1. Traitement des échantillons viraux pour la RT-qPCR (réaction de polymérisation en chaîne en temps réel quantitative)
REMARQUE : Les étapes 1.1 à 1.3 doivent être effectuées à l'intérieur d'une hotte de sécurité biologique. En particulier, la manipulation du surnageant de culture contenant un virus infectieux doit être réalisée dans un environnement de niveau de sécurité biologique 2 (ou supérieur).
1. Mélanger 199 µL d’un tampon de traitement et 1 µL de protéinase K sans nucléase.
2. Diluer en série l'ARN synthétisé de la région 3’UTR (région non traduite) du virus de la dengue (DENV) à un ratio de 1:10 afin d'obtenir un étalon d'ARN compris entre 5 x 109 et 5 x 103 copies/µL, en utilisant un milieu de culture cellulaire (par exemple, DMEM (milieu d’Eagle modifié de Dulbecco) complété avec 10 % de sérum de veau fœtal et des antibiotiques [DMEM/10 % de sérum de veau fœtal]) contenant 40 unités/mL d'inhibiteur de RNase.
3. Mélanger 5 µL du surnageant de culture de cellules infectées par le DENV et l'étalon d'ARN 3’UTR du DENV avec 5 µL de solution de tampon de traitement/protéinase K, en utilisant des bandes PCR à 8 tubes ou une plaque PCR à 96 puits. En tant que témoin sans matrice (NTC), mélanger 5 µL de milieu de culture cellulaire (c’est-à-dire sans virus) avec 5 µL de la solution de tampon de traitement/protéinase K.
4. Après une courte centrifugation, incuber les échantillons dans un thermocycleur selon les conditions suivantes : 1 cycle (25 °C pendant 10 min et 75 °C pendant 5 min).
REMARQUE : Les échantillons traités peuvent être conservés à 4 °C si l'analyse par PCR en temps réel est effectuée le même jour. Pour une conservation à long terme, les échantillons doivent être stockés à -80 °C.