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Article de méthode

Isolement par ultracentrifugation des vésicules externes de la membrane de Legionella pneumophila

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30 janvier 2026

Dans cet article

Résumé

Source : Jung, A. L., et al. Vésicules membranaires externes de Legionella pneumophila : isolement et analyse de leur potentiel pro-inflammatoire sur les macrophages. J. Vis. Exp. (2017)

Cette vidéo montre l’isolement des vésicules de membrane externe (OMV) de Legionella pneumophila grâce à la centrifugation séquentielle, à la filtration stérile et à l’ultracentrifugation. Les OMV purifiés, enrichis en protéines membranaires et lipopolysaccharides, conviennent aux études d’interaction hôte-pathogène.

Protocole

1. Cultiver Legionella pneumophila

  1. Répandez la souche de L. pneumophila Corby (type sauvage, WT) sur des plaques d’agar d’extrait de levure de charbon tampon (BCYE) et incubez-les à 37 °C pendant 3 jours. Inoculez 10 mL de bouillon d’extrait de levure (YEB) à un OD600 de 0,3 avec L. pneumophila provenant de la plaque de préculture ; incubez les bactéries à 37 °C sur un shaker rotatif (150 tr/min) pendant 6 heures.
  2. Vérifiez la pureté de la culture liquide en étalant 100 μL de la suspension sur une plaque d’agar sanguin. Incubez toute la nuit à 37 °C.
  3. Ajoutez la culture liquide restante à 90 mL de milieu YEB frais et incubez sur un shaker rotatif (37 °C et 150 tr/min) pour atteindre un OD600 de 3,0-3,5, ce qui prend environ 16 à 20 heures.

2. Préparer et quantifier les vésicules membranaires externes (OMV) de L. pneumophila

REMARQUE : Effectuer toutes les étapes de centrifugation suivantes dans des conditions stériles et à 4 °C.

  1. Centrifugez la culture liquide à 4 000 x g pendant 20 minutes pour pelleter les bactéries. Transférez le surnageant dans des tubes centrifugeuses fraîches, jetez la pellete bactérienne, puis répétez la centrifugation (4 000 x g pendant 20 minutes). Répétez cette étape une fois.
  2. Filtre stérile le surnageant restant deux fois (taille des pores : 0,22 μm). Transférez le surnageant sans bactéries dans des tubes ultracentrifugeuses et ultracentrifugez à 100 000 x g pendant 3 heures.
  3. Décantez le surnageant et jetez-le. Resuspendez la pellete OMV dans une solution stérile tamponnée phosphate (PBS) et une ultracentrifugeuse (100 000 x g pendant 3 heures) pour éliminer les protéines contaminantes et le LPS.
  4. Jetez le surnageant et resuspendez la pellete OMV dans 500 μL de PBS stérile. Tracez 20 μL sur une plaque d’agar sanguine et sur une plaque d’agar BCYE pour exclure toute contamination bactérienne des vésicules préparées. Incubez la plaque d’agar sanguine pendant la nuit et la plaque d’agar BCYE pendant 3 jours (toutes deux à 37 °C).
    REMARQUE : La concentration de 100 mL de culture de L. pneumophila est généralement de 1 μg/μL. Conservez les OMV préparés et quantifiés à -20 °C.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Boîte de Pétri de 10 cmSarstedt AG & Co KG (Nuembrecht, Allemagne)82.1473 
Rotor 70 TiBeckman Coulter Incorporation (Californie, États-Unis)337922 
CuvettesSarstedt AG & Co KG (Nuembrecht, Allemagne)67.742 
Incubateur Heracell 240i CO₂Thermo Fisher Scientific Allemagne BV & Co KG (Brunswick, Allemagne)40830469 
Heraeus Multifuge X3RThermo Fisher Scientific Allemagne BV & Co KG (Brunswick, Allemagne)75004515 
Boucle d’inoculationSarstedt AG & Co KG (Nuembrecht, Allemagne)86.1567.010 
L. pneumophila Corby------ 
PBSBiochrom GmbH (Berlin, Allemagne)L 1825 
Vibrateur rotatif (MaxQ 6000)Thermo Fisher Scientific Allemagne BV & Co KG (Brunswick, Allemagne)SHKE6000 
Ultrospec 10Biochrom Ltd (Cambridge, Angleterre)80-2116-30 
Filtre stérile (taille des pores : 0,22 μm)Corning Incorporated (New York, États-Unis)431096 
Charbon actifCarl Roth GmbH & Co KG (Karlsruhe, Allemagne)X865.2 
Agar-agar, Kobe ICarl Roth GmbH & Co KG (Karlsruhe, Allemagne)5210.2 
Agar Columbia avec 5 % de sang de moutonBecton Dickinson GmbH (Heidelberg, Allemagne)254005 
Extrait de levureCarl Roth GmbH & Co KG (Karlsruhe, Allemagne)2363.2 

Mots-clés

Centrifugation s quentiellefiltration st rilecontamination bact rienneinteraction h te pathog neprot ines membranaireslipopolysaccharidesg lose au sang