Article de méthode

Blocage de réplication médié par une protéine répressive marquée fluorescentement dans Escherichia coli

28 novembre 2025

Dans cet article

Résumé

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Source : Mettrick, K. A., Lawrence, et al., Induire un blocage de réplication spécifique au site chez E. coli à l’aide d’un système opérateur de répresseur fluorescent. J. Vis. Exp. (2016)

Cette vidéo montre un blocage de la fourche de réplication spécifique à un site chez Escherichia coli en utilisant l’expression induite par l’arabinose de TetR jaune fluorescent marqué par une protéine qui se lie aux réseaux chromosomiques de tetO.

Protocole

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1. Blocage de la réplication avec un système opérateur de répresseur de fluorescence (FROS)

  1. Induction du blocage de la réplication
    1. Diluer une culture fraîche d’une souche d’E. coli transportant un réseau tetO et pKM118 jusqu’àOD 600nm = 0,01 dans un milieu complexe dilué (0,1 % de tryptone, 0,05 % d’extrait de levure, 0,1 % de NaCl, 0,17 MKH 2PO4, 0,72 MK 2HPO 4) avec les antibiotiques nécessaires pour la sélection.
      NOTE: N’ajoutez pas de tétracycline pour la sélection car elle n’est pas compatible avec ce système. Faites en sorte que le volume de la culture soit équivalent à 10 ml par échantillon requis. Par exemple, le volume de culture pour le plan expérimental de la Figure 1 est de 60 ml.
    2. Poussez à 30 °C avec secouage jusqu’à un OD600 nm = 0,05-0,1. Retirez un échantillon de 10 ml pour servir de témoin non induit et ajoutez 0,1 % d’arabinose à la culture restante pour induire la production de TetR-YFP à partir de pKM1. Continuez à cultiver à la fois les cultures non induite et induite. Après 1 heure, vérifiez la présence d’un point focal unique dans chaque cellule de la culture induite à l’aide de la microscopie à fluorescence.
    3. Si les cellules induites sont confirmées comme bloquées (plus de 70 % des cellules ont un seul foyer), enregistrez le OD600nm et prélevez un échantillon de 7,5 ml pour analyse par gel 2D. Prélèvez un échantillon équivalent de la culture témoin non induite.

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Résultats

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Figure 1 : Aperçu du bloc de réplication FROS et de la procédure expérimentale de libération. Les souches d’E. coli transportant le réseau tetO sont cultivées à 30 °C. Lorsque les cellules atteignent un ODde 600nm supérieur ...

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
TryptoneSigma-Aldrich16922Composante des milieux de croissance
Chlorure de sodiumVWR27810.364Composante des milieux de croissance
Extrait de levureSigma-Aldrich92144Composante des milieux de croissance
Monobase phosphate de potassiumSigma-AldrichP9791composante média de croissance ; Composant tampon potassique
Dibase phosphate de potassiumSigma-AldrichP3786composante média de croissance ; Composant tampon potassique
L-ArabinoseSigma-AldrichA3256Pour l’induction de la production du TetR-YFP
Microscope à fluorescence Axioskop 2Zeiss452310Visualisation des cellules
Ensemble de filtres eYFPTechnologie Chroma41028Visualisation de YFP
Caméra CCDHamamatsuOrca-AGVisualisation des cellules
Logiciel MetaMorph (Dispositifs moléculaires)SDR Scientific31282Version 7.8.0.0 utilisée dans la préparation de ce manuscrit

Réimpressions et autorisations

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Mots-clés

Prot ine r presseur fluorescenter seau d op rateurs de la t tracyclineinduction l arabinosemicroscopie fluorescencelectrophor se bidimensionnelle sur gelprot ine fluorescente jauner presseur de la t tracycliner plication sito sp cifique

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