Ce protocole est un extrait de Barradale et al., Quantification of Drosophila Grooming Behavior, J. Vis. Exp.(2017).
- Préparez un aspirateur pour déplacer les drosophiles vivantes d’un flacon de culture à la chambre de toilettage. Les aspirateurs permettent le transfert d’animaux conscients vers les chambres comportementales pour s’assurer que l’anesthésie n’affecte pas l’observation comportementale ultérieure.
- À l’aide de ciseaux, coupez 1,5 pied de tube en tygon ID 1/8 », OD 1/4 ». Coupez au moins 1 pouce de l’embout d’une micropipette jetable de 1 ml. Tenez un morceau de maille carré de 1 cm (ouverture 0,196 pouce) sur la pointe coupée.
REMARQUE : La plupart des embouts de 1 ml ont une ligne de gradation où l’embout se trouve dans la boîte d’emballage, généralement coupé à cette ligne.
- Placez confortablement une pointe de micropipette fraîche de 1 ml sur la maille ou la pointe coupée. Observez le maillage former une barrière étanche entre les deux pointes. L’intérieur de la nouvelle pointe crée une chambre de maintien pour les mouches.
- Coupez l’extrémité de l’embout de la nouvelle micropipette pour élargir suffisamment l’ouverture pour permettre le passage d’une seule mouche. Le trou correspondra à peu près à l’ouverture de la chambre de toilettage (environ 1,5 à 2 mm de diamètre).
- Ajustez parfaitement les pointes emboîtées à l’extrémité du tube en tygon. Poussez les pointes dans le tube pour assurer un ajustement serré afin de permettre la pression du vide.
- À l’autre extrémité du tube, coupez l’extrémité d’une pointe de micropipette de 200 μL et insérez l’extrémité étroite coupée dans le tube. Il s’agit du côté « bouche » de l’aspirateur.