1. Immunomarquage des protéines : pour marquer la ou les protéines d'intérêt
- Décantation du PBS (solution saline tamponnée au phosphate) et ajout de 200 µL de tampon de blocage (1 % p/v de BSA (albumine sérique bovine), 10 % v/v de FBS (sérum de veau fœtal) dans du PBS contenant 0,1 % v/v de Tween-20 (PBST)) sur la lamelle. Incuber 1 h à la température ambiante (TA).
- Décantation du tampon de blocage et ajout de 200 µL d'anticorps primaire dilué dans du PBST + 1 % p/v de BSA. Incuber 1 h à la température ambiante.
- Laver la lame deux fois avec du PBST pendant 10 min à la température ambiante sous agitation.
- Ajouter un anticorps secondaire au choix pendant 1 h à la température ambiante dans du PBST + 1 % p/v de BSA.
- Laver la lame avec du PBST pendant 10 min à la température ambiante sous agitation.
2. Coloration nucléaire : contre-colorer les noyaux après l'immunomarquage
- Versez délicatement le PBST et ajoutez du DAPI (4',6-diamidino-2-phénylindole) ou un colorant nucléaire au choix pendant 1 min à température ambiante.
- Lavez la lame deux fois avec du PBS pendant 10 min à température ambiante sous agitation.