Cette vidéo démontre l’isolement des plastoglobules des cyanobactéries à l’aide de la centrifugation par gradient de densité de saccharose, mettant en évidence leur nature riche en lipides et à faible densité et assurant leur préservation structurelle pour l’analyse en aval.
Protocole
1. Récolte de plastoglobules purs
Traitement des cyanobactéries
Produire un gradient de saccharose dans quatre tubes d’ultracentrifugation de 2,5 mL superposés d’abord avec 500 μL de plastoglobules bruts de l’étape 1.3 mélangés à 750 μL de milieu R 0,7, puis superposer avec 750 μL de milieu R 0,2 (tableau 1)
Centrifuger le gradient de saccharose à 150 000 x g pendant 90 min à 4 °C. Prélever les plastoglobules purs (figure 1C) à l’aide d’une seringue et d’une aiguille de 22 G de la phase supérieure du gradient de saccharose et les transférer dans un tube de 1,5 mL.
Aliquote les plastoglobules purs et congélation instantanée dans de l’azote liquide. Conserver directement à −80 °C ou lyophiliser en une poudre sèche.
Tableau 1 : Recettes de tampons pour l’isolement des plastoglobules des cyanobactéries.
R moyen
50 mM HEPES-KOH (pH 8,0)
5 mM MgCl2
R moyen 0,2
50 mM HEPES-KOH (pH 8,0)
5 mM MgCl2
0,2 M de saccharose
R moyen 0,7
50 mM HEPES-KOH (pH 8,0)
5 mM MgCl2
0,7 M de saccharose
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Résultats
Figure 1 : Isolement et immunoblotting de plastoglobules et de thylakoïdes. (A) Un échantillon représentatif de plastoglobule purifié de Z. mays avant l’extraction du gradient de saccharose. (B) Un éc...
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