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Tampons et milieux
Pour les expériences MAPS, préparez les tampons et les milieux suivants :- Tampon A (150 mM KCl, 20 mM Tris-HCl pH 8, 1 mM MgCl2 et 1 mM DTT)- Tampon E (250 mM KCl, 20 mM Tris-HCl pH 8, 12 mM maltose, 0,1 % Triton, 1 mM MgCl2 et 1 mM DTT)
Préparation de la colonne
ATTENTION : Veillez à ne pas laisser sécher la résine amylose. Si nécessaire, scellez la colonne avec un embout. Préparez toutes les solutions avant de commencer la purification par affinité.
- Placez une colonne de chromatographie dans un rack de colonne.
- Retirez l’embout de la colonne et lavez-la avec de l’eau ultra-pure.
- Ajouter 300 μL de résine amylose.
- Lavez la colonne avec 10 ml de tampon A.
- Diluez 1 200 pmol de protéine MBP (Maltose-binding protein)-MS2 dans 6 mL de tampon A et chargez-le dans la colonne.
- Lavez la colonne avec 10 ml de tampon A.
Purification par affinité MS2 (Figure 1)
- Chargez le lysat cellulaire dans la colonne.
REMARQUE : Conservez 1 mL de lysat cellulaire (extrait brut, CE) pour extraire l’ARN total et effectuez une analyse par transfert de Northern et une analyse transcriptomique. - Recueillir la fraction d’écoulement (FT) dans un tube de collecte propre.
- Lavez la colonne 3 fois avec 10 ml de tampon A. Récupérez la fraction de lavage (W).
- Éluer la colonne avec 1 mL de tampon E et recueillir la fraction d’élution (E) dans un microtube de 2 mL.
- Conservez toutes les fractions collectées sur de la glace jusqu’à l’extraction de l’ARN ou congelez-les à -20 °C pour une utilisation ultérieure.