1. Survie bactérienne après des conditions de transit gastro-intestinal in vitro
NOTE: Préparez des fluides digestion simulés avec les modifications décrites ci-dessous. Préparez toutes les dilutions avec de l’eau ultrapure. Filtrez toutes les solutions à travers un filtre de 0,22 μm et effectuez la procédure de digestion dans des conditions stériles.
- Digestion orale :
- Placer 3 mL de la communauté bactérienne dans un tube stérile de 50 mL, mélanger avec 3 mL de liquide salive simulé (SSF), contenant en millimoles par litre (mmol L⁻¹) : chlorure de potassium (KCl), 15,1 ; Phosphate monopotassique (KH₂PO₄), 3,7 ; Bicarbonate de sodium (NaHCO₃), 6,8 ; Chlorure de magnésium hexahydraté (MgCl₂·6H₂O), 0,5, carbonate d’ammonium [(NH₄)₂CO₃], 0,06 ; Acide chlorhydrique (HCl), 1.1 ; Chlorure de calcium dihydré (CaCl₂·2H₂O), 0,75. Ajoutez 75 U/mL de α-amylase provenant de la salive humaine de type IX-A et 2 g/L de mucine provenant de l’estomac porcin (type II) à la SSF.
- Incubez le mélange pendant 2 minutes à 37 °C et 100 tr/min. Prélever un échantillon de 2 mL pour l’extraction d’ADN et la quantification par cytométrie en flux (S1).
2. Digestion gastrique :
- Ajouter 4 mL de liquide gastrique simulé (SGF), contenant (en mmol L-1) : KCl, 6,9 ; KH₂PO₄, 0,9 ; NaHCO₃, 25 ; Chlorure de sodium (NaCl), 47,2 ; MgCl₂·6H₂O, 0,1, (NH₄)₂CO₃, 0,5 ; HCl, 15,6 ; CaCl₂·2H₂O, 0,075. De plus, le SGF contenait 2 g/L de mucine provenant de l’estomac porcin (type II).
- Mesurez le pH et ajustez à 3 avec 1 molaire (1 M) de HCl, si nécessaire. Incuber à 37 °C et 100 tr/min. Prélève un échantillon de 2 mL (S2).
3. Digestion de l’intestin grêle :
- Ajouter 4 mL de liquide intestinal simulé (SIF) contenant (dans le mmol L-1) : KCl, 6,8 ; KH₂PO₄, 0,8 ; NaHCO₃, 85 ; NaCl, 38,4 ; MgCl₂·6H₂O, 0,33 ; HCl, 8,4 ; CaCl₂·2H₂O, 0,3, au tube digestif.
- Ajustez à un pH 7 avec 1 M d’hydroxyde de sodium (NaOH), si besoin. Incuber à 37 °C et 100 tr/min. Prélève un échantillon de 2 mL (S3).