/715/?product=57-102
Douille en plastiqueHome Depot100404002http://www.homedepot.com/p/Carlon-1-in-Non-Metallic-Terminal-Adapter-E943FR-CTN/100404002
Capuchon de douille en plastiqueHome Depot100153897http://www.homedepot.com/p/1-1-4- en-Silent-Plastic-Isolé-Pack-27529/100153897
Coupe à spécimenPartenaires MedSupplyRéférence K01-207067http://www.medsupplypartners.com/covidien-specimen-containers.html
Répéteur M4Eppendorf4982000322https://online-shop.eppendorf.us/US-en/Manual-Liquid-Handling-44563/Dispensers--Burettes-44566/Repeater-M4-PF-44619.html
Tubes à centrifuger de 50 mlTubes à centrifuger TrueLineTR2003https://www.lpsinc.com/Catalog4.asp?catalog_nu=TR2003
Boîtes de nourritureScientifique américainRéférence 2316-5001http://www.usascientific.com/search.aspx?find=2316-5001
Matrice de lyse D en vracMP Biomedicals, LLC.116540434http://www.mpbio.com/search.php?q=6540-434&s=Search
Pointes de pipette filtrante, 300 μlScientifique américainRéférence 1120-9810http://www.usascientific.com/search.aspx?find=1120-9810
PétriVente de produits de laboratoireM089303https://www.lpsinc.com/Catalog4.asp?catalog_nu=M089303
éthanolLaboratoires Decon, INC.Référence 2701http://www.deconlabs.com/products.php?ID=88
pinceauWalmartRéférence 5133http://www.walmart.com/ip/Chenille-Kraft-5133-Acrylic-Handled-Brush-Set-Assorted-Sizes-colors-8-Brushes-set/41446005
forcepspêcheurRéférence 08-882https://www.fishersci.com/shop/products/fisherbrand-medium-pointed-forceps-3/p-128693
Eau de Javel domestique (6-8 % d’hypochlorite)Walmart550646751http://www.walmart.com/ip/Clorox-Concentrated-Regular-Bleach-121-fl-oz/21618295
Peptone universelGenesee Scientific20 à 260https://geneseesci.com/shop-online/product-details/?product=20-260
Extrait de levure Fisher ScientificRéf. BP1422-500https://www.fishersci.com/shop/products/fisher-bioreagents-microbiology-media-additives-yeast-extract-3/bp1422500?matchedCatNo=BP1422500
Phosphate dipotassiqueSigma AldrichP3786-1KGhttp://www.sigmaaldrich.com/catalog/
Citrate d’ammoniumSigma Aldrich25102-500ghttp://www.sigmaaldrich.com/catalog/
Acétate de sodiumVWRRéférence 97061-994https://us.vwr.com/store/catalog/product.jsp?catalog_number=97061-994
Sulfate de magnésiumFisher ScientificM63-500https://www.fishersci.com/shop/products/magnesium-sulfate-heptahydrate-crystalline-certified-acs-fisher-chemical-3/m63500?matchedCatNo=M63500
Sulfate de manganèseSigma AldrichRéférence 10034-96-5http://www.sigmaaldrich.com/catalog/
MRS PoudreSigma AldrichRéférence 69966-500Ghttp://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sial/69966?lang=en®ion=US
Lecteur de plaques à 96 puitsBioTek (époque)Nahttp://www.biotek.com/products/microplate_detection/
Tubes à centrifuger de 1,7 mlScientifique américainRéférence 1615-5500http://www.usascientific.com/search.aspx?find=1615-5500
Pointes de pipette à filtre, 1 000 μlScientifique américain1122-1830http://www.usascientific.com/search.aspx?find=1122-1830
Plaques à 96 puitsGreiner Bio-One655101https://shop.gbo.com/en/usa/articles/
Perles en céramiqueMP Biomedicals, LLC.Référence 6540-434http://www.mpbio.com/product.php?pid=116540434
Homogénéisateur de tissusMP Biomedicals, LLC.116004500http://www.mpbio.com/product.php?pid=116004500
Enceinte de biosécurité de classe 1Thermo ScientificModèle 1395http://www.thermoscientific.com/en/product/1300-series-class-ii-type-a2-biological-safety-cabinet-packages.html

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Mots-clés

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