Article de méthode

Isolement et culture de bactéries Clostridioides difficile à partir de larves d’intestin de poisson-zèbre

26 septembre 2025

Dans cet article

Résumé

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Source : Li, J., et. al., Développement d’un modèle d’infection larvaire du poisson-zèbre pour Clostridioides difficile. J. Vis. Exp. (2020)

Cette vidéo démontre l’isolement et l’élevage de la bactérie Clostridioides difficile dans l’intestin de larves de poisson-zèbre. L’intestin infecté est disséqué, homogénéisé et incubé dans un milieu anaérobie sélectif contenant des antibiotiques. Ces conditions suppriment les microbes concurrents et favorisent la croissance de cellules viables.

Protocole

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Dissection d’une larve d’intestin de poisson-zèbre pour récupérer des Clostridioides difficile viables

  1. Isolez les tractus gastro-intestinaux des larves pour analyser la charge bactérienne. Commencez par euthanasier les larves de poisson-zèbre avec 0,4 % de tricaïne.
  2. Rincez brièvement le poisson-zèbre avec du PBS stérile 1x (solution saline tamponnée au phosphate) et transférez-le dans une plaque d’agarose fraîche.
  3. Dissection du poisson-zèbre
    1. Insérez une aiguille dans le tronc dorsal des larves de poisson-zèbre près de la tête pour immobiliser le poisson-zèbre. Retirez la tête derrière les branchies avec une lancette.
    2. Insérez la deuxième aiguille au milieu du tronc dorsal. Insérez la troisième aiguille dans l’abdomen du poisson-zèbre et retirez l’intestin de la cavité corporelle.
      NOTE: Des précautions extrêmes sont nécessaires pour isoler l’intestin intact. S’il est difficile de le faire, effectuez des tractions supplémentaires pour séparer le reste de l’intestin des organes internes restants.
    3. À l’aide d’une aiguille de micro-injection, transvaser 10 à 15 intestins dans un tube de 1,5 mL contenant 200 μL stériles de 1x PBS.
    4. Homogénéisez les intestins à l’aide d’un pilon pour perturber les tissus et préparez des homogénats. Assurez-vous que le pilon atteint le fond du tube pour perturber complètement tous les intestins.
  4. Incuber les homogénats dans un milieu d’élevage de C. difficile contenant de la D-cyclosérine et de la céfoxitine, avec ou sans taurocholate (TCA, un germinant de spores de C. difficile ) dans une chambre anaérobie.
  5. Incuber la plaque en anaérobie pendant 48 h à 37 °C.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
AgaroseSigma-AldrichA2576Agarose gélifiante ultra-faible
Agarose à bas point de fusion (LM)Pronadisa8050Il est utilisé dans les plaques d’agarose
Clostridioides difficile  R20291,, une souche de ribotype 027, production de TcdA+/TcdB+/CDT+
Extracteur d’aiguille horizontalSutter instrument IncP-87 
Micro-injecteurEppendorf5253000017 
TaurocholateCarl Roth GmbH8149 
TricaïneSigma-AldrichE10521 

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Mots-clés

Incubation ana robieMilieux s lectifsHomog n isation tissulaireDissection intestinaleSuppl mentation antibiotiqueIsolement microbienCulture bact rienneChambre ana robie

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