Article de méthode

Visualisation des interactions bactériennes unicellulaires

30 octobre 2025

Dans cet article

Résumé

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Source : Yarringto, K. D., et al. Visualisation cinétique des interactions bactériennes unicellulaires interespèces. J. Vis. Exp. (2020)

Cette vidéo montre la préparation d’un système de coculture utilisant des bactéries mobiles et non mobiles sous un tampon d’agarose pour l’imagerie de cellules vivantes. Il montre comment les bactéries mobiles détectent les attractifs chimiques et envahissent les colonies non mobiles, révélant ainsi les interactions bactériennes.

Protocole

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1. Préparation des cellules bactériennes et des tampons d’inoculation

  1. Mesurer la densité optique, OD600, de chaque sous-culture et diluer Pseudomonas aeruginosa à une DO600 = 0,03 et Staphylococcus aureus à une DO600 = 0,10 dans M8T (Minimal Medium 8 + tryptone) préchauffé à 37 °C. Mélanger P. aeruginosa et S. aureus dans un rapport de 1:1 et vortex.
    NOTE: Si les souches nécessitent des antibiotiques, ils peuvent être ajoutés à la culture pendant la nuit et à la sous-culture, mais ils ne doivent pas être ajoutés lors du mélange des espèces pour l’imagerie s’ils affectent les autres espèces de la coculture. La stabilité du plasmide et les effets des antibiotiques sur toutes les espèces de la coculture devront être déterminés pour chaque organisme ou plasmide utilisé.
  2. Pipeter 1 μL de coculture uniformément au fond d’une boîte en verre stérile préchauffée de 35 mm.
  3. Retirez la découpe en silicone du moule à l’aide d’une pince à épiler stérile.
  4. Retirez le tampon du plat à l’aide de spatules stériles.
    1. Glissez la spatule légèrement pliée sous le bord du tampon tout en tenant le moule à l’envers pour le déposer sur un couvercle de plaque de Petri stérile.
      NOTE: Ne forcez pas le tampon, sinon il se déchirera. Gardez une trace de quel côté du coussin se trouve le bas.
  5. Transférez le tampon dans la boîte contenant les cellules bactériennes, le fond vers le bas, en glissant la spatule inclinée à 90° sous le tampon et en la plaçant sur la lamelle inoculée. À l’aide de la spatule inclinée à 90°, faites en sorte que le tampon affleure la lamelle et appuyez doucement sur les bulles d’air.
  6. Enlevez l’excès d’humidité des lingettes humides et placez-les sur le bord du plat, en vous assurant qu’elles ne touchent pas le tampon. L’échantillon est maintenant prêt pour l’imagerie.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Coussinets d’agarose   
Plat à fond en verre de 35 mm avec micro-puits de 20 mm avec verre de couverture de 1,5CellvisD35-20-1.5-NUn pour les moules à tampons d’agarose, un pour l’expérience
Spatules rondes effiléesVWR82027-530 
Isolateur en silicone, press-to-seal, 1 puits, 2,0 mm de diamètre, 20 mm, silicone/adhésifSigma-AldrichRéf. S6685-25EAPour moules à tampons d’agarose
BrucellesVWR89259-944 
M8T Média minimal   
D (+) GlucoseRPIRéférence G32045 
KH₂PO₄RPIP250500 
MgSO₄Sigma-Aldrich208094 
NaClRPIRéf. S23025 
Na₂HPO₄·7H₂OSigma-Aldrich230391 
TryptoneBD BiosciencesDF0123173 
Souches bactériennes   
Pseudomonas aeruginosa PA14 (WT) pSMC21 (Ptac-GFP)PMID : 9361441  
Staphylococcus aureus USA300 LAC (WT)PMID : 23404398 USA300 CA-Méthicilline souche LAC résistante sans plasmides

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Mots-clés

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