1. Protocole d’activation et de contrôle de la qualité des cultures de bactéries lactiques (LAB)
- Sortez le stock de glycérol préparé des souches LAB (dans des tubes à centrifuger de 2 ml) du congélateur à très basse température de -80 °C et ne les laissez pas décongeler avant utilisation.
- Nettoyez et désinfectez l’ouverture des tubes à centrifuger avec de l’alcool à 70 %, et agitez doucement avant utilisation.
- Pipeter environ 250 μL (0,25 ml) de la culture mère LAB des tubes à centrifuger dans des tubes à essai MRS frais de 2 mL (milieux deMan, Rogosa et Sharpe).
- Vortex doux, parafilmez les tubes à essai et incubez-les en anaérobie pendant une nuit à 42 °C pendant 12 à 16 h.
- Prélever environ 500 μL (0,5 ml) des cultures cultivées pendant la nuit des tubes à essai MRS de 2 mL dans des tubes à essai MRS frais de 7 mL, vortex, et les incuber en anaérobie pendant une nuit à 42 °C pendant 12 à 16 h.
- Évaluez la croissance microbienne en mesurant la densité optique (DO) ou la croissance des cultures à 610 nm avec un spectrophotomètre UV-visible et en enregistrant des résultats acceptables entre 0,7 et 0,9.
- Striez les cultures d’une nuit à partir des tubes de 7 mL de SRM sur des plaques de gélose MRS et MRCM-PYR (milieu clostridien renforcé modifié-pyruvate) et incuberez-les en anaérobie pendant 72 h à 42 °C.
- Les colonies isolées sont prélevées sur les plaques de gélose, transférées dans des tubes à essai MRS frais de 7 mL, légèrement vortex et incubées en anaérobie pendant une nuit à 42 °C pendant 12 à 16 h.
- Conservez les plaques de gélose contenant les souches isolées à 4 °C au réfrigérateur pendant une semaine.
- Mesurer et confirmer la DO (entre 0,7 et 0,9) des tubes à essai MRS de 7 mL des cultures LAB isolées des plaques striées à 610 nm et les utiliser comme cultures de travail pour toutes les expériences connexes.
- Pour obtenir un rapport de 1:10, effectuez des dilutions d’une dizaine de fois (dilutions en série) des cultures LAB cultivées à partir des tubes à essai MRS finaux de 7 mL en utilisant 9 mL d’eau peptonée (un tampon physiologique).
- Enfin, prélever environ 250 μL (0,25 mL) à partir de dilutions en série appropriées pour toutes les expériences de fermentation.
- Activer le bouillon contenant des souches (250 μL) à partir de l’étape 2.12 en les transférant dans du bouillon MRS frais de 7 mL et en les incubant en anaérobie à 42 °C pendant 16 h.
NOTE: Toutes les souches de L. bulgaricus ont été activées dans le bouillon MRS fraîchement préparé, puis ont été incubées en anaérobie à 42 °C pendant 16 h afin d’atteindre une densité optique (DO610 nm) de croissance bactérienne comprise entre 0,7 et 0,9. La croissance bactérienne a été mesurée à l’aide d’un spectrophotomètre UV-visible à 610 nm. Les valeurs de pH des cultures de nuit étaient de l’ordre de 3,5 à 5,3 en raison de la production d’acide lactique, un produit final biologique de la fermentation LAB. Les procédures de sécurité, telles que la bonne circulation de l’air dans la hotte de biosécurité et l’évitement des brûlures lors de l’utilisation du bec Bunsen, ont été respectées et observées.